Accurate and rapid detection of bacterial plant pathogen is the first step toward disease management and prevention of pathogen spread. Bacterial plant pathogens Clavibacter michiganensis subsp. nebraskensis (Cmn), Pantoea stewartii subsp. stewartii (Pss), and Rathayibacter tritici (Rt) cause Goss's bacterial wilt and blight of maize, Stewart's wilt of maize and spike blight of wheat and barley, respectively. The bacterial diseases are not globally distributed and not present in Korea. This study adopted comparative genomics approach and aimed to develop specific primer pairs to detect these three bacterial pathogens. Genome comparison among target pathogens and their closely related bacterial species generated 15-20 candidate primer pairs per bacterial pathogen. The primer pairs were assessed by a conventional PCR for specificity against 33 species of Clavibacter, Pantoea, Rathayibacter, Pectobacterium, Curtobacterium. The investigation for specificity and sensitivity of the primer pairs allowed final selection of one or two primer pairs per bacterial pathogens. In our assay condition, a detection limit of Pss and Cmn was $2pg/{\mu}l$ of genomic DNA per PCR reaction, while the detection limit for Rt primers was higher. The selected primers could also detect bacterial cells up to $8.8{\times}10^3cfu$ to $7.84{\times}10^4cfu$ per gram of grain seeds artificially infected with corresponding bacterial pathogens. The primer pairs and PCR assay developed in this study provide an accurate and rapid detection method for three bacterial pathogens of grains, which can be used to investigate bacteria contamination in grain seeds and to ultimately prevent pathogen dissemination over countries.
Background: Korean ginseng is an important cash crop in Asian countries. However, plant yield is reduced by pathogens. Among the Ilyonectria radicicola-species complex, I. mors-panacis is responsible for root-rot and replant failure of ginseng in Asia. The development of new methods to reveal the existence of the pathogen before cultivation is started is essential. Therefore, a quantitative real-time polymerase chain reaction method was developed to detect and quantify the pathogen in ginseng soils. Methods: In this study, a species-specific histone H3 primer set was developed for the quantification of I. mors-panacis. The primer set was used on DNA from other microbes to evaluate its sensitivity and selectivity for I. mors-panacis DNA. Sterilized soil samples artificially infected with the pathogen at different concentrations were used to evaluate the ability of the primer set to detect the pathogen population in the soil DNA. Finally, the pathogen was quantified in many natural soil samples. Results: The designed primer set was found to be sensitive and selective for I. mors-panacis DNA. In artificially infected sterilized soil samples, using quantitative real-time polymerase chain reaction the estimated amount of template was positively correlated with the pathogen concentration in soil samples ($R^2=0.95$), disease severity index ($R^2=0.99$), and colony-forming units ($R^2=0.87$). In natural soils, the pathogen was recorded in most fields producing bad yields at a range of $5.82{\pm}2.35pg/g$ to $892.34{\pm}103.70pg/g$ of soil. Conclusion: According to these results, the proposed primer set is applicable for estimating soil quality before ginseng cultivation. This will contribute to disease management and crop protection in the future.
This study was undertaken to develop PCR primers for the identification and detection of Streptococcus anginosus using species-specific forward and reverse primers. These primers targeted the variable regions of the 16S ribosomal RNA coding gene(rDNA). The primer specificity was tested against 12 S. anginosus strains and 6 different species(10 strains) of oral bacteria. The primer sensitivity was determined by testing serial dilutions of the purified genomic DNA of S. anginosus ATCC $33397^T$. The data showed that species-specific amplicons were obtained from all the S. anginosus strains tested, but not in the six other species. The PCR could detect as little as 0.4pg of the chromosomal DNA from S. anginosus. This suggests that the PCR primers are highly sensitive and applicable to the detection and identification of S. anginosus.
