Lactadherin (formerly known as BA46), a major glycoprotein of the human milk fat globule membrane, is abundant in human breast milk and breast carcinoma cells and is known to prevent symptomatic rotavirus infections. In this study, we tried to transfer the human lactadherin gene to the Chinese Hamster Ovary (CHO) cells using retrovirus vector system and tested inducible expression of the gene under the tetracycline-controllable promoter. At first, tetracycline-mediated inducibility was tested using E.coli LacZ marker gene. NIH3T3 cells co-infected with RevTet-On and RevTRE-LacZ retrovirus vectors showed that the cells responded to doxycycline (a derivative of tetracycline) in a dose-dependent manner, and prominent induction of the lacZ gene expression was observed from 1 $\mu\textrm{g}$/ml of doxycycline concentration. Based on the results of the pilot experiment, inductional expression of the human lactadherin gene was conducted using RevTet-On and RevTRE-Ltd retrovirus vectors. Analysis with the RT-PCR demonstrated successful inductional expression of the lactadherin gene in the Chinese Hamster Ovary (CHO) cells. Considering that constitutive overexpression of the exogenous genes in the target cells causes serious physiological imbalance, the results obtained in this study will be very useful especially in the studies of gene therapy and transgenic animal production.
Kim, Young-Eun;Park, Jeong-A;Park, Sang-Kyu;Kang, Ho-Bum;Kwon, Hyung-Joo;Lee, Younghee
Development and Reproduction
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v.17
no.4
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pp.379-387
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2013
Embryonic stem (ES) cells can self-renew and differentiate to various cells depending on the culture condition. Although ES cells are a good model for cell type specification and can be useful for application in clinics in the future, studies on ES cells have many experimental restraints including low transfection efficiency and transgene expression. Here, we observed that transgene expression after transfection was enhanced by treatment with histone deacetylse (HDAC) inhibitors such as trichostatin A, sodium butyrate, and valproic acid. Transfection was performed using conventional transfection reagents with a retroviral vector encoding GFP under the control of CMV promoter as a reporter. Treatment of ES cells with HDAC inhibitors after transfection increased population of GFP positive cells up to 180% compared with untreated control. ES cells showed normal expression of stem cell markers after treatment with HDAC inhibitors. Transgene expression was further enhanced by modifying transfection procedure. GFP positive cells selected after transfection were proved to have the stem cell properties. Our improved protocol for enhanced gene delivery and expression in mouse ES cells without hampering ES cell properties will be useful for study and application of ES cells.
Background: As an attempt to develop a strategy to improve the protective immune response to GM-CSF-secreting CT26 (GM-CSF/CT26) tumor vaccine, we have investigated whether the apoptogenic treatment of GM-CSF/CT26 prior to vaccination enhances the induction of anti-tumor immune response in mouse model. Methods: A carcinogeninduced mouse colorectal tumor, CT26 was transfected with GM-CSF gene using a retroviral vector to generate GM-CSF-secreting CT26 (CT26/GM-CSF). The CT26/GM-CSF was treated with ${\gamma}$-irradiation or mitomycin C to induce apoptosis and vaccinated into BALB/c mice. After 7 days, the mice were injected with a lethal dose of challenge live CT26 cells to examine the protective effect of tumor vaccination in vivo. Results: Although both apoptotic and necrotic CT26/GM-CSF vaccines were able to enhance anti-tumor immune response, apoptotic CT26/GM-CSF induced by pretreatment with ${\gamma}$-irradiation (50,000 rads) was the most potent in generating the anti-tumor immunity, and thus 100% of mice vaccinated with the apoptotic cells remained tumor free for more than 60 days after tumor challenge. Conclusion: Apoptogenic pretreatment of GM-CSF-secreting CT26 tumor vaccine by ${\gamma}$-irradiation (50,000 rads) resulted in a significant enhancement in inducing the protective anti-tumor immunity. A rapid induction of apoptosis of CT26/GM-CSF tumor vaccine at the vaccine site might be critical for the enhancement in anti-tumor immune response to tumor vaccine.
