This study evaluated the efficiency and compared with different materials of loading vessels for vitrification-plastic/glass, copper grid and nylon. The loading method, vitrification, cryop-reservation and warming method of the oocytes were examined. The loading samples prepared in manual or company-made and sterilized, loaded the COCs selected on each samples and cultured for maturation during 40 hours, and then exposed sequentially to ethylene glycol solution. Thawing method was reversely treated and exposed for warmed oocytes. After oocytes were thawed, fertilized and cultured in vitro for 3-4 hours, rates of development and morphological appearance were examined. The results were as summarized: ㆍOPS from company-made or hand-made of the hematocrit micropipettes, NLS from fishing line and EMG from company-made for EM were used for loading oocytes, respectively. ㆍThe efficiency of freezing method and loading convenience were orderly higher in OPS, NLS and EMG. The optimal capacity per vessel was orderly lowered in NLS, EMG and OPS, respectively. ㆍAfter oocytes were warmed, the recovery rate, morphology and rate of development were orderly higher in OPS, NLS and EMG, respectively. ㆍIn conclusion, OPS has the advantages of achieving a little more survival and preserving results than other two loading methods.
Solution of glycerol, ethylene glycol, sucrose, dextrose (GESD) and cryotop methods were carried out to investigate the survivability on vitrification of embryos. Embryos cultured in vitro were vitrified by GESD of 10 or 8 step and cryotop methods of 6 step, from cryopreservation step to frozen-thawed and culture step. Survival rate and ICM, TE cells of embryos were investigated after frozen-thawed 24 h. As a results, cryotop method was significantly (p<0.05) higher ($85.76{\pm}5.3$ vs. $66.71{\pm}2.4$, $44.80{\pm}2.1%$) than GESD 10 or 8 step methods on survivability. Also, In ICM cell number, cryotop method was significantly (p<0.05) higher to $45.67{\pm}4.7$ cells than GESD 8 step method. TE cell number was significantly (p<0.05) highest to $111.00{\pm}11.0$ cells in cryotop method. On the other hand, survival rate, TE and total cell number were all the significantly (p<0.05) high, except ICM in GESD 10 step method between GESD 10 step method and GESD 8 step method. In conclusion cryotop method was to be most effective, but it is considered necessary to study vitrification method for step-by-step freezing and thawing process.
Objective: This study examined whether the addition of triple antioxidants (3A)-10 µM acetyl-L-carnitine, 10 µM N-acetyl-L-cysteine, and 5 µM α-lipoic acid-in freezing-thawing medium during human sperm cryopreservation using the sucrose vitrification (SuV) and liquid nitrogen vapor (Vapor) techniques could improve post-thaw survival of spermatozoa. Methods: We analyzed 30 samples from healthy human sperm donors. Each sample was allocated into one of five groups: fresh control, SuV, SuV+3A, Vapor, and Vapor+3A. The sperm motility, morphology, viability, intracellular and extracellular reactive oxygen species (ROS) levels, and sperm DNA fragmentation (SDF) were evaluated. Results: The cryopreserved spermatozoa had significantly reduced percentages of motility (p<0.05) and viability (p<0.05). Antioxidant supplementation non-significantly improved these parameters (p>0.05). No significant differences were found in sperm morphology between the fresh and frozen-thawed groups (p>0.05). After freezing, the extracellular ROS levels in the frozen-thawed groups were significantly higher (p<0.05) than in the fresh group. However, we did not find any differences in intracellular ROS parameters among these groups (p>0.05). The SDF was higher in the SuV and Vapor groups than in the fresh group, but without statistical significance (p=0.075 and p=0.077, respectively). Conclusion: Cryopreservation had detrimental effects on sperm motility, viability, and extracellular ROS levels, without changing the morphology or intracellular ROS levels. Antioxidant supplementation was slightly effective in preventing SDF in frozen-thawed spermatozoa.
