High producers or blocked mutants of aminoglycoside antibiotic-producing Streptomyces spp. were selected by application of an agar plug method and by culturing individual colonies in broth. The productivities of aminoglycoside antibiotic producing organisms were increased by selection of a high producer from colonies obtained by spreading spores of wild strain, or survived from treatment of a mutagen or from the colonies regenerated from protoplast-formation and cell-wall regenerations. Some mutagen treated colonies lost the ability to produce antibiotics (5-8%). Some A-factor negative and deostreptamine or streptidine negative mutants were obtained by N-methyl-N'-nitro-N-nitrosomethylguanidine (MNNG) treatment. Many of the survivors from the MNNG treatment lost the ability to produce antibiotics. Major colonies produced less amount of antibiotics ; only few survived colonies produced more antibiotics than the parent. Resistance of Streptomyces spp. against the antibiotics produced by itself was also markedly affected by mutagen treatment.
New winter wheat winter barley hybrids were produced (Mv9 kr1 Igri, Mv9 kr1 Osnova, Asakazekomugi Manas). The wheat-barley hybrids showed entire male sterility and were multiplied in tissue culture. Chromosome configurations were studied with GISH in meiosis in the Mv9 krl x Igri hybrid and in its progenies multiplied in vitro. Chromosome pairing between wheat and barley has been observed in some cells in the hybrids multiplied in vitro. Backcross plants with 43 and 44 chromosomes were selected with the aim of developing new wheat-barley addition lines. Wheat-barley translocations were demonstrated with GISH in backcross progenies originating from in vitro regenerated wheat (Triticum aestivum L. cv. Chinese Spring) x barley (Hordeum vulgare L. cv. Betzes) hybrids. Five different translocations were observed. Sequential N-banding and GISH analyses were performed to further identify the translocations. The N-banding pattern of the Robertsonian translocation suggests that this chromosome consists of the short arm of barley chromosome 4H translocated to the long arm of 2B of wheat. Plants with four different homozygous translocations were selected from the following BC2F3 generation.
Laccase (EC 1.10.3.2) is a small group of enzymes that catalyze the oxidation of a broad range of phenolic compounds including hazardous and recalcitrant pollutants in the environment. This study attempted to develop an efficient system for production of a recombinant laccase by chloroplast genetic transformation of tobacco. Chloroplast transformation vector was constructed and introduced into the tobacco chloroplast genome using particle bombardment. Chloroplast-transformed plants were subsequently regenerated. PCR and southern blot analyses confirmed stable integration of the laccase gene into the chloroplast genome. Northern blot analysis revealed that mRNA of the laccase gene was highly expressed in chloroplast-transformed plants.
Protoplasts were isolated from mesophyll of tobacco(Nicotiana glauca) transformed with kanamycin-resistant gene (NPT II gene) and potato hairy root callus containing Ri plasmid of Agrobacterium rhiEogenes, and protoplasm fusion was made between the isolated protoplasts. The transgenic tobacco leaf tissue could grow on the media containing high concentrations of kanamycin, but not on the phytohormone-free media. On the other hand, the potato hairy root calli could be cultured on the phytohormone-free media but not on media containing more than 40 ㎍/ml kanamycin. In these conditions, the viability of both protoplasts were above 90%, These selection markers were used for the selection of protoplasts fused between the two, i.e. protoplast fusion was detected using selection media containing 100㎍/ml kanamycin and with no phytohormone. The mixture of 1.0% cellulase, 0.3% macerozyme, and 0.7M mannitol was best for the maximum protoplast production for tobacco, and that of 2.0% cellulase, 2.0% macerozyme, 1.0% dricelase, and 0.5M mannitol for potato. Both tobacco mesophyll and potato callus protoplasts were fused by using PEG solution on the selectable medium. Cell walls were regenerated after 5 days in this medium, and colonies were alive until 4 weeks after cultural, but died after 6 weeks.
This study describes culture conditions for a plant regeneration system via a combined pathway of somatic embryogenesis and organogenesis in root explant cultures of the commercial rose cultivar 'Charming'. Root explants formed white calluses at a frequency of 30% after 6 weeks of culture on Schenk and Hildebrandt (SH) medium supplemented with $11mg\;1^{-1}$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid. After 6 weeks of transfer to SH medium without growth regulators, initial white calluses gave rise to globular somatic embryos at a frequency of 2.8%, which were subsequently dedifferentiated to embryonic tissues. Somatic embryos or embryonic tissues initially derived from root explants did not undergo development beyond cotyledonary stage. To produce adventitious shoots, embryonic tissues were sliced and cultured on SH medium with $0.5mg\;1^{-1}$ 6-benzyladenine. After 4 weeks of culture, 28% of embryonic tissue explants formed adventitious shoots. Regenerated shoots were rooted on half strength SH medium with $0.1mg\;1^{-1}$${\alpha}-naphthalaneacetic$ acid and subsequently grown to maturity. Root-derived embryonic tissues were proliferated by subculture, while retaining the capacity for shoot production for a few years.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.22
no.2
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pp.101-106
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2002
This study was conducted to obtain the transformed tobacco (Nicotiana tubacum) plants with cytosolic ascorbate peroxidase gene(ApxSC7) using Agrobacterium tumefaciens LBA4404. A cDNA encoding the cytosolic ascorbate peroxidase of strawberry, ApxSC7, was introduced into tobacco plants via Agrobacterium-mediated gene transfer system. The expression vector, pIG-AP8, harboring ApxSC7 gene was used for production of transgenic tobacco plants. A large number of transgenic plants were regenerated on a medium containing hygromycin. Integration of ApxSC7 gene was confirmed by PCR and Southern blot analyses with genomic DNA. Northern blot analyses revealed that the pIGap8 gene was constitutively expressed.
