Terminal-restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) analysis was used to monitor inoculated oil-degrading microorganisms during bioremedial treatability tests. A pair of universal primers, fluorescently labeled 521F and 1392R, was employed to amplify small subunit rDNA in order to simultaneously detect two bacterial strains, Corynebacterium sp. IC10 and Sphingomonas sp. KH3-2, and a yeast strain, Yarrowia lipolytica 180. Digestion of the 5'-end fluorescence/labeled PCR products with HhaI produced specific terminal-restriction fragments (T-RFs) of 185 and 442 bases, corresponding to Corynebacterium sp. IC10 and Y. lipolytica 180, respectively. The enzyme NruI produced a specific T-RF of 338 bases for Sphingomonas sp. KH3-2. The detection limit for oildegrading microorganisms that were inoculated into natural environments was determined to be $0.01\%$ of the total microbial count, regardless of the background environment. When three oil-degrading microorganisms were released into oil-contaminated sand microenvironments, strains IC10 and 180 survived for 35 days after inoculation, whereas strain KH3-2 was detected at 8 days, but not at 35 days. This result implies that T-RFLP could be a useful tool for monitoring the survival and relative abundance of specific microbial strains inoculated into contaminated environments.
This review summarizes the studies on a wide variety of yeast found in kimchi and the effects of yeast on kimchi fermentation, and discusses the direction for further research. Yeast belongs to the genera Trichosporon, Saccharomyces, Sporisorium, Pichia, Lodderomyces, Kluyveromyces, Candida, Debaryomyces, Geotrichum, Kazachstania, Brassica, Yarrowia, Hanseniaspora, Brettanomyces, Citeromyces, Rhodotorula, and Torulopsis have been identified using culture-dependent methods and metagenomics analysis. The application of yeast as a starter into kimchi has resulted in an extension of shelf life and improvement of sensory characteristics due to a decrease in the amount of lactic acid. On the other hand, some yeast cause kimchi spoilage, which typically appears as an off-odor, texture-softening, and white-colony or white-film formation on the surface of kimchi. In contrast to lactic acid bacteria, there are limited reports on yeast isolated from kimchi. In addition, it is unclear how yeast affects the fermentation of kimchi and the mechanism by which white colony forming yeast predominate in the later stage of kimchi fermentation. Therefore, more research will be needed to solve these issues.
Violacein, a purple pigment first isolated from a gram-negative coccobacillus Chromobacterium violaceum, has gained extensive research interest in recent years due to its huge potential in the pharmaceutic area and industry. In this review, we summarize the latest research advances concerning this pigment, which include (1) fundamental studies of its biosynthetic pathway, (2) production of violacein by native producers, apart from C. violaceum, (3) metabolic engineering for improved production in heterologous hosts such as Escherichia coli, Citrobacter freundii, Corynebacterium glutamicum, and Yarrowia lipolytica, (4) biological/pharmaceutical and industrial properties, (5) and applications in synthetic biology. Due to the intrinsic properties of violacein and the intermediates during its biosynthesis, the prospective research has huge potential to move this pigment into real clinical and industrial applications.
Kim, Jong-Hui;Kim, Bu-Min;Jeong, Seok-Geun;Oh, Mi-hwa
Journal of Dairy Science and Biotechnology
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v.35
no.3
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pp.152-161
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2017
Cheese is an excellent substrate for yeast and mold growth. These organisms can cause cheese spoilage, resulting in significant food wastage and economic losses. In the context of cheese spoilage, the presence and effects of spoilage or pathogenic bacteria are well documented. In contrast, although yeasts and molds are responsible for much dairy food wastage, only a few studies have examined the diversity of spoilage fungi. This article reviews the spoilage yeasts and molds affecting cheeses in various countries. The diversity and number of fungi present were found to depend on the type of cheese. Important fungi growing on cheese include Candida spp., Galactomyces spp., Debaryomyces spp., Yarrowia spp., Penicillium spp., Aspergillus spp., Cladosporium spp., Geotrichum spp., Mucor spp., and Trichoderma spp.. In addition, several mold spoilage species, such as Aspergillus spp. and Penicillium spp., are able to produce mycotoxins, which may also be toxic to humans. There are many ways to eliminate or reduce toxin levels in foods and feeds. However, the best way to avoid mycotoxins in cheese is to prevent mold contamination since there are limitations to mold degradation or detoxifications in cheese. Chemical preservatives, natural products, and modified atmosphere packaging have been used to prevent or delay mold spoilage and improve product shelf life and food safety.
