This study was carried out to establish The regeneration of healthy seedlings from the nodal segment culture of Chinese yam (Dioscorea opposita cv. Danma), cultivated in Korea. Different explants such as leaves, petioles, roots and nodal pieces, excised from the in vitro grown seedlings of Chinese yam, were cultured on MS medium supplemented with various combinations of growth regulators. All the growth regulators used induced plantlet regeneration from the nodal segments at a high frequency, while there was no induction of shoot or callus from leaf, petiole or root tissues. The medium supplemented with 0.01mg/L NAA, 0.5mg/L BA, 0.5-1.0mg/L kinetin and without plant growth regulator was effective for shoot development of buds from the nodal segment culture. The concentration of BA and NAA was an important factor in the bud induction of buds from the nodal segments of Chinese yam. Nodal segments cultured on the medium containing 1.0mg/L NAA and 0.5-1.0mg/L BA gave the best response to bud formation. The addition of GA$_3$ to the culture medium suppressed shoot induction and growth, while it increased microtuber formation. The shoot growth and microtuber formation were also affected by medium strength and solidity. The MS basal medium containing 1 g/L gelrite was suitable for microtuber formation from the nodal segment of Chinese yam.
This study was conducted to determine the concentrations of plant growth regulators required for regeneration and the concentrations of antibiotics for the selection of transformed regenerants from lettuce, musk melon and tomato. The optimal concentrations of plant growth regulators for shoot formation were NAA 0.1 mg/$\ell$ +BA 0.1 mg/$\ell$ for lettuce, NAA 0.01 mg/$\ell$ +BA 2.0 mg/$\ell$ for melon and NAA 0.1 mg/$\ell$ +BA 0.5 mg/$\ell$for musk melon. Shoot induction from tomato, lettuce and melon was completely inhibited by 30 mg/$\ell$ or higher concentrations of kanamycin. Shoot formation from mu나 melon was not affected by kanamycin up to 40 mg/$\ell$, but was reduced in the presence of 50 mg/$\ell$ and completely inhibited by 100 mg/$\ell$. Shoot formation of all four crops was completely inhibited by higromycin at 10 mg/$\ell$. Both carbenicillin and cefatoxinme did not show any negative effects on shoot formation.
This study was conducted to establish mass propagation system from the axillary bud culture of chrysanthemum zawadskii H. which was used as material of medicinal plants. Shoot egeneration was better on MS medium with NAA and BA. The optimum concentraions of growth regulator for shoot regeneration differed depending on accessionsof C. Zawadskii. Shoot regeneration in Keungucheolcho was better on MS Medium with NAA 0.01mg/1 and BA 0.1mg/1 while Hyangrobonggucheocho was better with NAA 0.1mg/1and BA 0.3mg/1. Addition of NAA into medium was effective for induction of root from shoots regenerated. Shoot multiplcation was more effective when 10mg/1 spermine was added into medium than when other polyamines were treated ino medium . Randomly and specifically amplified polymorphic DAC banding patterns based on polymerase chain reaction (PCR) analysis were used to assess the genetic variation of plants regenerated from in vitro culture.
In order to develop an efficient micropropagation technique effect of plant growth regulators (PGRs) affecting on shoot proliferation from shoot apex in Pyrus ussuriensis was tested. Generally, there was no conspicuous effect on shoot induction by the treatment of PGRs and one or two shoots/explant were induced when cultured on MS medium supplemented with BA and/or BA plus NAA. Both apical shoot necrosis and hyperhydric shoots were observed frequently in multiplied shoots, and callus was formed at the basal part of shoots. About 20% spontaneous rooting was achieved in growing shoots, however the proliferated shoots exhibited poor rooting rate in gelrite supported media. When we tried to ex vitro rooting of the shoot cutting, the shoot cuttings rooted up to 50% with 100 mg/L IBA application. The rooted plantlets grew normally after acclimatization in the greenhouse.
