1999년 1월부터 12월까지 한국 보령 연안에 서식하는 살조개 ( Protothaca jedoensis) 를 대상으로 생식소지수, 생식소 성숙 및 산란에 따른 생식주기, 산란기, 군성숙도, 그리고 성비 등 생식생태를 조사하였다. 생식소는 내장낭의 간중장선 외측을 둘러싸고 있는 외벽 근섬유막으로부터 족부의 외벽근 섬유막 사이에 있는 망상결체 조직층 사이에 다수의 소낭 또는 세관으로 분포하였다 . 난소는 수많은 난소소낭으로, 정소는 다수의 정소세관들로 구성되어 있다. 암수의 생식소지수 (GI)의 월별 변화는 2월부터 점진적으로 증가하기 시작하여, 5월에 최대에 이른 후 6월부터 급격히 감소하여 11월에 최소에 이르고 있어 생식주기의 변화와 유사하였다. 본 종의 산란기는 1년에 1회로 5-7월사이에 일어나며, 산란성기는 해수 수온이 20$^{\circ}C$이상인 6월과 7월사이 이었다. 살조개 암수의 생식주기는 초기활성기 (12-3월), 후기활성기 (2-5월), 완숙기 (4-7월), 부분산란기 (5-8월), 퇴화 및 비활성기 (7-1월) 의 연속적인 5단계로 구분할 수 있었다. 암수 개체의 군성숙도(%) 는 각장 30.1-35.0 mm 인 경우 군성숙도 (%) 는 각각 52.6%와 60.0%이었고, 각장 45.1 mm 이상인 암 ,수 개체들의 성비는 1:1로 유의한 차를 보이지 않았다(X$^2$ = 0.40, p > 0.05).
Reproductive biology (sexual maturity and reproductive cycle) of starry flounder Platichthys stellatus were examined by histological methods. From March 2004 to February 2005, 144 females and males were sampled. Gonadosomatic index (GSI) of female and male were peaked in May and February, respectively. Monthly changes of hepatosomotic index (HSI) showed a negative correlationwith those of the GSI. Changes of condition factor (CF) in female were correlated with gonad maturation, while that of male were no difference all the year round. Based on monthly GSI and gonadal development the reproductive cycle of starry flounder could be divided into four stages: growing stage (September to November), maturation stage (September to February), ripe and spent stage (March to May), and recovery and resting stage (June to August). Biological minimum size of female was 1,074 g. The relationship between fecundity (F) and body weight (BW) of the fish was expressed as $F\;=\;455.86BW^{1.2006}$.
본 연구의 결과인 수온조절에 의한 큰가리비의 생식소 발달을 조사한 결과, 암컷 샌식소지수 (GSI) 경우 1월에 실험구 I가 $9.12{\pm}2.9$, 2월에 $14.89{\pm}2.9$, 3월에 $21.3{\pm}1.4$로 지속적으로 상승하였다. 2월에 실험구 I, II, III과는 유의차가 없었으나 (P > 0.05), 실험구와 대조구와는 유의가 있었다 (P < 0.05). 실험구 I은 지속적으로 성숙하여 산란 가능한 범위로 성성숙 및 산란하여 가장 좋은 결과를 보였으며 타 시험구와 유의하게 높았다 (P < 0.05). 조직학적 관찰을 통해 생식소 발달을 조사한 결과, 1월에는 모든 실험구의 큰가리비 난소가 성장기 (growing stage) 단계로 확인되었다. 2월의 대조규 난소는 성장후기 단계였으며, 실험구 I, II 및 III은 모두 성숙기(mature stage)로 확인되었다. 어미의 실내 성성숙 유도를 위하여 수온 $12^{\circ}C$를 유지한 결과, 11월에 생식소 지수 및 생식소 중량은 각각 $4.4{\pm}0.88$, 2.8 g 이였으나 1월에 $15.1{\pm}2.8$, 11.7 g, 2월에 $21.7{\pm}5.4$, 19.4 g으로 급격히 생식소지수가 증가되어 2월에 방란, 방정이 가능하여 자연 산란군보다 2-3개월의 조기 산란 유도가 가능하였다. 수온 약 $16^{\circ}C$에서 수정란은 나선상 난할 (spiral cleavage)을 시작하여 낭배기(gastrula stage)를 거쳐 약 1.5일 후에는 담륜자 (trochophore) 유생이 되어 부상하여 유영하였다. 약 10일 후에는 초기원각 (prodissoconch shell)을 형성하여 각정기 유생기 (umbo stage larva)가 시작되며 각정 (umbones)이 형성되었다. 이후 각정기 유생은 성숙하여 수정 후 20-23일 후에는 팜사나 경심망 등의 기질에 부착하여 부착치패가 되어 조기 종묘 생산이 가능하였다.