Abel et al. in Germany discovered a new dioxin-responsive gene, which has later been identified as rpt-1 (regulatory protein T-lymphocyte 1). While it is speculated that rpt-1 may play a role in signal transduction and carcinogenesis, its roles and functions remain unknown. The present study attempted to analyze functions of rpt-1 in human epithelial cells following the xenobiotic exposures. While German counterpart analyzed expressionn of rpt-1 in spleen and thymus cells from mouse and rat and characterizes molecular properties of the gene, our work mainly focused on analyzing function of rpt-1 in human skin cells. Expression of rpt-1 in human cells were analyzed by western and northern blot RT-PCR analysis. Expression of rpt-1 as well as Staf-50 in human cells with or without exposure to environmental pollutants were also analyzed by northern blot analysis, since Staf-50 is homologous with rpt-1 and found in human cells. To help study roles of rpt-1 in human cell system, retroviral vector system carrying rpt-1 gene under the CMV promoter were constructed and transfected. Cells overexpressing the gene after the transfection showed an increase of cell density and soft agar colony formations, as compared to the control cells, suggesting that rpt-1 may play a certain role in the transformation processes of human cells. While the expression of rpt-1 in spleen and thymus is known to be strong in the laboratory animals, both the basal and TCDD-induced expression of rpt-1 in the current cellular system remained insignificant. It is speculated that the expression pattern of rpt-1 may be tissue- and species-specific. The present study demonstrated a strong expression of rpt-1 protein in the brain of SD rat model. Since there is no previous report on the expression of rpt-1 in the brain tissue, the result may play a significant role in understanding dioxin-induced neurotoxicities in the future. The present study provides an opportunity to understand a role of rpt-1 in human cell system and suggest a possible lead and basis for the future study of dioxin-induced neurotoxicities.
Monogenic diseases are resulted from modifications in a single gene of human cells. Because their treatment with pharmacological medicine have a temporary effect, continuous nursing care and retreatment are required. Gene therapy, gene targeting and induced pluripotent stem cell (iPSC) are considered permanent treatment methods of them. In gene therapy, however, retroviral vectors that have potential toxicity caused by random insertion of harmful virus are used as vehicles for transferring genetic materials. On the other hand, gene targeting could replace and remove the modified gene though homologous recombination (HR) induced by site-specific endonucleases. This short review provides a brief overview on the recently tailored endonucleses with high selectivity for HR.
Using a retrovirus, foreign genes can be introduced into mammalian cells. The purpose of this study is to produce a retrovirus that can make the infected cells express two genes; the human multidrug resistance gene (MDR1) and the HLA-B7 gene, which is one of the major human histocompatibility complex (MHC) class I genes. For the expression of these genes, the internal ribosome entry site (IRES) was used, which was derived from the encephalomyocarditis (EMC) virus. In order to produce retroviruses, a retroviral vector was transfected into a packaging cell line and the transfected cells were treated with vincristine, which is an anti-cancer drug and a substrate for the MDRI gene product. This study revealed that two genes were incorporated into chromosomes of selected cells and expressed in the same cells. The production of the retrovirus was confirmed by the reverse transcription (RT)-PCR of the viral RNA. The retrovirus that was produced infected mouse fibroblast cells as well as the human U937. This study showed that packaging cells produced the retroviruses, which can infect the target cells. Once the conditions for the high infectivity of retrovirus into human cells are optimized, thus virus will be used to infect hematopoietic stem cells to co-express MDRl and HLA-B7 genes, and develop the lymphocytes that can be used for the immnogene therapy.
Vesicular stomatitis virus G glycoprotein (VSV-G) has been widely used for pseudotyping retroviral, lentiviral, and artificial viral vectors. The objective of this study was to establish a potential approach for large-scale production of VSV-G. To this end, VSV-G was cloned with an N-terminal His-tag into Pichia pastoris expression vector pPIC3.5K. Three clones ($Mut^s$) containing the VSV-G expression cassette were identified by PCR. All clones proliferated normally in expansion medium, whereas the proliferation was reduced significantly under induction conditions. VSV-G protein was detected in cell lysates by western blot analysis, and the highest expression level was observed at 96 h post induction. VSV-G could also be obtained from the condition medium of yeast protoplasts. Furthermore, VSV-G could be incorporated into Ad293 cells and was able to induce cell fusion, leading to the transfer of cytoplasmic protein. Finally, VSV-G-mediated DNA transfection was assayed by flow cytometry and luciferase measurement. Incubation of VSV-G lysate with the pGL3-control DNA complex increased the luciferase activity in Ad293 and HeLa cells by about 3-fold. Likewise, incubation of VSV-G lysate with the pCMV-DsRed DNA complex improved the transfection efficiency into Ad293 by 10% and into HeLa cells by about 1-fold. In conclusion, these results demonstrate that VSV-G could be produced from P. pastoris with biofunctionalities, demonstrating that large-scale production of the viral glycoprotein is feasible.
