Apolipoprotein E (apoE) restriction isotyping used oligonucleotides to amplify apoE gene sequences containing amino acid positions 112 and 158. The amplification products were digested with HhaI and subjected to electrophoresis on $4\%$ agarose gel. Each of the isoforms was distinguished by a unique combination of HhaI fragment sizes that enabled unambiguous typing of all homozygotic and heterozygotic combinations. HhaI cleaves at GCGC encoding 112arg (E4) and 158arg (E3, E4), but does not cut at GTGC encoding 112cys (E2, E3) and] 58cys (E2). DNA was isolated from 72 study participants and apoE genotypes were determined utilizing the polymerase chain reaction and restriction isotyping. In the entire group of subjects, $38 (52.8\%)$ had apo E4/4 or E3/4 (Group E4), $28(38.9\%)$ had the apo E3/3 genotype (Group E3) and $6(8.3\%)$ had apo E2/2 or E2/3 (Group E2). This genotypic information may help to identify individuals at increased risk for several diseases.
CHANG, CHUNG EUN;SYLVIA I. PAVLOVA;LIN TAO;EUN-KI KIM;SEUNG CHUL KIM;HYUN SHIK YUN;JAE-SEONG SO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제12권2호
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pp.312-317
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2002
Indigenous lactobacilli were isolated from vaginas of Korean women for possible use in ecological treatment of bacterial vaginosis. Vaginal swab samples were obtained from a gynecological clinic and streaked on Rogosa SL agar plates to select the most predominant lactobacilli in each sample. The preliminary identification of the isolates as lactobacilli was based on microscopic observation of Gram-positive rod-shaped cell morphology. The initial characterization was performed on 108 isolates in terms of their cell surface hydrophobicity (CSH), antimicrobial activity, and hydrogen peroxide (H₂O₂) production capability, and 10 isolates were then selected for further molecular identification. For a rapid procedure to identify lactobacilli, polymerase chain reaction (PCR) and restriction fragment length polymorphism (RFLP) analyses of the l6S rRNA genes were applied. The 10 selected lactobacilli and 9 different reference strains of Lactobacillus spp. were characterized by PCR-RFLP where the amplified l6S rDNA was digested with 7 different restriction endonucleases prior to analysis. DNA sequencing of the 16S rRNA gene of one particular isolate, KLB 46, that had been identified as L. crispatus by the PCR-RFLP analysis, further confirmed its identity as L. crispatus.
Precise, rapid and simple methods for species identification in animals are among the most important techniques in the livestock industry and research fields including meat classification. In this study, polymerase chain reaction (PCR) based molecular identification using inter species polymorphisms were examined by PCR-restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis for mitochondrial DNA (mtDNA) cytochrome b (CYTB) gene sequences among four mammalian livestock animals (cattle, horse, goat and pig). The results from PCR-RFLP analysis using the AluI restriction enzyme were also provided for the species-specific band patterns among CYTB gene sequences in these four species. The AluI-digestion for CYTB genes provided interesting migration patterns differentially displayed according to each species. Cattle and horse had one AluI-recognition site at different nucleotide positions and their AluI-digested fragments showed different band patterns on the gels. Pig had two AluI-recognition sites within the amplified CYTB sequences and produced three bands on the gels. Goat had no AluI-recognition site and was located at the same position as the uncut PCR product. The results showed the species-specific band patterns on a single gel among the four livestock animal species by AluI-RFLP. In addition, the results from blind tests for the meat samples collected from providers without any records showed the identical information on the species recorded by observing their phenotypes before slaughter. The application of this PCR-RFLP method can be useful and provide rapid, simple, and clear information regarding species identification for various tissue samples originating from tested livestock species.
