International journal of advanced smart convergence
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제7권1호
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pp.48-63
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2018
The combination of Simian Virus40 (SV40)'s large T antigen with its replication origin is commonly used in molecular studies to enhance the expression of heterogeneous genes through multiplying the plasmid copy number. There are no reports related to the impact of the SV40 T antigen on plant, multiple fissional, cell-type. This study explores the response of two multiple-fission microalgal cells, Scenedesmus quadricauda and Chlorella vulgaris, to the expression of the T-antigen, with aim of applying SV40 T-antigen to increase the expression efficiency of foreign genes in the two species. Different levels of low-expression have been constructed to control the expression of SV40 T antigen using three heterogenous promoters (NOS, CaMV35S, and CMV). Chlorella cultures showed slowdown in the growth rate for samples harboring the T antigen under the control of CaMV35S and CMV promoters, unlike Scenedesmus cultures which showed no significant difference between samples and could have silenced the expression.
Autoimmune disease is known to be caused by unregulated self-antigen-specific T cells, causing tissue damage. Although antigen specificity is an important mechanism of the adaptive immune system, antigen non-related T cells have been found in the inflamed tissues in various conditions. Bystander T cell activation refers to the activation of T cells without antigen recognition. During an immune response to a pathogen, bystander activation of self-reactive T cells via inflammatory mediators such as cytokines can trigger autoimmune diseases. Other antigen-specific T cells can also be bystander-activated to induce innate immune response resulting in autoimmune disease pathogenesis along with self-antigen-specific T cells. In this review, we summarize previous studies investigating bystander activation of various T cell types (NKT, γδ T cells, MAIT cells, conventional CD4+, and CD8+ T cells) and discuss the role of innate-like T cell response in autoimmune diseases. In addition, we also review previous findings of bystander T cell function in infection and cancer. A better understanding of bystander-activated T cells versus antigen-stimulated T cells provides a novel insight to control autoimmune disease pathogenesis.
The B-lymphocyte differentiation from committed B-cell progenitors to antibody-secreting cells was discussed. B-cell progenitors derived from hematopoietic stem cells undergo the rearrangement of immunoglobulin(Ig) gene. The earliest cells as B-cell precursors have cytoplasmic Is(${\mu}$ chain). The entire Is molecule is expressed on the surface after synthesis of L chain. The resting B cells(Go stage) stimulated by binding antigen via Ig-receptors are activated(G$_1$ stage) and followed by proliferation(S stage), coupled with further selection(affinity maturation. class switch). The production of antibody against a particular antigen depends on the activation of B cells with surface Is capable of reacting with that antigen. This process does not occur in isolation but is controlled by helper and suppressor T cells and antigen presenting cells(APC). The mechanism of T cell-dependent B-cell response for production of antibody is largely explained by the cell to cell cooperation and soluble helper factors of T cells. 1) The antigen specific B cells and helper T cells are linked by Is-receptors, leading to the delivery of helper signals to the B cells. 2) Helper T cells recognize the processed antigen-derived peptides with the MHC class II molecules(la antigen) and is stimulated to secrete B-cell proliferation and differentiation factors which activate B cells of different antigenic specificity. The two models are shown currently 1) At low antigen concentration, only the antigen-specific B cell binds antigen and presents antigen-derived peptides with la molecules to helper T cells, which are stimulated to secrete cytokines(IL-4, IL-5, etc.) and 2) At high antigen concentration, antigen-derived peptides are presented by specific B cells, by B cells that endocytose the antigens, as well as by APC Cytokines secreted from helper T cells also lead to the activation of B cells and even bystander B cells in the on- vironmment and differentiate them into antibody-secreting plasma cells.