포유동물 수정란의 동결보존기술은 최근 기후 변화에 따른 생물종 다양성을 보존하기 위해서 중요하게 여겨지는 연구 분야이다. 따라서 멸실 위험에 처한 동물의 개량과 증식, 보존과 복원 및 생명공학의 분야에 이르기까지 응용 기술은 다양하게 이용되어진다. 본 연구에서는 한우 수정란의 동결 후 생존성 향상을 위해서 동결 방법에 따른 체내 외수정한의 내동성을 조사하였다. 완만동결에 따른 체내 외수정란의 동결 융해 후 수정란의 재확장률은 89.6%와 81.5% 그리고 72시간 배양하였을 때 부화된 수정란은 76.9%와 43.4%, 생존수정란의 총세포수는 136${\pm}$3.6개와 107${\pm}$3.8개의 결과를 보여 동결 융해 후 생존율에서는 차이를 보이지 않았으나, 수정란의 부화율과 세포수 조사에서는 체내수정란이 유의적으로(p<0.05) 높은 결과를 보였다. 체내수정란의 완만동결 후 배반포 회복률은 91.3% 그리고 12시간 이상 배양하였을 때 확장배반포까지의 발달률은 71.4%의 결과를 보였으며, 초자화 동경에서는 85.7%와 75.0%의 결과를 보였다. 결과적으로 본 연구에서 수행된 체내 외 수정란의 동결기술을 이용한다면 수정란이식 현장에서도 효과적인 활용이 가능할 것으로 사료된다.
Joo, Jong Kil;Lee, Young Ju;Jeong, Ju Eun;Kim, Seung Chul;Ko, Gyoung Rae;Lee, Kyu Sup
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제41권3호
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pp.115-119
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2014
Objective: This study was designed to investigate the survival rate of vitrified mouse blastocysts depending on the presence or absence of sucrose in vitrification solution. Methods: Mouse two-cell embryos were collected and cultured to blastocysts. Two vitrification solutions were prepared. The control solution was composed of 25% glycerol, 25% ethylene glycol, and 0.5 M sucrose (G25E250.5S) containing 2.5 mL glycerol, 2.5 mL ethylene glycol, 2 mL SSS, and 0.855 g sucrose in 5 mL PB1. The experimental solution was composed of 25% glycerol and 25% ethylene glycol (G25E25) and contained 2.5 mL glycerol and 2.5 mL ethylene glycol in 5 mL PB1. Artificial shrinkage was conducted by aspirating the blastocoelic fluid using an ICSI pipette. To examine the effect of sucrose in the vitrification solution on the survival rate of mouse blastocysts, the shrunken-equilibrated blastocysts were rehydrated or vitrified after being exposed to one of the two vitrification solutions. After exposure and the vitrification-thawing process, the re-expansion rate and hatching rate were evaluated after 6 hours of in vitro culture. Results: The re-expansion rate of mouse blastocysts exposed to vitrification solution with and without sucrose were not different in the experimental solution (without sucrose) (98%) and the control solution (with sucrose) (92%) (p>0.05). The hatching rate was higher in the experimental solution (95%) than in the control solution (88%), but did not differ across two treatments (p>0.05). The re-expansion rate of mouse blastocysts vitrified in the control solution was 92% and 94%, respectively (p>0.05), and the hatching rate was higher in the experimental solution (90%) than in the control solution (74%) (p<0.05). Conclusion: Sucrose need not be added in vitrification solution for freezing of artificially shrunken mouse blastocysts.
