tRNA and 7SL RNA based antisense vehicles were prepared by inserting conserved anti-viral and anti-viroid domains. Anti-PVS coat protein leader sequence (ACPL) and antistructural antihairpin domain of PSTVd (AHII) were inserted in tRNA cassette; anti- zing finger domain of PVS, AHII and anti hop latent viroid ribozyme were inserted in 7SL RNA gene isolated from A. thaliana. These constructs were shown to be transcribed both, in in vitro and in in vivo conditions. However, it followed from our work that closely linked position of PoIII reference genes and PoIIII antisense genes within T-DNA lead to the impairment of RNA expression in transgenic plants. To assay in vivo transcription of antisense genes, hairy root potato cultures were established using h. tumefaciens A4-24 bearing both, Ri plasmid and PoIII-promoterless plant expression vectors with antisense RNA genes. Expression of antisense RNA in transgenic potato tissues was proven by specific RT-PCR reactions.
Kim, Mi-Sun;Kim, Hyun-Soon;Kim, Yoon-Sik;Baek, Kwang-Hyun;Moon, Jae-Sun;Choi, Do-Il;Joung, Hyouk;Jeon, Jae-Heung
The Plant Pathology Journal
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v.23
no.4
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pp.300-307
/
2007
Previously, a chloroplast-localized Cu,Zn superoxide dismutase (chCu,ZnSOD) was isolated from lily and the sense- and antisense- sequences of the lily chCu,ZnSOD were used to transform potato plants. Two selected lines, the sense- and anti-sense strand of transgenic plants, were further characterized for resistance to Erwinia carotovora, which is a severe pathogen affecting potato plants. Only the sense-strand transgenic potato, which contained less $O_2^{.-}$ and more $H_2O_2$ than wild-type and antisense-strand transgenic plants, showed increased resistance to E. carotovora. Additional studies using $O_2^{.-}$ or $H_2O_2$ scavengers in wild-type, sense-strand, and antisense-strand transgenic plants suggest that resistance to E. carotovora is induced by reduced $O_2^{.-}$ and is not influenced by $H_2O_2$. To the best of our knowledge, this report is the first study suggesting that resistance to E. carotovora is enhanced by reduced $O_2^{.-}$, and not by increased amounts of $H_2O_2$.
Anthocyanin, a phenolic compound, is a pigment that shows blue or red color in the fruit, petal and other tissues. It is an important factor in grape berry skin pigment and accumulates only in the skin. This skin-specific accumulation of anthocyanin has been reported to be regulated by the ufgt gene which encodes UDP-glucose: flavonoid 3-O-glucosyltransferase that participates in the biosynthesis of anthocyanin. The ufgt gene is expressed only in berry skin, while the other genes involved in the biosynthetic pathway are expressed in both skin and flesh tissues. In order to determine whether anthocyanin accumulation is primarily regulated by compartment of UFGT, a ufgt cDNA clone was isolated from grape berry, its open reading frame was ligated in pBI121 vector in either a sense or an antisense orientation under the control of the CaMV35S promoter and the recombinant constructs were incorporated into tobacco plants. Several transgenic lines were selected and characterized to determine the level of expression of the grapevine ufgt transcript and endogenous homologs of tobacco. Compared to the wild-type, the amount of anthocyanins in sense transgenic plants increased by 44%, while the amount of anthocyanins in antisense transgenic plants decreased by 88%. In addition, the color of flowers became intense in the sense transgenic plants. These results suggest that over-expression or repression of the ufgt gene affected the accumulation of anthocyanin in flowers of tobacco.
Transgenic tobacco plants were selected by using the transformation of putrescine N-methyltransferase(PMT) gene, the key enzyme in diverting polyamine metabolism towards the biosynthesis of nicotine. PMT was fused in reverse orientation to the CaMV 35S promoter of the plant expression vector pBTEX(pPAB3) to produce tobacco plants of low nicotine content. To compare nicotine content, only pBTEX vector and PMT gene which was fused in forward orientation to the CaMV 35S promoter(pPAB2) were also transformed to the leaf tobacco plants(Nicotiana tabacum cv. NC82 and N. tabacum cv. Br2l). The presence of sense- and antisense-PMT gene, and pBTEX vector in the transgenic plant was confirmed by genomic PCR.
Loss of chlorophyll is the visible symptom of leaf senescence and staygreen refers to the delayed leaf senescence in plants. The staygreen gene (SGR) in rice (Oryza sativa L.) has been identified as its mutation maintains greenness during leaf senescence, and encodes a chloroplast protein required for the initiation of chlorophyll breakdown in plants. In this study, we isolated a rice SGR-homologous gene in creeping bentgrass (Agrostis stolonifera L.), and transgenic creeping bentgrass plants were obtained by introducing pCAMBIA3301 vector harboring antisense SGR gene under control of the senescence-specific SAG12 promoter. Transgenic plants were selected by herbicide resistance assays and genomic integration of the transgenes was confirmed by PCR analysis. Subsequent analyses demonstrated the staygreen phenotype of the transgenic creeping bentgrass plants with decreased chlorophyll loss during leaf senescence. These results suggest that the antisense SGR expression in creeping bentgrass delays leaf senescence, which provides a way to develop genetically engineered turfgrass varieties with the commercially useful staygreen trait.
