Sonication tremendously improves the efficiency of Agrobacterium infection by introducing small and uniform fissures and channels throughout the targeted tissue. Using shoot tips of cotton as explants, the effect of sonication treatment and virulence genes in Agrobacterium tumefaciens on transformation efficiency was investigated. The pat gene which encodes resistance to the herbicide, glufosinate, was used as a selectable marker. Transformation efficiency was evaluated on th basis of survival rates of cocultivated shoot tips on selection medium containing 2.5 mg/l gulfosinate-ammonium(ppt) adn 25. mg/l Clavamax. Sonication from 5 to 15 second has a positive effect on shoop tip survival. However, whil virE as well as virG or vir GN54D showed an enhancement in transformation efficiency, virE,. virG resulted in the most significant enhancement. Overall, the combination of additional virG/virE gene and sonication treatment resulted in the most significant increase in transformation efficiency.
Agrobacterium-mediated transformation has been unsuccessful for monocot plants except for a few important crops such as barley, rice, maize and wheat. We discussed here that a successful transformation of monocots demands certain critical conditions. The requirements for an efficient transformation are a selection of target tissues competent for plant regeneration and Agrobacterium-infection, and various factors promoting Agrobacterium-infection. The factors were divided into two to activate Agrobacterium and to increase plant cell's susceptibility against Agrobacterium. Optimization of these factors significantly increased transformation efficiency of zoysia grass and rice plants. A technical improvement in transformation system for monocots will promote improvement of the breed as well as a study of gene functions in monocots.
The chromosomal DNA of Agrobacterium tumefaciens contains the genes required for bacterial attachment to plant cell which is an essential atage in crown gall tumorigenesis by Ti-plasmid. In order to clone the genes, Agrobacterium tumefaciens strain A5512 was mutagenized by transposon Tn5 and two Agrobacterium tumefaciens mutants which are attachment-defective and nontumorigenic were isolated. From one of the two mutants, a chromosomal virulence region which was required for attachment to the plant cells was cloned.
The cells of Rubia cordifolia var. pratensis were transformed by Agrobactrium tumefaciens strain 11157. Surface-sterilized young leaves and stems of the plants were cocultivated with bacterial suspensions. Crown galls induced from stems were cultured with variation of culturing conditions and compared with untransformed cells. The growth rates and production of anthraquinone pigments of cells were remarkably improved by transformation. Furthermore, hairy roots were induced by inoculation or cocultivation with Agrobacterium rhizogenes strains.
Genetic transformation in dandelion(Taraxacum mongolicum Hand). was studied. We used for transformation by Agrobacterium tumefaciens strian LBA4404 harboring a binary vector pBI121 carrying the CaMV 35S promoter-GUS gene fusion used as a reporter gene and NOS promoter-NPTII gene as a positive selection marker. To obtain transformed plants, leaf explants of dandelion were cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404 for 10 mins, then transferred to MS medium containing 1 $\mu$M IAA, 1$\mu$M BA, 100$\mu$g/ML carbenicillin and 50 $\mu$g/ML kanarmycin sulfate. After two weeks of subculture of the explants, Kanamycin-resistant shoots were formed on explants survived. When subjected to GUS histochemical assay, all of the regenerants showed the GUS-positive responses. Plantlets were be be transformed to soil for further growth.
Chinese cabbage (Brassica campestris ssp. napus var. pekinensis Makino) seeds/seedlings were transformed via vacuum-infiltration with recombinant Agrobacterium tumefaciens LBA4404 cells. The agroinfiltration method was determined to be unsuccessful for Chinese cabbage transformation during the analysis of hepatitis B surface antigen expression by ELISA. However, treatment of sodium hypochlorite solution, prior to agroinfiltration, to pregerminated or germinating 1 day- or 2 days-old seeds was proven effectively to enhance transformation efficiency, suggesting that chemical wounding caused by sodium hypochlorite reaction might facilitate Agrobacterium infection and, therefore, transient gene expression in Chinese cabbage sprouts.
