Lee, Jeong-Oog;Kim, Eunji;Kim, Ji Hye;Hong, Yo Han;Kim, Han Gyung;Jeong, Deok;Kim, Juewon;Kim, Su Hwan;Park, Chanwoong;Seo, Dae Bang;Son, Young-Jin;Han, Sang Yun;Cho, Jae Youl
Journal of Ginseng Research
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v.42
no.3
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pp.389-399
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2018
Background: The antioxidant effects of Panax ginseng have been reported in several articles; however, little is known about the antimelanogenesis effect, skin-protective effect, and cellular mechanism of Panax ginseng, especially of P. ginseng calyx. To understand how an ethanol extract of P. ginseng berry calyx (Pg-C-EE) exerts skin-protective effects, we studied its activities in activated melanocytes and reactive oxygen species (ROS)-induced keratinocytes. Methods: To confirm the antimelanogenesis effect of Pg-C-EE, we analyzed melanin synthesis and secretion and messenger RNA and protein expression levels of related genes. Ultraviolet B (UVB) and hydrogen peroxide ($H_2O_2$) were used to induce cell damage by ROS generation. To examine whether this damage is inhibited by Pg-C-EE, we performed cell viability assays and gene expression and transcriptional activation analyses. Results: Pg-C-EE inhibited melanin synthesis and secretion by blocking activator protein 1 regulatory enzymes such as p38, extracellular signal-regulated kinases (ERKs), and cyclic adenosine mono-phosphate response element-binding protein. Pg-C-EE also suppressed ROS generation induced by $H_2O_2$ and UVB. Treatment with Pg-C-EE decreased the expression of matrix metalloproteinases, mitogen-activated protein kinases, and hyaluronidases and increased the cell survival rate. Conclusion: These results suggest that Pg-C-EE may have antimelanogenesis properties and skin-protective properties through regulation of activator protein 1 and cyclic adenosine monophosphate response element-binding protein signaling. Pg-C-EE may be used as a skin-improving agent, with moisture retention and whitening effects.
PU.1, a tissue-specific transcription activator, binds to a purine-rich sequence(5'-GAGGAA-3') called PU box. The PU.1 cDNA consists of an open reading frame of 816 nucleotides coding for 272 amino acids. The amino terminal end is highly acidic, while the carboxyl terminal end is highly basic. Transcriptional activation domain is located at the amino terminal end, while DNA binding domain is located at the carboxyl terminal end. Activation of PU.1 transcription factor is supposed to be accomplished by the phosphorylation of serine residue(s). There exist 22 serines in the PU.1. Five(the 41, 45, 132$.$133, and 148th) of the serines(plausible phosphorylation site by casein kinase II), are the primary targets of interest in elucidating the molecular mechanism(s) of the action of the PU.1 gene. In this study, PU.1 cDNA coding for the five serine residues(41th AGC, 45th AGC, 132$.$133th AGC$.$TCA, and 148th TCT), was mutated to alanine codon(41th GCC, 45th GCC, 132$.$133th GCC$.$GCA, and 1481h GCT), respectively, by Splicing-Overlapping-Extension(SOE) using Polymerase Chain Reaction(PCR). And each mutated cDNA fragments was ligated into pBluescript KS+ digested with HindIII and Xba I, to generate mutant clones named pKKS41A, pRKS45A, pMKS132$.$133A, and pMKS148A. The clones will be informative to study the "Structure and Function" of the immu-nologically important gene, PU.1.
The protozoan parasite, Entcmoeba histoIWticc, is one of major causative agents of intestinal disease all over the world. In acute experimental infection, the early host response to 5. histoIHtica is characterized by an infiltration of neutrophils. However, the chemotactic signal for this response is not well known. Based on the (jading that human epithelial cells produce the potent neutrophil chemoattractant and activator, interleukin-8 (IL-8), IL-8 gene expression was examined thoroughly in human colon epithelial cells exposed to 5. histolvtica trophozoites. Cellular RNAs were extracted from HT-29 or Caco-2 human colon epithelial cells exposed to 5. histoLvtica trophozoites for 30 minutes, 1 and 3 hours. IL-8 mRNA transcripts were measured by reverse transcriptional polprnerase chain reaction (RT-PCR) using synthetic standard RNA. The number of IL-8 mRNA molecules increased from 30 minutes to 3 hours of exposure period, reaching 3.1 H 107 molecules/ug of total RNA. Expression pattern of IL-8 mRNA transcripts was parallel to the amounts of IL-8 protein measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) . Lysates of 5. histoIVtica also induced expression of mRNA for IL-8 in colon epithelial cells. These results sugf:esc that acute inflammatory reaction by 5. histoIVticc may be initially triggered by proinflammatory cytokines such as IL-8 secreted from epithelial cells of the colon.