Harmful Cochlodinium polykrikoides is a notorious harmful algal bloom (HAB) species that is causing mass mortality of farmed fish along the Korean coast with increasing frequency. We analyzed the sequence of the large subunit (LSD) rDNA D1-D3 region of C. polykrikoides and conducted phylogenetic analyses using Bayesian inference of phylogeny and the maximum likelihood method. The molecular phylogeny showed that C. polykrikoides had the genetic relationship to Amphidinium and Gymnodinium species supported only by the relatively high posterior probabilities of Bayesian inference. Based on the LSU rDNA sequence data of diverse dinoflagellate taxa, we designed the C. polykrikoides-specific PCR primer set, CPOLY01 and CPOLY02 and developed PCR detection assays for its sensitive, accurate HAB monitoring. CPOLY01 and CPOLY02 specifically amplified C. polykrikoides and did not cross-react with any dinoflagellates tested in this study or environmental water samples. The effective annealing temperature $(T_{p})$ of CPOLY01 and CPOLY02 was $67^{\circ}C$. At this temperature, the conventional and nested PCR assays were sensitive over a wide range of C. polykrikoides cell numbers with detection limits of 0.05 and 0.0001 cells/reaction, respectively.
Kim, Hyun-Chul;Kim, Yun-Tae;Kim, Hyogyeong;Lee, Sanghoo;Lee, Kyoung-Ryul;Kim, Young-Jin
Journal of Life Science
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v.24
no.4
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pp.361-369
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2014
Broad-range and specific 16S rRNA gene PCR is used for detection and identification of bacterial pathogens in clinical specimens from patients with a high suspicion for infection. We describe the development of a broad-range and specific PCR primer, based on bacterial 16S rRNA, for use in routine diagnostic clinical microbiology services. The primers were designed by using conservative regions of 16S rRNA sequences from 10 strains. Ninety-eight clinical strains were isolated from clinical patient specimens. A total of 98 strains of bacteria were identified by phenotypic methods; PCR with newly designed primers and universal primers. All purified PCR products were sequenced using both forward and reverse primers on an automated DNA analyzer. In this study, we evaluated the usefulness of the newly designed primers and the universal primers for the detection of bacteria, and both these techniques were compared with phenotypic methods for bacteria detection. When we also tested 98 strains of clinical isolates with newly designed primers, about 778 bp DNA fragments were amplified and identified from all strains. Of the 98 strains, 94 strains (95.9%) correspond in comparison with phenotypic methods. The newly designed primers showed that the identities of 98 (100%) strains were the same as those obtained by universal PCR primers. The overall agreement between the newly designed primers and universal primers was 100%. The primer set was designed for rapid, accurate, and cheap identification of bacterial pathogens. We think the newly designed primer set is useful for the identification of pathogenic bacteria.
Bacterial wihte enteritis ocurred by infection of V. ichthyoenteri is a devastating disease in olive flounder (Paralichthys olivaceus) hatcheries in Korea. Since white enteritis has been a problem in aquqtic industries, necessity of a rapid detection method is increased. In an attempt to develop rapid PCR method the detection of V. ichthyoenteri, we examined the 16S-23S rRNA intergenic spacer region(ISR) of V. ichthyoenteri and developed species-specific primer for V. ichthyoenteri. The intergenic spacers were amplified by primers complementary to conserved region of 16S and 23S rRNA genes. The intergenic spacer region between the 16S and 23S rRNA genes of V. ichthoenteri were investigated by PCR fragment length typing and DNA sequencing. Analysis of the ISR sequences showed that V. ichthyoenteri contains one types of polymorphic ISRs. The size of ISRs ranged 348bp length and not contains tRNA genes. Mutiple alignment of representative sequences from different Vibrio species revealed several domains of high sequence variability, and allowed to design species-specific primer for detection of Vibrio ichthyoenteri. PCR. The specific of the primer was examined using genomic DNA prepared from 19 different Vibrio species, isolated 18group Vibrio species. The results showed that the PCR reaction using species-specific primer designed in this study can be used to detect V. ichthyoenteri.