The advantages of the OPS techniques(Vajta G et al, Mol Reprod Dev 51: 53-58,1998) give 1) high survival rates of various types of eggs, 2) quick and simple process, 3) inexpensive equipment and reduced chilling injury. The efficiency of IVM/IVF technique in the porcine species is relatively lower than that obtained in other species such as ruminants. Two experiments were designed to investigate the effects of in-vitro fertilization of porcine oocytes matures using different OPS protocol for chilling and warming of vitrification. Porcine oocytes from ovaries collected at abattoir were matured for 44 hours in TCM199 Earle's salt supplemental with pyruvate, pff, L-cysteine, hormones and gentamycin. Oocytes were denuded and fertilized with frozen boar semen by common method. Porcine embryos produced routinely by in-vitro culture system of NCSU23 medium. The vitrification and the warming were conducted by OPS method with the glass micropipette instead of straw vessels and modified the protocol of G.Vajta(1999). In Exp 1, Chilling/Warming:Holding Medium(HM)+EG+DMSO/HM +sucrose Medium(SM) at 39$^{\circ}C$ warm stage. In Exp 2, : PBS+CS+EG+Ficoll+ Trehalose/PBS+Trehalose at 25$^{\circ}C$ stage. Filling, freezing, packing, thawing out and further culturing were performed to follow the basic protocol of G Vajta. During IVM-lVC and post-warming, fertilization parameter and developmental potential were compared to and statistically analysed. It was not significantly different from Exp 1 and Exp 2 but 25$^{\circ}C$ of stage was slightly higher on the morula/blastocyst forming rate and better atmosphere for worker than that at 39$^{\circ}C$ stage.
Vitrification methods are commonly used for mammalian reproduction through the long-term storage of blastocyst produced in vitro. However, the survival and quality of embryos following vitrification are significantly low compared with blastocyst from in vitro production (IVP). This study evaluates that the survival of frozen-thawed bovine embryos was relevant to mitochondrial superoxide derived mitochondrial activity. Here we present supplementation of the cryopreservation medium with Mito-TEMPO (0.1 µM) induced a significant (p < 0.001; non-treated group: 56.8 ± 8.7%, reexpanded at 24 h vs Mito-TEMPO treated group: 77.5 ± 8.9%, re-expanded at 24 h) improvement in survival rate of cryopreserved-thawed bovine blastocyst. To confirm the quality of vitrified blastocyst after thawing, DNA fragmentation of survived embryos was examined by TUNEL assay. As a result, TUNEL positive cells rates of frozen-thawed embryos were lower in the Mito-TEMPO treated group (4.2 ± 1.4%) than the non-treated group (7.1 ± 3.5%). In addition, we investigated the intracellular ROS and mitochondrial specific superoxide production using DCF-DA and Mito-SOX staining in survived bovine embryos following vitrification depending on Mito-TEMPO treatment. As expected, intracellular ROS levels and superoxide production of vitrified blastocysts after cryopreservation were significantly reduced (p < 0.05) according to Mito-TEMPO supplement in freezing medium. Also, mitochondrial activity measured by MitoTracker Orange staining increased in the frozen-thawed embryos with Mito-TEMPO compared with non-treated group. These results indicate that the treatment of Mito-TEMPO during cryopreservation might induce reduction in DNA fragmentation and apoptosis-related ROS production, consequently increasing mitochondrial activation for developmental capacity of frozen-thawed embryos.