Park, Nohra;Song, Saemee;Choi, Garam;Jang, Kyung Ku;Jo, Inseong;Choi, Sang Ho;Ha, Nam-Chul
Molecules and Cells
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v.40
no.4
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pp.299-306
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2017
The transcriptional activator AphB has been implicated in acid resistance and pathogenesis in the food borne pathogens Vibrio vulnificus and Vibrio cholerae. To date, the full-length AphB crystal structure of V. cholerae has been determined and characterized by a tetrameric assembly of AphB consisting of a DNA binding domain and a regulatory domain (RD). Although acidic pH and low oxygen tension might be involved in the activation of AphB, it remains unknown which ligand or stimulus activates AphB at the molecular level. In this study, we determine the crystal structure of the AphB RD from V. vulnificus under aerobic conditions without modification at the conserved cysteine residue of the RD, even in the presence of the oxidizing agent cumene hydroperoxide. A cysteine to serine amino acid residue mutant RD protein further confirmed that the cysteine residue is not involved in sensing oxidative stress in vitro. Interestingly, an unidentified small molecule was observed in the inter-subdomain cavity in the RD when the crystal was incubated with cumene hydroperoxide molecules, suggesting a new ligand-binding site. In addition, we confirmed the role of AphB in acid tolerance by observing an aphB-dependent increase in cadC transcript level when V. vulnificus was exposed to acidic pH. Our study contributes to the understanding of the AphB molecular mechanism in the process of recognizing the host environment.
Objectives : The effects of aqueous extracts of Cortex ulmi pumilae (a traditional medicine for cancer treatment in oriental medicine) on the induction of apoptotic cell death were investigated in human liver origm hepatoma cell lines, HepG2. Methods : The death of HepG2 cells was markedly induced by the addition of extracts of Cortex ulmi pumilae in a dose-dependent manner. The apoptotic characteristic ladder pattern of DNA strand break was not observed in cell death of HepG2. In addition, it was not shown nucleus chromatin condensation and fragmentation under hoechst staining. However, by the using annexin V staining assay, externalizations of phosphatidylserine in HepG2 cell which were treated with Cortex ulmi pumilae extracts were detected in the early time (at 9 hr after extract treatment). Furthermore, LDH release was not detected in this early stage. Therefore, Cortex ulmi pumilae extracts-induced cell death of HepG2 cells is mediated by apoptotic death signal processes. Result : The activity of caspase 3-like proteases remained in a basal level in HepG2 cells which treated with the extract of Cordyceps sinensis. However, it was markedly increased in HepG2 cells which treated with two extracts of Cortex ulmi pumilae (C.U.P.-C, C.U.P.-K) which were differently extracted (respectively, 2.3 and 3.3 fold). On a while, the phosphotransferase activities of JNK1 was markedly induced in HepG2 cells which were treated with two extracts of Cortex ulmi pumilae. On the contrary, the activation of transcriptional activator, activating protein1(AP-1) and NF-kB were severely decreased by these two extracts of Cortex ulmi pumilae (C.U.P.-C, C.U.P.-K). In addition, antioxidants (GSH and NAC) and intracellular $Ca2^+$ level regulator (Bapta/AM and Thapsigargin) did not affect Cortex ulmi pumilae extracts-induced apoptotic death of HepG2 cells. Conclusions : In conclusion, our results suggest that two extracts of Cortex ulmi pumilae (C.U.P.-C, C.U.P.-K) induces the apoptotic death of human liver origin hepatoma HepG2 cells via activation of caspase 3-like proteases as well as JNK1, and inhibition of transcriptional activators, AP-1 and $NK-{\kappa}B$.
Notch1 has been reported to be highly expressed in triple-negative and other subtypes of breast cancer. Mutant p53 (R280K) is overexpressed in MDA-MB-231 triple-negative human breast cancer cells. The present study aimed to determine whether the mutant p53 can be a potent transcriptional activator of the Notch1 in MDA-MB-231 cells, and explore the role of this mutant p53-Notch1 axis in curcumin-induced apoptosis. We found that curcumin treatment resulted in an induction of apoptosis in MDA-MB-231 cells, together with downregulation of Notch1 and its downstream target, Hes1. This reduction in Notch1 expression was determined to be due to the decreased activity of endogenous mutant p53. We confirmed the suppressive effect of curcumin on Notch1 transcription by performing a Notch1 promoter-driven reporter assay and identified a putative p53-binding site in the Notch1 promoter by EMSA and chromatin immunoprecipitation analysis. Overexpression of mutant p53 increased Notch1 promoter activity, whereas knockdown of mutant p53 by small interfering RNA suppressed Notch1 expression, leading to the induction of cellular apoptosis. Moreover, curcumin-induced apoptosis was further enhanced by the knockdown of Notch1 or mutant p53, but it was decreased by the overexpression of active Notch1. Taken together, our results demonstrate, for the first time, that Notch1 is a transcriptional target of mutant p53 in breast cancer cells and suggest that the targeting of mutant p53 and/or Notch1 may be combined with a chemotherapeutic strategy to improve the response of breast cancer cells to curcumin.