Since water borne infection causes acute diseases and results in spread of diseases by secondary infection, the prevention is very important. Therefore, it is necessary to have a method that is rapid and effective to monitor pathogenic bacteria in drinking water. In this study, we employed a systematic method, Polymerase Chain Reaction-Restriction Fragment Length Polymorphism (PCR-RFLP) analysis, to develop an effective monitoring system for possible bacterial contaminants in drinking water. For this purpose, PCR primers were derived from 992 bp region of the 16s rRNA gene that is highly conserved through the different species of prokaryotes. To test whether the PCR primers designed are indeed useful for detecting all the possible microbial contaminants in the water, the primers were used to amplify 16s rRNA regions of different microbial water-borne pathogens such as E. coli, Salmonella, Yersinia, Listeria, and Staphylococcus. As expected, all of tested microorganisms amplified expected size of PCR products indicating designed PCR primers for 16s rRNA indeed can be useful to amplify all different microbial water-borne pathogens in the water. Furthermore, to test whether these 16s rRNA based PCR primers can detect bacterial populations present in the water, water samples taken from diverse sources, such as river, tap, and sewage, were used for amplification. PCR products were for then subjected for cloning into a T-vector to generate a library containing 16s rRNA sequences from various bacteria. With cloned PCR products, RFLP analysis was done using PCR products digested with restriction enzyme such as Hae III to obtain species-specific RFLP profiles. After PCR-RFLP, the bacterial clones which showed the same RFLP profiles were regarded as the same ones, and the clones which showed distinctive RFLP profiles were subsequently subjected for sequence analysis for species identification. By this PCR-RFLP analysis, we were able to reveal diverse populations of bacteria living in water. In brief, in unsterilized natural river water, over 60 different species of bacteria were found. On the other hand, no PCR products were detected in drinking tap-water. The results from this study clearly indicate that the PCR-RFLP-sequence analysis can be a useful method for monitoring diverse, perhaps pathogenic bacteria contaminated in water in a rapid fashion.
In-situ Air sparging (IAS) is a groundwater remediation technique, in which organic contaminants volatilize into air form the saturated to vadose zone. This study was carried out to evaluate the effect of sludge and soil microbial community structure on air sparging of Total Petroleum Hydrocarbons (TPH) contaminated groundwater soils. In the laboratory, diesel (10,000 mg TPH/kg) contaminated saturated soil. The Air was injected in intermittent (Q=1500 mL/min, 10 minute injection and 10 minute idle) modes. For Terminal-Restriction Fragment Length Polymorphism (T-RFLP) analysis of eubacterial communities in sludge of wastewater treatment plants and soil of experiment site, the 16S rDNA was amplified by Polymerase Chain Reaction (PCR) from the sludge and the soil. The obtained 16S rDNA fragments were digested with Msp I and separated by electrophoresis gel. We found various sequence types for experiment with sludge soil samples that were closely related to Agrococcus, Flavobacterium, Thermoanaerobacter, Flexibacter and Shewanella, etc, in the clone library. The results of the present study suggests that T-RFLP method may be applied as a useful tool for the monitoring in the TPH contaminated soil the fate of microorganisms in natural microbial community.
Hot air sparging is a groundwater remediation technique, in which organic contaminants volatilized into hot air from the saturated to vadose zone. In the laboratory diesel (10,000 mg TPH/kg) was spiked in contaminated saturated aquifer soil. The hot air ($34.9{\pm}2.7^{\circ}C$) was injected in intermittent (Q=1,500 mL/min, 10 minute injection and 10 minute idle) modes. We performed microcosm tests using the groundwater samples to assess TPH reductive remediation activity. For Terminal-Restriction Fragment Length Polymorphism (T-RFLP) analysis of eubacterial communities in sludge of wastewater treatment plants and soil of experiment site, the 16S rDNA was amplified by Polymerase Chain Reaction (PCR) from the sludge and the soil. The obtained 16S rDNA fragments were digested with Msp I and separated by electrophoresis gel. We found various sequence types for hot air sparging experiment with sludge soil samples that were closely related to Bacillus (149 bp, Firmicutes), Methlobacterium (149 bp, Euryarchaeotes), Pseudomonas (492 bp, ${\gamma}$-Proteobacteria), etc., in the clone library. In this study we find that TPH-water was reduced to 78.9% of the initial value in this experiment aquifer. The results of the present study suggests that T-RFLP method may be applied as a useful tool for the monitoring in the TPH contaminated soil fate of microorganisms in natural microbial community.
Objective: We inversigated Small Heterodimer Partner (SHP) gene mutation in Korean Polycystic Ovarian Syndrome (PCOS) patients. SHP protein regulates the activity of nuclear receptors which regulate the cellular development and differentiation. Recently, the mutation of SHP gene was found in the obesity and diabetes patients in Japanese group, and suggested that its mutation may involved in pathogenic mechanism of PCOS. Methods: This study was performed in 20 PCOS patients and 20 normal women. The DNAs were extracted from the peripheral bloods, and amplified at each exon (1 and 2) of SHP gene by PCR method. Subsequently, each PCR product was digested with the restriction enzyme indicated below for studying restriction fragment length polymorphism (RFLP). After enzyme digestion, the results of RFLP were compared PCOS patients with control women to find any sequence variation. Results: We examined 9 regions of exon 1 with Msp I, Pvu II, Dde I and 3 regions of exon 2 with Pst I, Dde I. There is no heterozygous or homozygous mutation in patients and control women at these restriction sites. Conclusion: The genetic analysis at our restriction sites in the SHP gene did not show any genetic variation in Korean PCOS patients. Our PCR-RFLP analysis was not covered the entire SHP gene (68 bp/1,006 bp), we need to further analysis of the entire SHP gene.
