An alkalophilic bacterium isolated from compost was selected, identified and tested for the production of glutamic acid from ammonium fumarate. The bacterium was closely related to Bacillus brevis. The conditions for glutamic acid production were pH 8.0, 2% fumaric acid, and 0.8% nutrient broth. The mechanism of glutamic acid formation in this strain was postulated as following scheme. (1) Ammonium fumarate longrightarrow Aspartic acid (2) Aspartic acid + $\alpha$-Ketoglutaric acid longrightarrow Glutamic acid + Oxaloacetic acid.
Phytochemicals have been known to exhibit potent antioxidant activity. This study examined cytoprotective effects of phytochemicals including quercetin, catechin, caffeic acid, and phytic acid against oxidative damage in SK-Hep-1 cells induced by the oxidative and non-oxidative metabolism of ethanol. Exposure of the cells to excess ethanol resulted in a significant increase in cytotoxicity, reactive oxygen species (ROS) production, lipid hydroperoxide (LPO), and antioxidant enzyme activity. Excess ethanol also caused a reduction in mitochondrial membrane potential (MMP) and the quantity of reduced glutathione (GSH). Co-treatment of cells with ethanol and quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid significantly inhibited oxidative ethanol metabolism-induced cytotoxicity by blocking ROS production. When the cells were treated with ethanol after pretreatment of 4-methylpyrazole (4-MP), increased cytotoxicity, ROS production, antioxidant enzyme activity, and loss of MMP were observed. The addition of quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid to these cells showed suppression of non-oxidative ethanol metabolism-induced cytotoxicity, similar to oxidative ethanol metabolism. These results suggest that quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid have protective effects against ethanol metabolism-induced oxidative insult in SK-Hep-1 cells by blocking ROS production and elevating antioxidant potentials.
Forty-one fungal species belonging to 15 fungal genera isolated from Egyptian soil and sugar cane waste samples were tested for their capacity of producing acidity and gluconic acid. For the tests, the fungi were grown on glucose substrate and culture filtrates were examined using paper chromatography analysis. Most of the tested fungi have a relative wide potentiality for total acid production in their filtrates. Nearly 51% of them showed their ability of producing gluconic acid. Aspergillus niger was distinguishable from other species by its capacity to produce substantial amounts of gluconic acid when it was cultivated on a selective medium. The optimized cultural conditions for gluconic acid yields were using submerged culture at $30^{\circ}C$ at initial pH 6.0 for 7 days of incubation. Among the various concentrations of substrate used, glucose (14%, w/v) was found to be the most suitable carbon source for maximal gluconic acid during fermentation. Maximum values of fungal biomass (10.02 g/l) and gluconic acid (58.46 g/l) were obtained when the fungus was grown with 1% peptone as sole nitrogen source. Influence of the concentration of some inorganic salts as well as the rate of aeration on the gluconic acid and biomass production is also described.
A bacterium L-10 which produce mush of glutamic acid was Isolated from soil and identified as the genus Pserdomonas. The maximal glutamic acid production was obtained when the strain was cultured at 3$0^{\circ}C$ for 30 hrs in the optimal medium containing 5% glucose, 0.5% each of urea and yeast extract, 0.1% K2HP04, 0.02% MgSO4.7H20, 0.3% (NH, )rHP04, 0.5ug/l biotin and Initial pH 7.0, and then final glutamic acid production under the above conditions was 1.2mg/ml of cell cultures.
Butyric acid (C4 carboxylic acid) is used as an important compound in food, pharmaceutical, and chemical industries. Currently, butyric acid is mainly produced at the industrial scale through the petrochemical processes. Bio-based butyric acid has also gained attention, because the consumer prefers the food and pharmaceutical ingredients that are produced through fermentation. Clostridia is one of the well-known butyric acid producers, and massively engineered for enhanced production of butyric acid. In this paper, we reviewed the metabolic pathway of clostridia, especially Clostridium acetobutylicum and Clostridium tyrobutyricum, and summarized the metabolic engineering strategies of the strains for enhanced production of butyric acid.
Two hundred and sixteen Institut de S$\acute{e}$lection Animale (ISA) brown layers (40 wks of age) were studied for 6 wks to examine the effect of microalgae powder (MAP) on egg production, egg quality, blood lipid profile, and fatty acid concentration of egg yolk. Dietary treatments were as follows: i) CON (basal diet), ii) 0.5% MAP (CON+0.5% Schizochytrium powder), and iii) 1.0% MAP (CON+1.0% Schizochytrium powder). From 44 to 46 wks, egg production was higher in 1.0% MAP treatment than in control treatment (linear, p = 0.034); however, there was no difference on the egg production from 40 to 43 wks (p>0.05). Serum triglyceride and total cholesterol were significantly reduced in the groups fed with MAP, compared to those in groups fed with control diets (Quadratic, p = 0.034 and p = 0.039, respectively). Inclusion of 0.5% MAP in the diet of layers improved egg yolk color, compared with hens fed with basal diet at 46 wks (quadratic, p = 0.044). Eggshell thickness was linearly increased in MAP-fed treatments at 46th wk (p<0.05). Concentration of yolk docosahexaenoic acid (DHA; C22:6n-3) was increased in treatment groups fed with MAP (linear, p<0.05). The n-6 fatty acids, n-6/n-3 fatty acid, and unsaturated fatty acid/saturated fatty acid were decreased in treatment groups fed with MAP (linear, p<0.05). These results suggest that MAP improved the egg production and egg quality, and may affect serum lipid metabolites in the layers. In addition, MAP increases yolk DHA levels, and deceases n-6/n-3 fatty acid ratio.