A novel gene, designated mgt-6, containing four splicing variants, was isolated from a gene trap clone library of C3H/10T1/2 cells transfected with retroviral promoterless gene-trap vector, ROSAFARY. The transcript variants were differentially expressed in murine tissues and cell lines and differentially responded to diverse stimuli including TGF-${\beta}1$ and mitogen-activated protein kinase (MAPK) inhibitors. The mgt-6 gene encoded a protein of 37 or 11 amino acid residuals with cytoplasmic distribution. However, when C3H/10T1/2 cells were treated with 5-azacytidine, the protein translocated into cell nucleus as indicated by fused LacZ or C-terminally tagged EGFP. Our preliminary results suggest that further study on the role of mgt-6 gene in cell transformation and differentiation may be of significance.
Transgenic animals have been widely used for developmental biology studies, as disease models, and even in industry such as transgenic bioreactor animals. For transgenic birds, quail has the great advantages of small body size, short generation time, and frequent egg production. To date, retroviral or lentiviral transduction has been used to generate transgenic quail for various purposes. However, the efficiency of transgenic offspring production with these methods is relatively low and viral vector usage has safety issues. Unfortunately, non-viral transgenesis has not been established in quail due to a deficiency of stem cell and germ cell culture systems. In this study, we established a direct in ovo lipofection method that could be used to create transgenic quail without germline-competent cells or viruses. To optimize the injection stage during embryo development, the liposome complex (containing piggyBacCMV-GFP and transposase plasmids) was introduced into an embryonic blood vessel at 50 hr, 55 hr or 60 hr. GFP expression was detected in various tissues (heart, kidney, liver and stomach) on day 12 of incubation under a fluorescence microscope. Additionally, GFP-positive cells were detected in the recipient embryonic gonads. In conclusion, the direct in ovo lipofection method with the piggyBac transposon could be an efficient and useful tool for generating transgenic quail.
Human mesenchymal stem cells (MSCs) are multipotent stem cells that have been intensively studied as therapeutic tools for a variety of disorders. To enhance the efficacy of MSCs, therapeutic genes are introduced using retroviral and lentiviral vectors. However, serious adverse events (SAEs) such as tumorigenesis can be induced by insertional mutagenesis. We generated lentiviral vectors encoding the wild-type herpes simplex virus thymidine kinase (HSV-TK) gene and a gene containing a point mutation that results in an alanine to histidine substitution at residue 168 (TK(A168H)) and transduced expression in MSCs (MSC-TK and MSC-TK(A168H)). Transduction of lentiviral vectors encoding the TK(A168H) mutant did not alter the proliferation capacity, mesodermal differentiation potential, or surface antigenicity of MSCs. The MSC-TK(A168H) cells were genetically stable, as shown by karyotyping. MSC-TK(A168H) responded to ganciclovir (GCV) with an half maximal inhibitory concentration (IC50) value 10-fold less than that of MSC-TK. Because MSC-TK(A168H) cells were found to be non-tumorigenic, a U87-TK(A168H) subcutaneous tumor was used as a SAE-like condition and we evaluated the effect of valganciclovir (vGCV), an oral prodrug for GCV. U87-TK(A168H) tumors were more efficiently ablated by 200 mg/kg vGCV than U87-TK tumors. These results indicate that MSC-TK(A168H) cells appear to be pre-clinically safe for therapeutic use. We propose that genetic modification with HSV-TK(A168H) makes allogeneic MSC-based ex vivo therapy safer by eliminating transplanted cells during SAEs such as uncontrolled cell proliferation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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