Park, Chung-Heon;Seong, Nak-Sul;Lee, Seung-Tack;Youn, Kyu-Bok;Son, Su-Gyu
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.1
no.1
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pp.63-69
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1993
Present experiment were attempted to examine in vitro multiplication throughbud culture of Cornus officinalis. Bud derived shoot formation was established successfully on Murashige and Skoog's medium supplemented with $0.5mg\;/\;{\ell}$ BAP(N-benzyl amino purine). The shoot proliferation increased on the Driver Kuniyuki Walnut medium containing $0.5mg\;/\;{\ell}$ NAA(Napthalene acetic acid) and $0.5mg\;/\;{\ell}$ BAP. Addition of 2,4-D(2,4-Dichlorophenoxy acetic acid) to the media produced excessive callus inducton. IAA(Indole-3-acetic acid) and IBA (Indole-3-bu-tyric acid) enhanced multple shooting, and NAA showed callus induction and multiple shooting. Shoot growth was enhanced supplemented with 3% sucrose, $2g\;/\;{\ell}$ activated charcoal, and 1 / 4MS in organic salts. However, root formation of proliferated shoots was low about 5%
In sweet potato cultivars 'Mokpo #29' and 'Sanchunza', shoots from extplants were formed 100% on the MS medium with 0.1 ㎎/L NAA and 2.0 ㎎/L BA after 30 days of culture and roots produced from the base of stem at frequencies of 66.7% ('Mokpo #29') and 69.2% ('Sanchunza'), respectively, The media with 0.5∼4.0 ㎎/L BA were produced the greatest frequency of multiple shoot and the most of shoots developed rapidly into normal plantlets with rooting within 60 days of culture. Whereas the cultivar 'Keumsi' failed to produce normal shoot multiplication on the medium with cytokinins alone because of callusing of adventitious shoots. When single shoots with 1 to 2 nodes were excised from the multiple shoot or shoots covered with callus devoid of root and transferred to MS medium with 4.0 ㎎/L BA or kinetin. Host divided shoots showed the callus induction at the stem base and it was enable to obtain regenerated plantlets with shoot and root normally.
Park, Min Wan;Ryu, Shi Hyun;Lee, Yoon Young;Song, Jae-Mo;Kim, Jin Ho;Ahn, Young-Hee;Bae, Kee Hwa
Journal of Plant Biotechnology
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v.45
no.3
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pp.266-272
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2018
A Polygonatum stenophyllum Maxim. is an important endangered plant belonging to the family Liliaceae. A method was developed for the rapid micropropagation of P. stenophyllum through plant regeneration from rhizome (1-year, 3-years, and 5-years) explant-derived calli. The rhizome segments were cultured in Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with varying concentrations of 2,4-D (0, 0.5, 1.0, $1.5mg{\cdot}L^{-1}$) for callus induction. In media supplemented with $0.5mg{\cdot}L^{-1}$ of 2,4-D, 87% of 3-years rhizome produced callus. Subsequently, the callus was transferred to 1/2MS medium supplemented with various concentrations of IAA, IBA, NAA, and 2,4-D (0, 0.1, 0.5 and $1.0mg{\cdot}L^{-1}$) for adventitious shoot formation. The highest percentage of adventitious shoot induction (57%) was observed in 1/2MS medium containing $0.5mg{\cdot}L^{-1}$ of NAA. Elongation of the adventitious shoot was achieved in 1/2MS medium supplemented with $0.1mg{\cdot}L^{-1}$ of BA. Rooting was achieved in 1/2MS medium without any hormones. It is hypothesized that the stated in vitro propagation protocol will be useful for conservation and mass propagation of the endangered Polygonatum stenophyllum Maxim. for bioresources.
To acquire the normal regeneration of plantlets, we investigated combinations and concentrations of plant growth regulations for optimal conditions of adventitious root formation. Based on the previous study, we performed callus and shoot induction. When induced shoot was transferred into a rooting medium containing plant hormones, it wilted and died. Thus, the shoot proliferated on 1/2 MS medium for 10 days and was then treated with MS medium supplemented with 3.0 mg/L NAA for 3 days. Adventitious root formations were observed after shoot planlets were transferred to 1/3 MS medium. The concentrations of salt and sucrose were gradually reduced in MS medium and the rooted plantlets were transferred for acclimatization into a mixture of peatmoos : perlite (3 : 2).
Callus induction from leaf and stem explants of Arabidopsis thaliana was successfully obtained when leaf explants were cultured on MS medium containing 2.0 mg/L 2,4-D in the dark and also, when stem explants were cultured on CP medium containing 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP. Explant-derived sliced calli were suspension-subcultured every week in CP liquid medium with 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP in the dark, and shoot-forming cell clusters of nodular, pale yellow and knobby type were selected after 7-8 weeks of culture. Shoots were initiated from the green spots of the selected shoot forming calli cultured on MS regeneration medium containing 0.05 mg/L IAA, 7.0 mg/L 2-iP and 30 g/L sucrose under continous illumination for four weeks. Shoot regeneration frequency (calli regenerating at least one shoot) was more than 50%. For plant regeneration, excised shoots were trnasferred to hormone free medium for root initiation after 4 weeks of culture. The regenerants were bolting after 2 weeks of culture and formed in vitro flowering buds within bracts after 4 weeks of culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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