In order to analyze nutritional factors affecting in situ bioremediation of diesel degradation and cell viability were studied by varying nutritional conditions. In column experiments packed with diesel-contaminated soil, nitrogen was found to be the major limiting nutrient. When nitrogen was added to soil at four different levels of C : N (100 : 5, 100 : 10, 100 : 15, and 100 : 20 mg N/kg dry soil), the greatest simulation of microbial activity occurred at the lowest, rather than the highest nitrogen addition. However, no significant effects was observed when phosphorus and air were added. No matter how the incubation mode varied, less than 50% of the diesel was remained after 7 days of treatment, presumably because the residual hydrocarbons were adsorbed on soil particles, adsorption
Lipase (triacylglycerol lipase, EC 3.1.1.3) is an enzyme capable of hydrolyzing triacylglycerol, to produce fatty acids and glycerol and reverse the reaction of triacylglycerol synthesis from fatty acids and glycerol through transesterification. Applications of lipase are quite widespread in the industrial sector, including in the detergent, paper, dairy, and food industries, as well as for biodiesel synthesis. Lipases by yeasts have attracted industrial attention because of their fast production times and high stability. In a previous study, a lipase-producing yeast isolate was identified as Zygosaccharomyces mellis SG1.2 and had a productivity of 24.56 U/mg of biomass. This productivity value has the potential to be a new source of lipase, besides Yarrowia lypolitica which has been known as a lipase producer with a productivity of 0.758 U/mg. Lipase production by Z. mellis SG1.2 needs to be increased by optimizing the production medium. The aims of this study were to determine the significant component of the medium for lipase production and methods to increase lipase production using the optimum medium. The two methods used for the statistical optimization of production medium were Taguchi and RSM (Response Surface Methodology). The data obtained were analyzed using Minitab 18 and SPSS 23 software. The most significant factors which affected lipase productivity were olive oil and peptones. The optimum medium composition consisted of 1.02% olive oil, 2.19% peptone, 0.05% MgSO4·7H2O, 0.05% KCl, and 0.2% K2HPO4. The optimum medium was able to increase the lipase productivity of Z. mellis SG1.2 to 1.8-fold times the productivity before optimization.
To screen for potent anti-inflammatory compound-producing yeasts, we evaluated nitric oxide production inhibitory activities in RAW 264.7 macrophage cells using cell-free extracts from 182 non-pathogenic yeasts. Rhodotorula graminis YJ36-1 and Meyerozyma guilliermondii YJ34-2 showed high inhibitory activities of 57.4% and 47.0%, respectively. The microbiological characteristics of these yeasts were investigated. Rhodotorula graminis YJ36-1 formed ascospores and pseudomycelium. This species grew well at $25^{\circ}C$ in yeast extract-peptone-dextrose (YPD) medium, vitamin-free medium, and 5% NaCl-containing YPD medium. Meyerozyma guilliermondii YJ34-2 was an asporogenous yeast and did not form pseudomycelium. This strain also grew well at $30^{\circ}C$ in YPD medium, vitamin-free medium, and 5% NaCl-containing YPD medium.
Natural 6-dodecen-4-olide (Butte lactone) was produced from plant oils containing high unsaturated fatty acids via two-stage microbial hiotransformation. After unsaturated fatty acids were liberated from plant oil by microbial lipase, these were converted to optically active hydroxyl fatty acid (HFA) by hydroxylation reaction of Pseudomonas sp. NRRLB-2994. When safflower oil containing >75% unsaturated fatty acid, linoleoic acid wasused, Pseudomonas sp. produced 8g/L of 10-hydroxy-12(z)-octadecanoicacid with average of 39.2% bioconversion efficiency during 48 hr biotransformation period. The recovered 10-hydroxy-12-octadecanoic acid was further bioconverted to 4-hydroxy-6-dodecenoic acid via partial ${\beta}-oxidation$ by Yarriowia lipolytica ATCC34088. 4-hydroxy-6-dodecenoic acid in culture was lactonized by lowering pH to 4.0 using $4N\;H_{2}SO_{4}$ and heating for 5 min to 6-dodecen-4-olide (Butter lactone). Natural 6-dodecen-4-olide had characteristic aroma properties when compared to 6-dodecan-4-oilde (dodecalactone) and 4-decen-4-olide (decalactone).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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