We have got several clones from Serratia marcescens which stimulated the cells to use maltose as a carbon source in Escherichia. coli TP2139 ( lac, crp). One of the cloned genes, pCKB17, was further analyzed. In order to find whether the increased expression of the gent was under the direction of maltose metabolism, we constructed several recombinant subclones. We have found that the clone, pCKB17AV, codes maltose metabolism stimulation(mms) gene. E. coli transformed with the cloned gene showed increase in the activity of maltose utilzation, The recombinant proteins expressed by multicopy and induction with IPTG, one polypeptide of 29-kDa, was confirmed by SDS-PAGE. The overexpression of maltose-binding proter protein in the presence of mms gene was confirmed by Western blot analysis. Southern hybridization analysis confirmed that the cloned DNA fragment was originated from S. marcescens chromosomal DNA.
The nucleotide sequence of pZMO1, a small cryptic plasmid of Zymomonas mobilis ATCC10988 was determined. Analysis of 1,680 bp of sequence revealed $69\%$ identity with Shigella sonnei plasmid, pKYM and $61\%$ identity with Nostoc sp. ss DNA replicating plasmid. Analysis of a deduced amino acid sequence of an orf of pZMO1 revealed $75\%$ identity and $90\%$ similarity with the repA gene of Synechocystis sp. plasmid pCA2.4. The upstream region of the repA gene of pZMO1 possesses six directed repeat sequences and two inverted repeat sequences at downstream of the IR consensus sequence of nick region of rolling circle replication (RCR) plasmid. A typical terminator hairpin structure was found at the downstream region of repA gene. Degradation of single-stranded plasmid DNA by S1 nuclease was detected by Southern hybridization. It suggests that pZMO1 replicates by a rolling circle mechanism in Z. mobilis ATCC10988 cells.
Kim, Ji-Seong;Seo, Sang-Gyu;Jun, Byung-Ki;Kim, Jin-Won;Kim, Sun-Hyung
The Plant Pathology Journal
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v.26
no.3
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pp.289-292
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2010
This study used a modified cetyltrimethylammonium bromide (CTAB) method to efficiently extract DNA from the plant pathogenic fungus Cercospora sojina. Total DNA yield obtained by this method was approximately 1 mg/g of mycelia (fresh weight), and the mean ratio of A260/A280 and A260/A230 were 2.04 and 2.1, respectively. The results of random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis, digestion with restriction enzymes, and Southern hybridization indicated that polysaccharides were effectively removed by this method, and the resulting DNA was sufficient for use in subsequent molecular analysis.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2001.06a
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pp.118-119
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2001
A Southern-hybridization analysis and size-selected DNA library screening led to the isolation of a 6.3-kbp S. setonii DNA fragment, from which the Cl20-encoding genetic locus was found to be located within a 1.4-kbp DNA fragment. A complete nucleotide sequencing analysis of the 1.4-kbp DNA fragment revealed a 0.84-kbp ORF, which showed a strong overall amino acid similarity to the known high-G+C gram-positive bacterial mesophilic C120s. The heterologous expression of the cloned 1.4-kbp DNA fragment in E. coli demonstrated that this Cl20 possessed a thermophilic activity within a broad temperature range and showed a higher activity against 3-methy1catechol than catechol or 4-methy-catechol, but no activity against protocatecuate.
Xanthomonas campestris pv. glycines causes bacterial pustule disease on susceptible soybean leaves and produces a bacteriocin, named glycinecinA, against most xanthomonads including Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. One of the 5 isolated DNA regions responsible for bacteriocin production, a 1.7 kb DNA region for the glycinecinA gene, was used as a probe to detect the presence of the homolog DNA in other bacterial strains. Among 55 bacterial strains tested, only X. campestris pv. glycines showed the positive signal with glycinecinA DNA. Two oligomers, heu2 and heu4, derived from a glycinecinA DNA were used to carry out the polymerase chain reaction (PCR) analysis with chromosomal DNA from 55 different bacterial strains including 24 different strains of X. campestris pv. glycines, 9 different pathovars of xanthomonads, and other 22 bacterial strains of different genus and species. By separation of the PCR products on agarose gel, a 0.86 kb DNA fragment was specifically detected when X. campestris pv. glycines was present in the amplification assay. The 0.86 kb fragment was not amplified when DNA from other bacteria was used for the assay. Southern analysis with glycinecinA DNA showed that the PCR signal was obtained with X. campestris pv. glycines isolates from various geographic regions and soybean cultivars. Therefore, the 1.7 kb DNA region for the glycinecinA gene can be used for the pathovar-specific probe for the DNA hybridization and the primers heu2 and heu4 can be used for the pathovar-specific primers for the PCR analysis to detect X. campestris pv. glycines.
