A gene encoding the xylanase (XynA) predicted from partial genomic sequence of Paenibacillus woosongensis was cloned into Escherichia coli by PCR. This xynA gene consisted of 633 nucleotides, encoding a polypeptide of 211 amino acid residues. The deduced amino acid sequence exhibited 85-89% identity with those of several Paenibacillus xylanases, belonging to the glycosyl hydrolase family 11. As a results of expression of the structural gene by T7 promoter of a pET23a(+) expression vector, xylanase activity was higher in cell-free extract than culture filtrate of a recombinant Escherichia coli BL21(DE3) CodonPlus. However, the expression level of xylanase was not sufficient be detected by SDS-PAGE. The cell-free extract showed maximal xylanase activity at $60^{\circ}C$ and pH 5.5. The predominant products resulting from xylan and xylooligosaccharide hydrolysis were xylose and xylotriose. The enzyme could hydrolyze xylooligosaccharides larger than xylbiose.
A strain of Bacillus sp. DSNC 101, isolated from soil, produced up to 305.0 units/ml of xylanase when grown on te medium containing 2.0% xylan, 2.0% yeast extract and 0.4% K2HPO4. The strain produced xylanase in the presence of xylan, soluble starch, rice straw, Avicel, maltose, and lactose as a sole carbon source, but the enzyme was not synthesized in the presence of xylose, glucose or arabinose. The crude xylanase preparation did not show hydrolytic activity towards cellulosic substrates and PNPX, a chromogenic substrate for $\beta$-xylosidase. The temperature and pH optima for the xylanase production were 4$0^{\circ}C$ and 8.0, respectively. Xylanase synthesis was repressed by glucose, but not by xylose. The hydrolysis products of xylan catalyzed with the culture filtrate were xylooligosaccharides such as xylobiose and xylotriose but xylose was not detected by tin layer chromatography.
A gene coding for a xylanase of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17 was cloned in Escherichia coli C600 with pBR322. Plasmid pAXl13 was isolated from a transformant producing xylanase, and the xylanase gene was located in a 4.3 Kb HindIII fragment. Biotinylated pAXl13 hybridized to a 4.3 Kb HindIII fragment from chromosomal DNA of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17. The xylanase activity was observed in the extracellular curture fluid of E. coli carrying pAXl13. The pAXl13-encoded xylanase had the same enzymatic properties as those of xylanase I produced by thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17.
Among the new yeast strains which were isolated from soils by incubating in the xylan containing minimal medium at 3$0^{\circ}C$, one strain(XB-33) was finally selected by the results of extracellular xylanase production test. The characteristics of XB-33 was almost consistent with those of the Cryptococcus ater. The formation of xylanase activity was induced by xylan and repressed by xylose or glucose. The xylanase was partially purified from the culture supernatant with DEAE-Sephadex A5O chromatography. The enzyme had a pH optimum for activity at 5.0 and its stability range was pH 5-7. The temperature optimum was at 5$0^{\circ}C$, but the enzyme activity was greatly lost by heating at 7$0^{\circ}C$ for 60 minutes. The hydrolysis products from xylan by crude enzyme detected by TLC, were xylose and n series of higher oligosaccharides. The Km value of xylanase was 20 (mg/ml).
A bacterial strain capable of producing high level of extracellular xylanase was isolated from soil. The characteristics of the isolated strain No.236 were identified to be Bacillus stearothermophilus. The maximal xylanase production was observed in the medium containing 0.75% xylan, 0.35% yeast extract, 1.06% $K_2$HPO$_4$and 0.05% CaCO$_3$with initial pH of 6.5 when the strain was cultured at 5$0^{\circ}C$ for 28 hrs with reciprocal shaking. Hydrolysis of xylan by the xylanase revealed that xylose was the only product of the reaction. This suggested that the enzyme produced by Bacillus stearothermophilus No. 236 was an exe-acting xylanase.
A new moderate thermophilic bacterial strain DG-22 which produces thermostable xylanase was isolated from a timber yard soil in Kyungju, Korea. On the basis of morphological, biochemical and phylogenetic studies the new isolate was identified as a Paenibacillus species. Production of xylanase in this strain was strongly induced by adding xylan to the growth medium and repressed by glucose or xylose. No cellulase activity was detected. The temperature and pH for optimum activity were 8$0^{\circ}C$ and 5.0-5.5, respectively. The crude xylanase was stable at $60^{\circ}C$ and retained 60% of initial activity after 2h at $70^{\circ}C$. Zymogram analysis of the culture supernatant showed two xylanase active bands with molecular masses of 22 and 30 kDa.
An alkali-tolerant bacterium producing the xylanase was isolated from soil and identified as Bacillus alcaiophilus. This strain, named B. alcalophilus AX2000, was able to grow and produce xylanase optimally at pH 10.5 and $37^{\circ}C$. The maximum xylanase production was obtained when 0.5%(w/v) birchwood xylan and 0.5%(w/v) polypeptone and yeast extract were used as carbon source and nitrogen source, respectively. The biosynthesis of xylanase was under the catabolite repression by glucose in the culture medium, and inhibited in the presence of high concentration of xylose. The maximum activity of xylanase was observed at pH 10.0 and $50^{\circ}C$ and the enzyme activity remained was over 80% at $60^{\circ}C$ and from pH 5.0 to 11.0.
Xylanase plays important roles in a broad range of industrial production as a biocatalyst, and its applications commonly require immobilization on supports to enhance its stability. Aluminum hydroxide, a carrier material with high surface area, has the advantages of simple and low-cost preparation and resistance to biodegradation, and can be potentially used as a proper support for xylanase immobilization. In this work, xylanase from Thermomyces lanuginosus was immobilized on two types of aluminum hydroxide particles (gibbsite and amorphous Al(OH)3) through adsorption, and the properties of the adsorbed enzymes were studied. Both particles had considerable adsorptive capacity and affinity for xylanase. Xylanase retained 75% and 64% of the original catalytic activities after adsorption to gibbsite and amorphous Al(OH)3. Both the adsorptions improved pH and thermal stability, lowered activation energy, and extended lifespan of the immobilized enzyme, as compared with the free enzyme. Xylanase adsorbed on gibbsite and amorphous Al(OH)3 retained 71% and 64% of its initial activity, respectively, after being recycled five times. These results indicated that aluminum hydroxides served as good supports for xylanase immobilization. Therefore, the adsorption of xylanase on aluminum hydroxide particles has promising potential for practical production.
A xylanase was purified from a commercial crude xylanase, Pulpzyme HC, and used for the bleaching of kraft pulp in the absence or in the presence of nonionic surfactants, Tween 20, Tween 80, and Igepal C930. The purified xylanase has a molecular weight of 23,500 as determined by a reducing SDS-PAGE. Tween 20 was most effective to enhance the efficiency of the enzymatic bleaching of kraft pulp by xylanase.
Thermo-tolerant bacterium producing the xylanase was isolated from soil and identified as Bacillus pumilus. This strain, named Bacillus pumilus TX703, was able to grow ad produce xylanase at the culture temperature of 5$0^{\circ}C$. The maximum xylanase production was obtained when 1%(w/v) birchwood xylan and 1% (w/v) soytone were used as carbon source and nitrogen source, respectively. The biosynthesis of xylanase was under the catabolite repression induced by glucose in the culture medium, and it was completely inhibited in the presence of 0.2% (w/v) glucose. The maximum activity of xylanase was observed from pH8.0 to 9.0 and from 50 to 6$0^{\circ}C$ and the enzyme was highly heat-stable, whose activity remained was over 50% at 8$0^{\circ}C$, and was quite stable from pH5.0 to 10.0.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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