Statistical medium optimization has been carried out for the production of succinic acid in anaerobic fermentations of Actinobacillus succinogenes. Succinic acid utilized as a precursor of many industrially important chemicals is a fourcarbon dicarboxylic acid, biosynthesized as one of the fermentation products of anaerobic metabolism by A. succinogenes. Through OFAT (one factor at a time) experiments, corn steep liquor (CSL), a very cheap agricultural byproduct, was found to have significant effects on enhanced production of succinic acid, when supplemented along with yeast extract. Hence, using these factors including glucose as a carbon/energy source, interactive effects were investigated through $2^n$ full factorial design (FFD) experiments, showing that the concentration of each component (i.e., glucose, yeast extract and CSL) should be higher. Further statistical experiments were conducted along the steepest ascent path, followed by response surface method (RSM) in order to find out optimal concentrations of each constituent. Consequently, optimized concentrations of glucose, yeast extract and CSL were observed to be 180 g/L, 15.08 g/L and 20.75 g/L respectively (10 g/L of $NaHCO_3$ and 100 g/L of $MgCO_3$ to be supplemented as bicarbonate suppliers), with the estimated production level of succinic acid to be 92.9 g/L (about 3.5 fold higher productivity as compared to the initial medium). Notably, the RSM-estimated production level was almost similar to the amount of succinic acid (92.9 g/L vs. 89.1 g/L) produced through the actual fermentation process performed using the statistically optimized production medium.
In this study, succinic acid production using fumaric acid fermentation broth was investigated. We tried to produce fumaric aicd from glucose by Rhizopus oryzae and then convert fumaric acid fermentation broth into succinic acid by Enterococcus faecalis RKY1. Conversion ratio of succinic acid was more than 0.90 g/g-fumaric acid. Furthermore, we optimized conditions of conversion from fermentation broth. As a result, when fumaric acid fermentation broth for succinic acid production was employed, we could decrease the amount used of glycerol and yeast extract.
For the production of D-lactic acid from DL-2-chloropropionic acid, about 80 strains of bacteria capable of assimilating DL-2-chloropropionic acid as a sole carbon and energy source were isolated from the soil. JH-007 strain that showed the higest productivity of D-lactic acid and didn't produce L-lactic acid from DL-2-chloropropionic acid was selected from them and identified as Pseudomonas sp. The optimal conditions for the production of D-lactic acid from DL-2-chloropropionic acid were examined. The resting cells of JH-007 cultured in LB medium containing 3 g/l of DL-2-chloropropionic acid were used as an enzyme source. The reaction mixtures for the maximal production of D-lactic acid were consist of 10 g/l of resting cells and 3 g/l of DL-2-chloropropionic acid in 125 mM sodium carbonate buffer. The optimal pH for the reaction was 10.0 and the optimal temperature was 30$\circ$C. When 1 g/l of DL-2-chloropropionic acid was added intermittently to the reaction mixture under the above condition, 5.72 g/l of D-lactic acid was produced after incubation of 5 hrs. This amount of D-lactic acid corresponded to a 98.4% yields and the optical purity was 99.8%.
In order to produce ascorbic acid-2-phosphate from ascorbic acid, bacteria capable of transforming ascorbic acid to ascorbic acid-2-phosphate were isolated from soils and the stock cultures in our laboratory. Among them, a newly isolated bacterium LSH-3 having the best ability of producing ascorbic acid-2-phosphate was selected and partially identified as Pseudomonas sp. The optimum conditions for the production of ascorbic acid-2-phosphate from ascorbic acid and using its resting cells as the source os enzyme were investigated. The results were summarized as follows: The optimum cultivation time and the cell weight for the production of ascorbic acid-2-phosphate was 14 hours and 100g/I(wet weight), respectively. And 0.1%(v/v) Trition X-100 was the most effective surfactant. The optimum concentrations of ascorbic acid and pyrophosphate were 400mM and 500mM, respectively, which led to produce 14.54g/I of ascorbic acid-2-phosphate. The most effective buffer was 50mM sodium acetate. The optimum pH and temperature were 4.5 and $40^{\circ}C$, respectively. Under the above conditions, 17.71 g/I of ascorbic acid-2-phosphate was produced from ascorbic acid after 32 hour-incubation, which corresponded to 17.5% of conversion rate based on ascorbic acid.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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