점농어, Lateolabrax maculatus 암컷의 GSI변화는 실험개시시에 $0.51{\pm}0.05%$였고, 사육 90일 후인 실험종료시에는 대조구(자연광주기)에서 $1.07{\pm}0.09%$인데 비해 9L:15D구에서 $1.93{\pm}0.06%$로 가장 높았으며, 15L:9D에서 $0.32{\pm}0.07%$로 가장 낮은 값을 보였다. 수컷의 GSI변화는 실험개시시에 $0.16{\pm}0.05%$였으며, 실험종료시에는 대조구의 경우 $0.75{\pm}0.05%$인데 비해 9L:15D에서 $1.89{\pm}0.12%$ 가장 높았으며, 15L:9D에서 $0.22{\pm}0.06%$로 가장 낮은 값을 보였다. 암컷의 혈중 E2 변화는 실험개시시에 $125.8{\pm}9.5pg/ml$였으나 실험종료시에 대조구에서 $226.0{\pm}13.62pg/ml$였으며, 9L:15D에서 $296.3{\pm}15.0pg/ml$로 가장 높았고 15L:9D에서 $138.5{\pm}7.9pg/ml$로 가장 낮은 값을 보였다. 혈중 testosterone은 실험개시시에 $172.5{\pm}14.5pg/ml$였으나, 실험종료시에 대조구에서 $194.3{\pm}23.6pg/ml$였으며, 모든 실험구에서 대조구보다 낮은 값을 보였다. 혈중 $17a20{\beta}OHP$ 농도는 실험개시시에 $174.0{\pm}28.5pg/ml$였으나 실험종료시에 대조구에서 $193.5{\pm}13.4pg/ml$였으며, 대조구가 나머지 실험구에 비해 높은 값을 보였다. 혈중 testosterone의 농도는 실험개시시에 $125.0{\pm}5.1pg/ml$였으며 실험종료시에 대조구에서 $259.3{\pm}33.1pg/ml$였으며, 9L:15D에서 $370.5{\pm}27.5pg/ml$로 가장 높았고 15L:9D에서 $112.3{\pm}8.7pg/ml$로 가장 낮은 값을 보였다. 수컷의 혈중 $17a20{\beta}OHP$ 농도는 실험개시시에 $205.3{\pm}15.1pg/ml$였으며, 실험종료시에 대조구에서 $196.3{\pm}17.0pg/ml$였으며, 다른 실험구에 비해 가장 높은 값을 보였다.
Reproductive cycle with the gonadal phases, first sexual maturity, artificial spawning amount by the size and spawning interval of the hard clam, Meretrix lusoria were investigated by histological observations and morphometric data by artificial spawning induction. Meretrix lusoria is dioecious and oviparous. The reproductive cycle of this species can be classified into five successive stages: early active stage (January to March), late active stage (February to May), ripe stage (April to August), partially spawned stage (June to September), and spent/inactive stage (September to February). The spawning period was from June to September, and the main spawning occurred between July and August when the seawater temperature exceeds over $20^{\circ}C$. Percentage of first sexual maturity of female and male clams ranging from 40.0 to 45.0 mm in shell length was over 50%, and all clams over 50.0 mm in shell length sexually matured. Female and male clams ranging from 40.0 to 45.0 mm in shell length are considered to be two years old. Therefore, we assume that the hard clams of both sexes begin reproduction from two years of age. The mean number of the spawned eggs increased with the increase of size (shell length) classes. In case of artificial spawning induction, the number of spawned eggs from the clams of a sized class was gradually decreased with the increase of the number of the spawning frequencies (the first, second, and third spawnings). In the experiments of artificial spawning induction during the spawning season, the interval of each spawning was estimated to be 15-18 days (average 17 days).
Sexual maturity and growth characteristics of Octopus minor were investigated in 796 individuals from mud flats in Goorori, Muan-Goon, Korea. Gonadosomatic index (GSI) peaked between June and July in females and between November and January in males. The discrepancy in the index peaks between females and males might result from the earlier sexual maturation of males. The sex ratio was biased toward females (68%) in April and toward males (78%) in September, although the differences were not significant (p>0.05). In females, about 50% of individuals with a mantle length of 70.6 mm were sexually mature versus 100% of individuals with mantle lengths over 80 mm. In females, fecundity was also related to size, ranging from 44 eggs in individuals with a mantle length of 54 mm to 179 eggs in the female with a mantle length of 100.5 mm. The relationship between mantle length (ML) an body weight (BW) was BW=0.008 ML$^{2.2797}$ (n=389, r$^2$=0.83, p<0.01) in males and BW=0.029 ML$^{2.2797}$ (n=407, r$^2$=0.74, p<0.01) in females. Analysis of co-variation showed that the difference in the slopes of the two regression lines was significant (p<0.01). Analysis of mantle length-frequency for each month revealed 1 to 3 normal distribution modes. The growth parameters obtained by fitting the modal progression to the seasonalized von Bertalanffy growth function (VBGF) were ML$\infty$= 112.38 mm, K=1.9, C=0.90, and WP=0.1. The results indicate that the seasonal growth oscillation of the stock is very strong and winter is the season when growth is the slowest.