연구목적: 본 연구는 동해방지제인 EFS40을 이용한 초자화동결이 생쥐 미성숙란의 cytoskeleton과 염색체의 성상에 미치는 영향을 indirect immunocytochemistry방법과 염색체 분석법으로 알아보고자 실시하였다. 연구재료 및 방법: 본 실험은 생쥐 미성숙란을 EFS40 (40% ethylene glycol, 18% ficou과 0.5 M sucrose가 들어있는 M2배양액)으로 초자화 동결하여 융해한 후 16시간동안 체외 성숙을 유도하여, 제 1극체가 나타난 성숙된 난자를 기준으로 동해제노출군 또는 대조군과 비교 조사하였다. 결과: 초자화동결된 미성숙란의 응해 후 생존율과 체외성숙율은 90.3%과 64.7%로써, 동해제노출군 (86.7%, 69.2%)과 대조군 (100%, 58.3%)에 유사하였다. 초자화동결이 미성숙란의 microtubule과 microfilament에 미치는 영향을 조사하였던 바, 동결군의 microtubule과 micro-filament의 정상적인 형성율 (93.9%, 100.0%)은 동해 제노출군 (94.4%, 100.0%)과 대조군 (100.0%, 100.0%)의 성적과 유사하게 나타났다. 또한, 초자화동결군에서 정상적인 염색체수를 가진 난자의 비율도 65.8%로써, 대조군(79.6%)과 노출군 (69.0%)의 결과와 유의한 차이가 없었다. 결론: 생쥐 미성숙란을 EFS40에 노출하고 동결하는 것이 미성숙란의 cytoskeleton과 염색체성상에 영향을 미치지 않으며, 본 연구에서 사용된 EFS40을 이용한 초자화동결법은 생쥐 미성숙란 동결에 적합하다는 것을 알 수 있었다.
Objective: While sperm freezing (cryopreservation) is an effective method for preserving fertility, it can potentially harm the structure and function of sperm due to an increase in the production of reactive oxygen species. This study aimed to assess the impact of zinc oxide nanoparticles (ZnONPs) and selenium oxide nanoparticles (SeONPs) on various sperm functional parameters, including motility, plasma membrane integrity (PMI), mitochondrial membrane potential (MMP), acrosome membrane integrity (ACi), and malondialdehyde (MDA) levels. Methods: Semen samples were collected from 20 Albino Wistar rats. These samples were then divided into six groups: fresh, cryopreservation control, and groups supplemented with SeONPs (1, 2, 5 ㎍/mL) and ZnONPs (0.1, 1, 10 ㎍/mL). Results: Statistical analysis revealed that all concentrations of SeONPs increased total motility and progressive reduction of MDA levels compared to the cryopreservation control group (p<0.05). However, supplementation with ZnONPs did not affect these parameters (p>0.05). Conversely, supplements of 1 and 2 ㎍/mL SeONPs and 1 ㎍/mL ZnONPs contributed to the improvement of PMI and ACi (p<0.05). Yet, no significant change was observed in MMP with any concentration of SeONPs and ZnONPs compared to the cryopreservation control group (p>0.05). Conclusion: The findings suggest that optimal concentrations of SeONPs may enhance sperm parameters during the freezing process.
In previous studies, we reported that sow which was transferred OPS-freezing embryos not able to deliver a piglet (Kim et al, 2004). This study was conducted to investigate a possibility of gilt as recipients which produce piglets after transfer of OPS-freezing embryos. All transferred embryos were prepared by in vitro production (IVP) system. In vitro culture (IVC) medium used glucose-free NCSU23 supplemented with 5mM sodium pyruvate, 0.5 mM sodium lactate and 4 mg/ml bovine serum albumin for 2 days at $39^{\circ}C$. From day 3 of IVC, 10% fetal bovine serum albumin was added to the culture medium. In preparing of freezing embryos, embryos were treated with 7.5 $\mu g/ml$ cytochalasin-B for 30 min and centrifuged at $13,000{\times}g$ for 13 min. And then, embryos were exposed sequentially to an ethylene glycol (EG) solution, aspirated into open pulled straw (OPS), and plunged or thawed into the liquid nitrogen. In embryo transfer (ET), we used two kinds of type (surgical method vs. non-surgical method). In surgical method of embryo transfer, $55\sim65$ embryo were transferred in both uterine horn of two recipient gilts by plastic straw. Non-surgical method which is like artificial insemination was performed on three gilts. Each 140 frozen embryos were transferred to two gilts and 40 fresh embryos to one gilt. Pregnancy establishment was shown one recipient at 45 days after ET. However, the one recipient was also aborted at 58 days after ET. These results suggest that gilts can be considered as a candidate of recipients for OPS-freezing embryo transfer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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