The purpose of this study was to develop the diagnosis techniques for sex determination of rabbit embryos at preimplantation stage. To detect male specific sequences using polymerase chain reaction, two genes functional on sex determination including SRY and ZFX/Y genes were targeted using multiple oligonucleotide primer sets. Three of them for conserved SRY gene were used for appropriate amplification pattern, and then only one primer set #3 proved to be most efficient, showing male-specific strong signal ofamplified sequences. Using this male specific bandsfrom human, cattle, pig and mouse, the gender of rabbit was determined. As an another system for sex determination system, amplified 910bp fragment from ZFX/Y was digested with several restriction endonuclease and showed gender specific restriction fragments only by Hinf I. Using two different system for sex identification of rabbit in this study, blind tests for 17 samples was conducted and showed identical results from two different methods. And then, amplification limit of PCR reaction for template DNA was estimated using various amounts of DNA for both SRY and ZFX/Y systems, resulted as 20pg and 800pg, respectively. With this results, test for gender identification of rabbit embryos were performed using SRY derived amplification system. From total 22 embryos selected for its developmental state 18 were identified as male embryos, showing significant difference from expected sex ratio 1:1. This biased sex ratio was interpreted as to have been caused by the fact, reported by the fact, reported by several researchers, that male embryos develop more rapidly and are more resistant against the in vitro manipulation than female embryos.
폐수 처리장의 방류수에 페놀을 첨가한 후 terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) 방법을 이용하여 세균군집의 구조와 변화를 조사하였다. 시료로부터 얻은 16S rRNA gene은 eubacterial primer로 증폭하였으며, 한 primer는 5'말단에 biotin을 부착하였다. 증폭된 product는 HaeIII와 AluI으로 각각 절단하였고, 절단된 단편 중에서 terminal restriction fragment (T-RF)를 streptavidin paramagnetic particle을 이용하여 분리하였다. 분리된 T-RF는 전기영동과 silver staining을 통하여 확인하였다. 본 실험의 유용성을 검증하기 위하여 표준 균주 10 균주를 대상으로 실험하였고, 균주마다 특징적인 T-RF를 가지는 것과 그 크기가 Ribosomal database project (RDP) 자료로부터 계산된 결과와 일치하는 것을 확인할 수 있었다. 한편, 대조군으로 사용된 페놀을 첨가하지 않은 방류수 시료에서는 Acinetobacter, Bacillus, Pseudomonas 속 등이 우점종을 차지하고 있었고, 페놀 (최종농도 250mg.$l^{-1}$)을 첨가한 방류수 시료에서는 Acinetobacter, Comamonas, Cytophaga, Pseudomonas 속 등이 우점종을 차지함을 알 수 있었다. Gel에서 분리한 Acinetobacter와 Cytophaga에 해당되는 T-RF는 재증폭 및 염기 서열 분석이 가능하였는데, database의 염기서열과 비교한 결과 Acinetobacter junii와 유연관계가 가깝다는 것을 확인하였다.
Peach rosette mosaic virus (PRMV)는 1933년 복숭아에서 처음 보고되었으며, 복숭아, 자두, 블루베리, 민들레, 벚나무 등에 감염되는 식물바이러스이다. PRMV는 한국에서 보고된 적이 없으나, 식물검역에서 관리병(control viruses)으로 지정되어 있다. 이번 연구에서는 PRMV를 더욱 신속하고 특이적으로 진단하기 위하여 Loop-mediated isothermal amplification 분석법을 적용한 진단법을 개발하였다. LAMP 방법은 기존의 PCR 방법(RT-PCR 및 nested PCR)과 같은 검출 강도를 가지고 있다. 또한 LAMP 반응을 확인하기 위해 PRMV cDNA을 outer primer sets (Product size 264 bp)로 PCR 한 뒤, Pvu II (CAG/CTG) 제한효소를 처리하였다. 제한효소 처리 결과 2개의 digestion fragments (207 + 57 bp)가 확인되었다. PRMV의 LAMP 진단 방법은 관련 식물로부터 더욱 신속한 모니터링이 가능할 것으로 기대된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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