Lilium cv. Casablanca pollen grains stored at $-70^{\circ}C$ were grown in pollen germination medium with Agrobacterium tumefaciens LBA4404 cells harboring pBI121 for 18 hr at $27^{\circ}C$. Following this, cefotaxime (250 mg/L) was treated for 6 hr to eradicate the bacterial cells. Histochemical GUS analysis revealed that the transgenic pollen displayed deep blue color mostly from 12 hr after the co-cultivation. Presence of $200\;{\mu}M$ acetosyringone was determined not to be more effective for GUS transformation than its absence. GUS DNA integration in the transgenic pollen genomic DNA was clearly demonstrated by Southern blot analysis.
두 지역에서 채집한 초파리 자연집단에 대하여 난소발생이상 실험에 의한 P 인자 활성과 세포질형을 분석하여 P 전이인자의 계통형을 조사하였다 전체 238 isofemale line을 조사한 결과 strong P와 true M은 존재하지 않았고, 0(weak P)와 M'(pseudo M) strain이 전체의 98.74%를 차지하여 가장 우세하게 분포하고 있었다. P$\pi$25.1 probe를 이용한 in situ hybridization을 행하여 P 전이인자의 copy수를 조사한 결과 평균 42.12개로 나타났으며, 0와 M'의 계통형 간에 유의적인 차이는 없었다 그러나 염색체 firm당 COPy수는 X염색체가 상염색체의 좌 우 각 arm보다 다소 높게 분포하고 있었고. 염색체상 P 전이인자의 삽입부위에 대한 특이적 좌위는 존재하지 않았다 P 전이인자의 분자구조에 대한 변이형을 조사하기 위하여 southern blot hybridization을 행한 결과 2.9kb의 완전한 크기의 분자를 포함하여 여러종류의 단편들이 확인되었다 조사한 모든 isofemale line에서 KP(1. 15kb)인자를 포함하고 있었으며 이들 KP인자가 P-M System의 난소발생이상을 표현하는데 있어 억제적 작용을 하는 것으로 판단되었다.
Yang Kyoung-Sil;Lim Soon;Kwon Suk-Yoon;Kwak Sang-Soo;Kim Hyun-Soo;Lee Haeng-Soon
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.4
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pp.263-268
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2005
Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) causes acute enteritis in pigs of all ages and is often fatal for neonates. In order to develop sweetpotato plants expressing PEDV antigen, we constructed the vector expressing spike gene of PEDV under the control of sweetpotato sporamin promoter or constitutive CaMV 35S promoter. The spike protein region of PEDV was synthesized by PCR and linked to each promoter, Transgenic sweetpotato [Ipomoea batatas (L.) Lam. cv. Yulmi] plants were developed from embryogenic calli following Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. The co-cultured embryogenic calli transferred to selective MS medium containing 1 mg/L 2,4-D, 100 mg/L kanamycin, and 400 mg/L claforan. These embryogenic calli were subcultured to the same selection medium at 3 weeks interval. Kanamycin-resistant calli transferred to hormone-free MS medium with kanamycin gave rise to somatic embryos and then converted into plantlets in the same medium. Southern blot analysis confirmed that the spike gene of PEDV was inserted into the genome of the sweetpotato plants. RT-PCR revealed that the spike gene of PEDV was highly expressed in transgenic sweetpotato plants.
Bae, Eun-Kyung;Choi, Young-Im;Lee, Hyoshin;Choi, Ji Won
Journal of Plant Biotechnology
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v.46
no.3
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pp.180-188
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2019
Auxin plays a crucial regulatory role in plant growth and development processes. Three major classes of auxin-responsive transcription factors controlled by the Auxin/indole-3-acetic acid (Aux/IAA), Gretchen Hagen 3 (GH3), and small auxin up RNA (SAUR) genes regulate auxin signaling. Aux/IAA, in particular, encodes short-lived nuclear proteins that accumulate rapidly in response to auxin signaling. In this study, we isolated a PagAux/IAA1 gene from poplar (Populus alba ${\times}$ P. glandulosa) and investigated its expression characteristics. The PagAux/IAA1 cDNA codes for putative 200 amino acids polypeptide containing four conserved domains and two nuclear localization signals (NLSs). Utilizing Southern blot analysis, we confirmed that a single copy of the PagAux/IAA1 gene was present in the poplar genome. The expression of this gene is specific to leaves and flowers of the poplar. PagAux/IAA1 expressed in the early exponential growth phase of cell-cultured in suspension. PagAux/IAA1 expression level reduced in drought and salt stress conditions, and the presence of plant hormones such as abscisic acid. However, expression enhanced in cold stress, cambial cell division, and presence of plant hormones such as gibberellic acid and jasmonic acid. Thus, these results suggest that PagAux/IAA1 participates in cold stress response as well as developmental processes in the poplar.