Transcription factor AP-$2{\alpha}$ involves in the process of mammalian embryonic development and tumorigenesis. Many studies have shown that AP-$2{\alpha}$ functions in association with other interacting proteins. In a two-hybrid screening, the regulatory subunit ${\beta}$ of protein casein kinase 2 ($CK2{\beta}$) was identified as an interacting protein of AP-$2{\alpha}$; we confirmed this interaction using in-vitro GST pull-down and in-vivo co-immunoprecipitation assays; in an endogenous co-immunoprecipitation experiment, we further found the catalytic subunit ${\alpha}$ of protein casein kinase 2 ($CK2{\alpha}$) also exists in the complex. Phosphorylation analysis revealed that AP-$2{\alpha}$ was phosphorylated by CK2 kinase majorly at the site of Ser429, and such phosphorylation could be blocked by CK2 specific inhibitor 4,5,6,7-tetrabromobenzotriazole (TBB) in a dose-dependent manner. Luciferase assays demonstrated that both $CK2{\alpha}$ and $CK2{\beta}$ enhanced the transcription activity of AP-$2{\alpha}$; moreover, $CK2{\beta}$ increased the stability of AP-$2{\alpha}$. Our data suggest a novel cellular function of CK-2 as a transcriptional co-activator of AP-$2{\alpha}$.
Sulforaphane is a naturally occurring member of the iosothiocyanate family, which reveals chemopreventive capacities including anti-cancer, anti-inflammation and inhibition of MMP-9 activities. In this study, we investigated the effect of sulforaphane on the expression of matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) in lipopolysaccharide (LPS)-induced Raw 264.7 cells. Sulforaphane strikingly suppressed the LPS-induced MMP-9 activity and mRNA expression in a dose-dependent manner. In addition, sulforaphane inhibited not only the LPS-induced MMP-9 promoter activity but also LPS-mediated activator protein-1 (AP-1) and nuclear factor-kB (NF-${\kappa}B$) promoter activity. Transient transfection by MMP-9 constructs, in which specific transcriptional factors were mutagenized, indicated that the effects of LPS and sulforaphane were mediated via AP-1 and NF-${\kappa}B$ response elements. We found that sulforaphane had the ability to suppress LPS-induced invasion in vitro. Taken together, these results demonstrated that sulforaphane effectively suppressed LPS-induced MMP-9 expression via modulation of promoter elements (AP-1 and NF-${\kappa}B$) in MMP-9 transcriptional activation.
The DevSR two-component system is a major regulatory system involved in redox sensing in Mycobacterium smegmatis. The DevSR system consists of the DevS histidine kinase and its cognate DevR response regulator. When exposed to hypoxic conditions, the DevS histidine kinase is activated to phosphorylate the DevR response regulator, leading to the transcriptional activation of the DevR regulation. The ligand-binding state of the heme embedded in the N-terminal GAF domain of DevS determines the kinase activity of DevS. In this study, we demonstrated that the redox-responsive cysteine (C547) in the C-terminal kinase domain is involved in the redox-dependent control of DevS kinase activity. The formation of an intersubunit disulfide bond between the C547 residues in the presence of $O_2$ led to inactivation of DevS kinase activity. The reduction of the oxidized DevS with reductants such as $\beta$-mercaptoethanol and dithiothreitol resulted in the restoration of DevS kinase activity. It was demonstrated in vivo by complementation test that the substitution of C547 to alanine partially impaired the sensory function of DevS in M. smegmatis.
Disruptive expression patterns of the circadian clock genes are highly associated with many human diseases, including cancer. Cell cycle and proliferation is linked to a circadian rhythm; therefore, abnormal clock gene expression could result in tumorigenesis and malignant development. The molecular network of the circadian clock is based on transcriptional and translational feedback loops orchestrated by a variety of clock activators and clock repressors. The expression of 10~15% of the genome is controlled by the overall balance of circadian oscillation. Among the many clock genes, Period 1 (Per1) and Period 2 (Per2) are clock repressor genes that play an important role in the regulation of normal physiological rhythms. It has been reported that PER1 and PER2 are involved in the expression of cell cycle regulators including cyclins, cyclin-dependent kinases (CDKs), and CDK inhibitors. In addition, correlation of the down-regulation of PER1 and PER2 with development of many cancer types has been revealed. In this review, we focused on the molecular function of PER1 and PER2 in the circadian clock network and the transcriptional and translational targets of PER1 and PER2 involved in cell cycle and tumorigenesis. Moreover, we provide information suggesting that PER1 and PER2 could be promising therapeutic targets for cancer therapies and serve as potential prognostic markers for certain types of human cancers.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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