The experiments were carried out to determine the optimum conditions for the induction of hairy roots in ginseng(Panax ginseng C.A. Meyer) by Agrobacterium spp. We were examined the antibiotics resistance of Agrobacterium spp and various ginseng parts, and the media for induction of hairy roots. The optimum concentration of NaOCl for sterilization of ginseng root segments without tissue damage with reduce of contamination was 7% NaOCl for 15-20 min and 9% NaOCl for 5 min, respectively. The more ginseng ages, the more contamination of ginseng root segment by sterilized in 7% NaOCl for 20 min, and especially in ginseng root segments with epidermis in six-year old roots. The growth of Agrobacterium spp were inhibited, but ginseng root segments was death in 30mg/L tetracycline. In 500mg/L cefotaxime or 500mg/L carbenicillin, the growth of Agrobacterium sup were inhibited, and root segments was grown normally. The optimum conditions for induction of hairy roots were using the root segments of three-year old ginseng cultured in 1/2MS medium supplemented with 500mg/L cefotaxime, and inoculation of Agrobacterium to root segments were better co-culture than smear method. After 2 weeks co-culture, the callus induced in cambium of root segments cultured in 1/2MS solid medium with 500mg/L cefotaxime. And then after 2 weeks, ginseng hairy roots were induced in callus of root segments. PCR analysis of rot C gene fragment confirmed that hairy roots were transgenic tissues.
A system for the production of transgenic plants has been developed for Italian ryegrass(Lolium mult리orum Lam.) via Agrobacterium-mediated transformation of embryogenic callus. Mature seed-derived calli were infected and co-cultured with Agrobacterium EHA101 carrying standard binary vector pIG121Hm encoding the hygromycin phosphotransferase(HPT), neomycin phosphotransferase II (NPTII) and intron-oontaining $\beta$g1ucuronidase( intron-GUS) genes in the T-DNA region. The effects of several factors on transformation and the expression of the GUS gene were investigated. Inclusion of 200${\mu}M$ acetosyringone(AS) in inoculation and co-cultivation media lead to a significant increase in stable transformation efficiency. Increasing Agrobacterium cell density up to 1.0 in $OD_{600}$ during infection increased transfonnation efficiency of embryogenic calli. The highest transfonnation efficiency was obtained when embryogenic calli were incoulated with Agrobacterium in the presence of 0.1% Tween20 and 200${\mu}M$ AS. Hygromycin resistant calli were developed into complete plants via somatic embryogenesis. GUS histochemical assay and PCR analysis of transgenic plants demonstrated that transgenes were integrated into the genome of Italian ryegrass.
To investigate the severity of crown gall disease on grapevine, the ratio of healthy vs. galled grapevines and the presence of the pathogen of the disease in soil were measured in Korean vineyards. In field and greenhouse cultivations, the crown gall incidence of the cv. Kyoho grapevines was $0.4{\sim}97.9%$ and $1.4{\sim}3.8%$ and those of cv. Campbell Early was $1.2{\sim}2.1%$ and $0{\sim}1.8%$, respectively. The higher populations of Agrobacterium spp. were isolated from soils of grapeveins with crown gall than from soils of noninfected vineyards. Based on the colony shapes and growth on plates, 480 isolates of Agrobacterium spp. from 21 soil samples were collected. Only 13 isolates out of 480 developed the gall on inoculated grapevines.
Several experiments were carried out to transfer LEAFY gene to Dendranthema grandiflora 'Shuho-no-chikara' by Agrobacterium LBA4404 carrying pSK109 encoding LEAFY gene. Kanamycin 10mg/L was used in first selection medium, and 20mg/L in the second one. Co-culture for 3 days was more effective in increasing transformation efficiency than that for 7 days. The transformation efficiency by Agrobacterium LBA4404 carrying pSK109 encoding LEAFY gene was about 2.8% until the second selection, but only 0.13% of shoots (two plants) was confirmed as a transgenic plants in Southern analysis. The escape of putative transformants was occured seriously in the process of selections, PCR analysis for confirming of neomycin phosphotransferaseII (npt II), and Southern analysis for LEAFY gene. One transgenic plant appeared 7 days'early flowering in field.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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