키조개 양식은 근래에는 오염과 자연산 모패의 남획 등으로 점차 자원량이 감소하고 있어 이들의 양식의 필요성이 커지고 있다. 본 연구에서는 키조개의 성성숙 조절기구를 규명하기 위하여 미세조류 종류에 따른 키조개의 비만도와 생식소 및 유생의 발달단계를 비교 분석하였다. 또한 이를 바탕으로 키조개 모패로부터 인공종묘생산을 시도하였다. 키조개의 비만도를 살펴보면 어미의 연체부 지수는 사육초기에는 변화가 없었으나, 5월 중순부터 전 실험구가 먹이생물을 매우 활발히 섭취하는 경향이 있었고, 실험 종료 시에는 연체부 지수가 급격히 증가하는 경향이 있었으며, 각부 용적지수도 유사한 경향을 나타냈다. 이러한 키조개 생식소의 성숙 발달단계는 비 활성기, 초기 활성기, 후기 활성기, 완숙기, 방출 및 퇴화기의 5 단계로 구분할 수 있는데, 시험 개시일은 후기활성기로 판단되며, 시험 종료시에는 전 시험구가 완숙기와 방출기에 도달하였다. 본 연구에서는 미세조류 3 종, Chlorella ellipsoidea, Tetraselmis tetrathele, Pheasant ylum tricornutum과 키조개 성성숙의 상관관계에 대해 조사해본 결과, 키조개 암, 수 모두 Tet. 실험구에서 조직학적으로 빠른 성숙을 나타냈으며, 성성숙 유도율과 생존율 또한 Tet. 실험구에서 높은 수준을 나타냈다. 따라서 Tetraselmis tetrathele가 키조개 어미사육에서 매우 유용한 먹이생물로 판단되었다. 자연 상태의 키조개 어미로는 인공종묘생산을 기대하기는 어려운 것으로 판단되었으나, 성숙실험한 키조개 어미로부터는 5 회의 채란기간 중 반응이 있었고, D형 유생이 정상적으로 발달된 것으로 나타나 키조개는 실내 인공성숙관리에 의해 채란하는 것이 유용한 것으로 판단된다. 키조개 유생을 사육한 결과, I. galbana, Chaetoceros sp., P. lutheri 및 혼합구 전 실험구에서 실험 시작 3-5일 사이에 생존율이 매우 낮아 미세조류 종류에 따른 유의한 결과를 얻을 수 없었다. 따라서 본 연구에서는 키조개 어미 인공사육관리에 의한 인공종묘생산의 가능성을 제시하였으며, 앞으로 키조개 인공종묘 생산기술을 개발하기 위하여, 유생사육 및 치패 생산에 관한 연구가 더욱 요구된다 할 수 있다.
Choi, Young Jae;Kim, Na Na;Shin, Hyun Suk;Choi, Cheol Young
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제27권4호
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pp.479-487
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2014
Leptin plays an important role in energy homeostasis and reproductive function in fish, especially in reproduction. Migrating fish, such as salmonoids, are affected by external environmental factors, and salinity changes are a particularly important influence on spawning migrations. The aim of this study was to test whether changes in salinity affect the expression of leptin, estrogen receptors (ERs), and vitellogenin (VTG) in chum salmon (Oncorhynchus keta). The expression and activity of leptin, the expression of ERs and VTG, and the levels of estradiol-$17{\beta}$ and cortisol increased after the fish were transferred to FW, demonstrating that changes in salinity stimulate the HPG axis in migrating female chum salmon. These findings reveal details about the role of elevated leptin levels and sex steroid hormones in stimulating sexual maturation and reproduction in response to salinity changes in chum salmon.
Maturation and spawning of the Shotted halibut, Eopsetta grigorjewi was investigated based on the samples captured in South Korean waters from January 2008 to December 2009. Gonadosomatic index began to increase in December, and reached maximum between January to March. After spawning it began to decrease from May. Reproductive season was estimated to January-April, with peak in February. Fecundity was proportional to the size of the female, with the clutch size varying from 170,000 eggs in the smallest female (total length, 28.9cm) to 1,300,000 eggs in the largest (total length, 41.5cm). Size at 50% sexual maturity (TL50), determined from mature females, was 28.8cm. Annual reproductive cycles of this species could be divided into six successive stages; immature stage (May-October), nucleolus stage (November-January), yolk vesicle stage (January-February), vitellogenic and ripe stage (January-April) and spent stage (April-May).
Maturation and spawning of the Blackthroat seaperch, Doderleinia berycoides were investigated based on the samples captured in Korean waters from January 2008 to December 2009. Gonadosomatic index began to increase in June, and reached maximum between July to September. After spawning it began to decrease from October. Reproductive season was estimated to July-September, with peak in August. Fecundity was proportional to the size of the female, with the clutch size varying from 115,500 eggs in the smallest female (TL〓28.2cm) to 652,000 eggs in the largest (TL〓33.5cm). Size at 50% sexual maturity ($TL_{50}$), determined from mature females, was 29.6cm. Annual reproductive cycles of this species could be divided into six successive stages; immature stage (October-May), nucleolus stage (June-July), yolk vesicle stage (July-August), vitellogenic stage (June-September), ripe and spent stage (August-October).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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