The RAD3 gene of Saccharomyces cerevisiae is essential for the incision step of UV-induced excision repair. An yeast RAD3 gene has been previously isolated by functional complementation. In order to identify the RAD3 homologous gene from fungus Coprinus cinereus, we have constructed cosmid libraries from electrophoretically separated chromosomes of the C. cinereus. The 13 C. cinereus chromosomes were resolved by pulse-field gel electrophoresis, hybridized with S. cerevisiae RAD3 DNA, and then isolated RAD3 homologous DNA from C. cinereus chromosome. The RAD3 homolog DNA was contained in 3.2 kb DNA fragment. Here, we report the results of characterization of a fungus C. cinereus homolog to the yeast RAD3 gene. Southern blot analysis confirmed that the C. cinereus chromosome contains the RAD3 homolog gene and this gene exists as a single copy in C. cinereus genome. When total RNA isolated from the C. cinereus cells were hybridized with the 3.4 kb PvuII DNA fragment of the S. cerevisiae RAD3 gene, transcripts size of 2.8 kb were detected. In order to investigate whether the increase of the amount of transcripts by DNA damaging agent, transcript levels were examined after treating agents to the cells. The level of transcripts were not increased by untraviolet light (UV). This result indicated that the RAD3 homologous gene is not UV inducible gene. Gene deletion experiments indicate that the HRD3 gene is essential for viability of the cells and DNA repair function. These observations suggest an evolutionary conservation of other protein components with which HRD3 interacts in mediating its DNA repair and viability functions.
The RAD3 gene of Saccharomyces cerevisiae is required for excision repair and is essential for cell viability. RAD3 encoded protein possesses a single stranded DNA-dependent ATPase and DNA-RNA helicase activies. To examine the extent of conservation of structure and function of RAD3 during eukaryotic evolution, we have cloned the RAD3 homolog, HRD3, from the distantly related yeast Schizosaccharomyces pombe. Here, we report the partial cloning and characterization of HRD3 gene (Homologous of RAD3 gene) which was isolated by PCR amplification using conserved domain of Saccharomyces cerevisiae RAD3 gene. Chromosomal DNA isolated from S. pombe had similar restriction patterns to those from S. cerevisiae, as determined by Southern blot analysis. The 2. 8 kb transcript of mRNA was identified by Northern hybridization. The level of transcript did not increase upon UV-irradiation, suggesting that the HRD3 gene in S. pombe is not UV-inducible.
A DNA fragment containing the gene for cell wall hydrolase of alkalophilic Bacillus subtilis BL-29 was cloned into E. coli JM109 using pUC18 as a vector. A recombinant plasmid, designated pCWL45B, was contained in the fragment originating from the alkalophilic B. subtilis BL-29 chromosomal DNA by Southern hybridization analysis. The nucleotide sequence of a 1.6-kb HindIII fragment containing a cell wall hydrolase-encoding gene was determined. The nucleotide sequence revealed an open reading frame (ORF) of 900 bp with a concensus ribosome-binding site located 6 nucleotide upstream from the ATG start codon. The primary amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence revealed a putative protein of 299 amino acid residues with an M.W. of 33, 206. Based on comparison of the amino acid sequence of the ORF with amino acid sequences in the GenBank data, it showed significant homology to the sequence of cell wall amidase of the PBSX bacteriophage of B. subtilis.
To understand the molecular structure and pathogenesis mechanism of Korean garlic viruses (GV), virus particles were isolated from field-grown garlic leaves and RNA genome was isolated from them. It was used for constructing cDNA library for GV. Several cDNA clones for GV were isolated and classified into 4 different groups on the basis of cross Southern hybridization. Northern blot analysis of GV RNA with one of these cDNA clones shows that the clone is a cDNA for GV RNA.
Recently, we introduced a new method for rapid screening of bacterial species- or subspecies-specific DNA probes, named “inverted dot blot hybridization screening method”. We then applied this method to develop species- or strain- specific DNA probes for Prevotella intermedia and Prevotella nigrescens. In those studies, among 96 candidate DNA probes which were screened by the new method, 5 probes were confirmed as being putatively strain-specific : 3 probes for P. nigrescens 9336 (ATCC 33563), one for each p. intermedia ATCC 25611 and one for P. nigrescens G8-9K-3 (ATCC 49046). In the present study, we evaluated by Southern blot analysis a DNA probe Pi29-L, one of the 96 candidate probes described above, whether it is specific for the strain ATCC 25611 off. intermedia. Our data show that the probe Pi29-L is potentially P. intermedia ATCC 25611-specific, which can be useful for the detection and identification of the strain, particularly in maintenance of the strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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