Embryogenic calluses derived from shoot apical meristem explants of sweetpotato were subjected to particle bombardment to generate transgenic plants for antisense expression of cDNAs encoding two different AGPase small subunit (ibAGP1 and ibAGP2). Plants were generated via somatic embryogenesis. PCR and Southern analysis demonstrated that the incorporation of ibAGP1 and ibAGP2 into the genome in an antisense orientation. Immunoblot analysis confirmed reduced levels of AGPase small subunit in transgenic plant leaves. Plants with both ibAGP1 and ibAGP2 produced a lower level of the protein than plants with ibAGP1 alone. iodine test demonstrated that transgenic plant leaves and storage root accumulated reduced amounts of starch. Iodine staining of leaf tissues indicated that transgenic plants accumulated less amount of starch than control. In accordance with western blot analysis, plants with both ibAGP1 and ibAGP2 accumulated a lower amount of starch than plants with ibAGP1 alone. Both transgenic plants exhibited a severely retarded growth, resulting in bare survival. It is suggested that disrupted expression of the gene encoding AGPase small subunit is lethal to the growth of sweetpotato contrast to other species including potato.
A full-length cDNA encoding dihydroflavonol 4-reductase (st-dfr) of potato was isolated by rapid amplification of cDNA ends, and their expression was investigated from purple-fleshed potato (Solanum tuberosum L. cv. Jashim). The st-dfr exists as a member of a small gene family and its transcripts was abundant in the order of tuber flesh, stem, leaf, and root. The expressions of st-dfr gene were light inducible and cultivar dependant. Transgenic potato plants harboring antisense st-dfr (AS-DFR) sequences were analyzed. The accumulation of mRNA was nearly completely inhibited as a result of introducing an AS-DFR gene under the control of the 35S CaMV promoter into the red tuber skin Solanum tuberosum L. cv. Desiree. The anthocyanin content of the tuber peels of the transgenic lines was dramatically decreased by up to 70%. The possible production of flavonols in the peels of AS-DFR transgenic potatoes was discussed.
Heat shock protein 70 (HSP70) is known as molecular chaperone, the fundamental protein participating in various processes, from nascent protein synthesis to protection of proteins during abiotic stresses and developmental programs. However, their biological functions in plants are not yet well known. Here, NtHSP70-1 (AY372069), HSP70 of Nicotiana tabacum induced by heat stress was investigated. To analyze the protective role of NtHSP70-1, transgenic tobacco plants, which constitutively overexpressed NtHSP70-1 as well as contained either the vector alone or having NtHSP70-1 in the antisense orientation, were constructed. The altered NtHSP70-1 levels in plants were confirmed by western blotting and transgenic sense lines exhibited tolerance to heat stress. Seedlings with the constitutively expressed NtHSP70-1 grew as green or healthy plants after heat stress. In contrast, transgenic vector or antisense lines exhibited yellowing of leaves or some delay in growth, which finally led to death. Evaluation of chlorophyll contents of heat-shocked transgenic tobacco seedlings indicated that NtHSP70-1 contributes to thermotolerance by preventing chlorophyll synthesis in plants.
Antisense construct of cDNA for senescencerelated ACC oxidase (CAO) cDNA isolated from carnation flowers were introduced into tobacco by Agrobacteriummediated transformation. The decreasing expression of NtACO and the reduction of ethylene production were observed in these transgenic lines. In contrast, the SAMDC transcripts and spermidine content were increased. The findings that higher content of spermidine in the ethylene suppressed transgenic plants compared with wild-type should be directly resulted in the enhancement of SAMDC activity followed by the increased accumulation of SAMDC transcript. To investigate the pathogenic response in these transgenic plants, wild-type and transgenic plants were inoculated with Phytophthora parasitica pv. nicotianae. Transgenic plants suppressing ethylene production showed the increased resistance against fungal pathogen, comparing with wild-type plant. PR-protein genes expression in CAO-AS-2 and CAOAS-4 were also higher at the normal growth condition and pathogenic response than in wild-type plants. The results of higher spermidine content and SAMDC activity in transgenic plants, CAO-AS-2 and CAO-AS-4, support the possibility that an increase in spermidine content might induce the higher transcripts of PR-protein genes. This results agreed with the phenomena that spermidine promoted the expression of PR1a and a SAMDC inhibitor, MGBG, decreased the expression of PR1a in leaf discs. These results suggest that the resistance against fungal pathogen in transgenic tobacco impaired in ethylene production might be caused by increasing in polyamine, especially spermidine, biosynthesis.
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