Kim, Yong-Nam;Kim, Jin-Soo;Kim, Su-Young;Kim, Jeong-Hwan;Lee, Jong-Hwan;Choi, Woo-Bong
Journal of Life Science
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v.20
no.2
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pp.176-182
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2010
Magnaporthe oryzae is destructive plant-pathogenic fungus and causes rice blast. The pathogen uses several mechanisms to circumvent the inhibitory actions of fungicides. ATP-binding cassette (ABC) transporters are known to provide protection against toxic compounds in the environment. PC facilitated bioinformatic analysis, particularly with respect to accessing and extracting database information and domain identification. We predicted ABC transporter genes from the M. oryzae genome sequence with computation and bioinformatics tools. A total of thirty three genes were predicted to encode ABC transporters. Three of thirty three putative genes corresponded to three known ABC transporter genes (ABC1, ABC2 and ABC3). Copy numbers of the ABC transporter genes were proven by Southern blot analysis, which revealed that twenty genes tested exist as a single copy. We amplified the DNA complementary to RNA corresponding to eleven of these by reverse transcriptase polymerase chain reaction.
Wheat (Triticum aestium L.cv Cho-Kwang) explants were transformed by electrporation. Excised root segments were elechoporated with plasmid DNA of pBI121 and transferred to medium containing 300 mg/L kanamycin. Transformed calli formed within 5-7 days of culture and were selected from electroporated tissue on medium containing kanamycin after 4 weeks. The highest transformation frequency was obtained after electroporation with a pulse of 200 V/800 uF and calli formed at frequencies up to 2.5%. GUS ($\beta$-glucuronidase) assay and dot blot analysis showed that the foreign gene was capable of expressing in root explants subjected to electroporation and calli derived from the explants..
Kim, K.Y.;Sung, B.R.;Rim, Y.W.;Choi, G.J.;Lim, Y.C.;Jang, Y.S.;Seo, S.;Yoon, S.H.;Park, G.J.;Jo, J.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.21
no.3
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pp.151-156
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2001
This study was conducted to obtain the transformed alfalfa (Medicago sativa L.) plants with thermotolerance gene (BcHSP17.6) using Agrobacterium tumefaciens LBA4404 and we confirmed the transformed gene from the regenerated alfalfa plants. The expression vector, pBKH4, harboring BcHSP17.6 gene was used for production of transgenic alfalfa plants. In a process for transformation, the callus of alfalfa was cocultivated with Agrobacterium tumefaciens and transformed calli were selected on kanamycin-containing SH-3-kc medium to regenerate into into the plant. The complete transgenic alfalfa plants were produced by cultivation for about 4 months on several regeneration media, SH-nk-c, SH-l lb-c, SH-sp-c, and SH-IBA. The transgenic alfalfa plants were analyzed by isolation of genomic DNA and PCR/Southem blot.
Park, Hyeong-Cheol;Kim, Ho-Soo;Lee, Sang-Min;Cho, Hyeon-Seol;Chung, Woo-Sik
Journal of Life Science
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v.21
no.5
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pp.671-677
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2011
We previously reported the isolation and characterization of a gene, SCA1 (for soybean $Ca^{2+}$-ATPase 1), encoding a calmodulin-regulated $Ca^{2+}$-ATPase that is located in the plasma membrane in soybean. Here, a $Ca^{2+}$-ATPase designated as SCA2 was isolated from soybean. The two $Ca^{2+}$-ATPases, SCA1 and SCA2, share a remarkably high degree of similarity (78%). Ten transmemebrane domains were predicted by hydropathy analysis. Using gel overlay assays, CaM was found to bind to SCA2 in a $Ca^{2+}$-dependent manner. Southern blot analysis revealed the presence of two copies of the $Ca^{2+}$-ATPase gene in the soybean genome. An N-terminal truncation mutant that deletes sequence through the putative calmodulin binding site was able to complement a yeast mutant (K616) that was deficient in two endogenous $Ca^{2+}$ pumps. Our results indicate that SCA2 is structurally highly conserved with type IIB $Ca^{2+}$ pumps in plants.
Chloroplast genetic engineering of higher plants offers several unique advantages compared with nuclear genome transformation, such as high levels of transgene expression, a lack of position effect due to site-specific transgene integration by homologous recombination, multigene engineering in a single transformation event and reducing risks of gene flow via pollen due to maternal inheritance. We established a reproducible chloroplast transformation system of potato using a tobacco specific plastid transformation vector, pCtVG (trnI-Prrn-aadA-mgfp-TpsbA-trnA). Stable transgene integration into chloroplast genomes and the homoplasmic state of the transgenome were confirmed by PCR and Southern blot analyses. Northern, immunoblot analysis, and GFP fluorescence imaging revealed high expression and accumulation of GFP in the plastids of potato leaves. This system would provide new opportunities for genetic improvement and mass production of value added foreign proteins in this crop.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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