Kim, Su Cheol;Kim, Hye Soo;Cho, Yong Un;Ryu, Jae-San;Cho, Soo Jeong
Journal of Mushroom
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v.13
no.1
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pp.79-83
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2015
In this study, SCAR marker that differentiates Pleurotus eryngii strains with higher ${\beta}$-glucan from control strain was developed. Genomic DNAs of 9 control strains of Pleurotus eryngii and 9 Pleurotus eryngii strains with higher ${\beta}$-glucan were analyzed by bulked segregant analysis (BSA) using randomly amplified polymorphic DNA (RAPD). One-hundred twenty RAPD primers were screened on bulked DNA samples and a unique DNA fragment with the size of 91 bp was yielded by OP-R03 primer from the Pleurotus eryngii strains with higher ${\beta}$-glucan. A sequence characterized amplified region (SCAR) marker, designated as OP-R03-1-F and OP-R03-1-R, was designed on the basis of the determined sequence. The PCR analysis with the OP-R03-1 primer showed that this SCAR marker can clearly distinguish the Pleurotus eryngii strains with higher ${\beta}$-glucan from the control strains.
Kim, Su Cheol;Kim, Hye Soo;Park, So Yeon;Ryu, Jae-San;Cho, Soo Jeong
Journal of Mushroom
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v.12
no.3
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pp.226-231
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2014
In this study, SCAR marker that differentiates Pleurotus eryngii strains adaptable to high-temperature from control strain was developed. Genomic DNAs of 7 control strains of Pleurotus eryngii and 7 Pleurotus eryngii strains adaptable to high-temperature were analyzed by bulked segregant analysis (BSA) using randomly amplified polymorphic DNA (RAPD). Onehundred twenty RAPD primers were screened on bulked DNA samples and a unique DNA fragment with the size of 385 bp was yielded by OP-A06 primer from the Pleurotus eryngii strains adaptable to high-temperature. A sequence characterized amplified region (SCAR) marker, designated as OP-A06-1-F and OP-A06-1-R, was designed on the basis of the determined sequence. The PCR analysis with the OP-A06-1 primer showed that this SCAR marker can clearly distinguish the Pleurotus eryngii strains adaptable to high-temperature from the control strains.
The principal objective of this study was to develop the optimum oligonucleotide primers for the simple detection of Campylobacter in food samples. In order to achieve this goal, a variety of oligonucleotide primers were designed via the modification of 16S rDNA, ceuE and mapA sequences of Campylobacter. Through the subsequent analysis of the specificity and sensitivity of primers, two types of oligonucleotide primers, CB4 and CJ1, were selected for Campylobacter genus-specific and C. jejuni species-specific primers, respectively. The detection limit was found to be $10^0{\sim}10^1$ cells per reaction with the prepared cell suspension, however, the sensitivity in the meat samples was less, at $10^1{\sim}10^2$. We suggested that PCR inhibitors such as hemoglobin or immunoglobulin in pork or beef influenced.
Cytoplasmic male sterility (CMS) induced by mutant mitochondria genome, has been used for commercial seed production of $F_1$ hybrid cultivars in diverse crops. In pepper (Capsicum annuum L.), two sterile cytoplasm specific gene organization, atp6-2 and coxII were identified. An open reading frame, orf456 nearby coxII gene has been speculated to induce male sterility (MS) by mutagenic analysis. Moreover, molecular markers for atp6-2 and coxII of mitochondrial genotype (mitotype) were developed. However, the Cytoplasmic MS specific markers, atp6SCAR and coxIISCAR markers appeared in both N and S cytoplasms when polymerase chain reaction (PCR) cycles prolonged more than 40 cycles. Since the reported molecular markers were dominant markers, the presence of the faint sterile-specific band in normal cytoplasm may lead to the mis-classification of pepper breeding lines. To solve this problem, one common forward primer and two different reverse primers specific to normal coxII and sterile orf456 genes were designed after analyzing their gene organizations. By using these three primers, N and S coxII specific bands were co-amplified in male-sterile lines, but only normal coxII specific band was amplified in maintainer lines. Since the reverse primer for sterile coxII was specifically designed 275 bp downstream of orf456, relatively stable PCR amplification patterns were observed regardless of the number of PCR cycles. These primer sets easily identified different mitotypes among the divergent breeding lines, commercial cultivars and diverse germplasms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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