Allium hookeri L. (Alliaceae family) is an important ethnomedicinal plant native to the Himalayan region of Asia. The aim of this research was to establish a high-frequency plant regeneration system for in vitro propagation of A. hookeri. Among the tissue types examined, receptacle explants derived from immature flower buds showed the highest regeneration rate of shoots ($93.33{\pm}4.63%$), roots ($76.67{\pm}7.85%$), and calli ($80.00{\pm}7.43%$) when cultured on Gamborg B5 (B5) medium containing $10{\mu}M$ 6-benzylaminopurine (BA) + $1{\mu}M$ naphthalene acetic acid (NAA), $0.5{\mu}M$ BA + $5{\mu}M$ NAA, and $1{\mu}M$ BA + $10{\mu}M$ NAA, respectively. Shoot multiplication was superior when cultured in liquid rather than on solid medium and relatively high concentrations of BA, ranging from 5 to $10{\mu}M$. Efficient bulblet formation following root induction from shoot clumps was achieved with culture in liquid B5 medium containing 7% (w/v) sucrose. Regenerated bulblets were successfully acclimatized to ex vitro conditions with a greater than 95% survival rate. By this method, a maximum of 62 plantlets per receptacle could be propagated within 9 weeks of initial culture. The in vitro propagation system established in this study will promote A. hookeri biotechnology, including large-scale production of healthy and aseptic clones, preserving parental genotypes with desirable traits, and genetic manipulation to enhance medicinal value.
Effects of shaking, medium consistency and anther density on polyhaploid production in two wheat cultivars, Pavon and Chris, were studied using a modified 85D12 medium. Pavon produced more calli in shaking and more albino plants tban Chris. However, Chris produced threefold more green plants than Pavon in non-shaking treatment. More calli and green plants were derived from non-shaking treatment than those from shaking treatment. Anthers were cultured on both liquid and semi-solid 85D12 media, using two anther densities, 48 and 96 anthers per plate. Although Pavon generally produced more calli and albino plants than Chris, Chris produced more green plants than Pavon. More green plants were derived from semi-solid medium than those from liquid medium. A factor that may affect plant regeneration from anthers is the length of time on initiation medium. Most of the calli for both genotypes were transferred during the first two time periods. Fertility, as measured by seed set, was determined for all surviving regenerated plants. About 24% of Chris and Pavon anther-derived green plants in the experiment of medium consistency and anther density produced seed.
Purpose: In this study, porous type I collagen scaffolds were cross-linked using dehydrothermal(DHT) treatment and/or 1-ethyl-3-(3-dimethyl aminopropyl) carbodiimide(EDC), in the presence and absence of chondroitin-6-sulfate(CS) and cultured autologous chondrocytes(Chondro) for cartilage regeneration. Methods: Cartilage defects were created in the proximal part of the ear of New Zealand rabbits. Four prepared types of scaffolds(n=4) were inserted. The groups included Chondro-Collagen-DHT(Group 1), Chondro- Collagen-DHT-EDC(Group 2), Chondro-CS-Collagen- DHT(Group 3), and Chondro-CS-Collagen-DHT-EDC (Group 4). Histomorphometric analysis and cartilage-specific gene expression of the reconstructed tissues were evaluated 4, 8, and 12 weeks after implantation. Results: EDC cross-linked groups 2 and 4 regenerated more cartilage than other groups. However, calcification was observed in the 4th week after implantation. CS did not increase chondrogenesis in all groups. Cartilage-specific type II collagen mRNA expression increased in the course of time in all groups.Conclusion: EDC cross-linking methods maintain the scaffold and promote extracellular matrix production of chondrocytes.
Kim, Hyun A;Kwon, Suk Yoon;Yang, Moon Sik;Choi, Pil Son
Journal of Plant Biotechnology
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v.41
no.1
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pp.50-55
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2014
Plant-based vaccines possess some advantages over other types of vaccine biotechnology such as safety, low cost of mass vaccination programs, and wider use of vaccines for medicine. This study was undertaken to develop the transgenic maize as edible vaccine candidates for humans. The immature embryos of HiII genotype were inoculated with A. tumefaciens strain C58C1 containing the binary vectors (V662 or V663). The vectors carrying nptII gene as selection marker and scEDIII (V662) or wCTB-scEDIII (V663) target gene, which code EIII proteins inhibite viral adsorption by cells. In total, 721 maize immature embryos were transformed and twenty-two putative transgenic plants were regenerated after 12 weeks selection regime. Of them, two- and six-plants were proved to be integrated with scEDIII and wCTB-scEDIII genes, respectively, by Southern blot analysis. However, only one plant (V662-29-3864) can express the gene of interest confirmed by Northern blot analysis. These results demonstrated that this plant could be used as a candidated source of the vaccine production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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