항원은 병원체로부터 유래한 질병인자다. 생명체는 항원에 대항하는 방어계인 면역계를 가지고 있다. 항원은 식세포작용, 항체, 보체 활성화, NK세포 혹은 MHC 분자를 통한 세포독성 T세포와 같은 방법을 통해서 처리된다. 림프절은 스트로마세포와 3차원 네트워크를 통해서 구성되어 있다. Fibroblastic reticular cells (FRC)는 림프절 T zone에서 T세포와 상호작용한다. FRC는 세포외 기질 생산과 homing 케모카인을 생산하여 감염에 대비한다. 하지만, FRC가 항원처리과정에 관련되어있다는 보고는 없다. 본 연구는 FRC의 항원처리 관련성에 대한 연구이다. 이를 위해 FRC는 대식세포, T세포, LPS, 그리고 TNFα와 같은 다양한 감염상황에 노출시켜 연구를 진행하였다. FRC가 대식세포 및 T세포와 공배양 했을 때 FRC가 형태적 변화와 FRC간 빈 공간 형성이 관찰 되었다. MMP 활성은 Y27632와 T세포에 의해 조절 되었다. 더욱이, 염증물질인 TNFα를 FRC에 처리 후 마이크로어레이를 통한 결과에서 부착분자와 MHC I antigen transporter의 발현을 조절하는 것으로 나타났다. FRC 단일층에 LPS와 대식 세포를 공배양 했을 때 NO 생성력이 크게 향상되었다. GFP antigen을 FRC와 대식세포 공배양군에 처리 했을 때 항원 흡수율이 증가되었다. 이러 결과는 FRC가 항원처리에 관여하고 있다는 것을 의미하며 이는 림프절이 항원처리과정에 연관되어 있다는 것을 제시한다.
The advent of the major histocompatibility complex (MHC) multimer technology has led to a breakthrough in the quantification and analysis of antigen-specific T cells. In particular, this technology has dramatically advanced the measurement and analysis of CD8 T cells and is being applied more widely. In addition, the scope of application of MHC multimer technology is gradually expanding to other T cells such as CD4 T cells, natural killer T cells, and mucosal-associated invariant T cells. MHC multimer technology acts by complementing the T-cell receptor-MHC/peptide complex affinity, which is relatively low compared to antigen-antibody affinity, through a multivalent interaction. The application of MHC multimer technology has expanded to include various functions such as quantification and analysis of antigen-specific T cells, cell sorting, depletion, stimulation to replace antigen-presenting cells, and single-cell classification through DNA barcodes. This review aims to provide the latest knowledge of MHC multimer technology, which is constantly evolving, broaden understanding of this technology, and promote its widespread use.
Among the therapeutic strategies in cancer immunotherapy-such as immune-modulating antibodies, cancer vaccines, or adoptive T cell transfer-T cells have been an attractive target due to their cytotoxicity toward tumor cells and the tumor antigen-specific binding of their receptors. Leveraging the unique properties of T cells, chimeric antigen receptor-T cells and T cell receptor (TCR)-T cells were developed through genetic modification of their receptors, enhancing the specificity and effectiveness of T cell therapy. Adoptive cell transfer of chimeric antigen receptor-T cells has been successful for the treatment of hematological malignancies. To expand T cell therapy to solid tumors, T cells are modified to express defined TCR targeting tumor associated antigen, which is called TCR-T therapy. This review discusses anti-tumor T cell therapies, with a focus on engineered TCR-T cell therapy. We outline the characteristics of TCR-T cell therapy and its clinical application to non-hematological malignancies.
인체 적응 면역 반응을 일으키는데 중요한 항원 특이적 T 세포를 활용한 면역 세포 치료에서 T 세포를 체외에서 배양하고 클론 확장시키는 과정은 매우 섬세하고 복잡하여 조절하기가 쉽지 않아 T 세포의 활성화와 클론 확장을 유도하면서도 조절 및 취급이 용이한 인공 항원제시세포 개발의 필요성이 대두되고 있다. 인공 항원제시세포는 인체의 항원제시세포의 세포 표면 분자와 작용을 모방하게 되는데, 기본적인 신호 분자인 MHC-항원 복합체, 공동 자극 분자, 그리고 용해성 면역 조절 분자를 필수적으로 발현하여야 한다. 또한 T 세포가 항원과 접촉할 때, 이들 분자들이 잘 조직화되어 작용하는 것이 효과적인 T 세포 활성화에 중요하다. 본 논문에서는 여러 인공 항원제시세포 제작 방법과 세포 표면 분자들의 결합 방법과 물리적인 특성이 T 세포와의 상호작용에 중요함을 고찰하였으며, 효과적인 T 세포 활성화를 유도하며 면역세포치료에 적용 가능한 인공항원제세세포의 제작 방법을 살펴보았다.
Kim, Min-Ju;Mao, Jie;Kang, Hae-Ji;Chu, Ki-Back;Quan, Fu-Shi
Parasites, Hosts and Diseases
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제59권6호
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pp.565-572
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2021
Toxoplasma gondii ME49 infections are typically diagnosed by serological tests. However, serological diagnosis of RH strain-induced toxoplasmosis remains unknown. In order to develop seradiagnosis of above 2 kinds of infections, we generated recombinant virus-like particles (VLPs) displaying the T. gondii rhoptry protein 4 (ROP4) and evaluated their potential in T. gondii ME49 or RH strain infection diagnostics. Mice were orally infected with either the tachyzoites of T. gondii (RH) or cysts of T. gondii (ME49) at various dosages, and sera were collected at regular intervals. ELISA-based serological tests were performed to assess IgG, IgM, and IgA antibody responses against ROP4 VLP antigen and tissue lysate antigen (TLA). Compared to TLA, IgG, IgM, and IgA levels to ROP4 VLP antigen were significantly higher in the sera of T. gondii RH-infected mice 1 and 2 week post-infection (PI). T. gondii-specific IgG antibody was detected at 1, 2, 4, and 8 week PI in the T. gondii ME49-infected mice with infection dose-dependent manner. These results indicated that the ROP4 VLP antigen was highly sensitive antigens detecting T. gondii RH and ME49 antibodies at an early stage.
Background: Identification of antigen-specific T cells has yielded valuable information on pathologic process and the disease state. Assays for quantification of inflammatory cytokines or lytic-granule molecules have been generally used to evaluate antigen specific T cell response, however their applicability have been hampered due to the limited source of autologous antigen-presenting target cells (APC). Methods: K562, a leukemic cell line deficient of human leukocyte antigen (HLA), was transfected with a gene encoding HLA-A*02 (K562/ A*02) and its function as stimulator cells in inducing activation of HLA-matched T cells was evaluated by IFN-${\gamma}$ enzyme linked immunospot (ELISPOT) assay. Results: The stable transfectant K562/ A*02 pulsed with HLA- A*02 restricted peptide could specifically induce IFN-${\gamma}$ secretion by CD8+ T cells compared to no detectable secretion by CD4+ T cells. However, CD56+ NK cells secreted IFN-${\gamma}$ in both K562/ A*02 with peptide and without peptide. The number of IFN-${\gamma}$ secreted CD8+ T cells was increased according to the ratio of T cells to K562 and peptide concentration. Formalin-fixed K562/ A*02 showed similar antigen presenting function to live K562/ A*02. Moreover, K562/ A*02 could present antigenicpeptide to not only A*0201 restricted CD8+ T cells but also CD8+ T cells from A*0206 donor. Conclusion: These results suggest that K562/ A*02 could be generally used as target having specificity and negligible background for measuring CD8+ T cell responses and selective use of K562 with responsder matched HLA molecules on its surface as APC may circumvent the limitation of providing HLA-matched autologous target cells.
Han, Young-Woo;Aleyas, Abi G.;George, Junu A.;Yoon, Hyun-A;Lee, John-Hwa;Kim, Byung-Sam;Eo, Seong-Kug
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권12호
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pp.1955-1964
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2007
A recent report showed that analysis of CD154 expression in the presence of the secretion inhibitor Brefeldin A (Bref A) could be used to assess the entire repertoire of antigen-specific $CD4^+\;T$ helper cells. However, the capacity of intracellular CD154 expression to identify antigen-specific $CD8^+\;T$ cells has yet to be investigated. In this study, we compared the ability of intracellular CD154 expression to assess antigen-specific $CD8^+\;T$ cells with that of accepted standard assays, namely intracellular cytokine IFN-${\gamma}$ staining (ICS) and MHC class I tetramer staining. The detection of intracellular CD154 molecules in the presence of Bref A reflected the kinetic trend of antigen-specific $CD8^+\;T$ cell number, but unfortunately showed less sensitivity than ICS and tetramer staining. However, ICS levels peaked and saturated 8 h after antigenic stimulation in the presence of Bref A and then declined, whereas intracellular CD154 expression peaked by 8 h and maintained the saturated level up to 24 h post-stimulation. Moreover, intracellular CD154 expression in antigen-specific $CD8^+\;T$ cells developed in the absence of $CD4^+\;T$ cells changed little, whereas the number of IFN-${\gamma}$-producing $CD8^+\;T$ cells decreased abruptly. These results suggest that intracellular CD154 could aid the assessment of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells, but does not have as much ability to identify heterogeneous $CD4^+\;T$ helper cells. Therefore, the combined analytical techniques of ICS and tetramer staining together with intracellular CD154 assays may be able to provide useful information on the accurate phenotype and functionality of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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