T4 endonuclease V (T4 endo V) [EC 3. 1. 25. 1], found in bacteriophage T4, is responsible for excision repair of damaged DNA. The enzyme possesses two activities: a cyclobutane pyrimidine dimer DNA glycosylase (CPD glycosylase) and an apyrimidic/apurinic endonuclease (AP lyase). T4 denV (414 bp cDNA) encoding T4 en do V (138 amino acid) was synthesized and expressed using either an expression vector, pTriEx-4, in E. coli or a baculovirus AcNPV vector, pBacPAK8, in insect cells. The recombinant His-Tag/T4 endo V (rHis-Tag/T4 endo V) protein expressed from bacteria was purified using one-step affinity chromatography with a HiTrap Chelating HP column and used to make rabbit anti-His-Tag/T4 endo V polyclonal antibody for detection of recombinant T4 endo V (rT4 endo V) expressed in insect cells. In the meantime, the recombinant baculovirus was obtained by cotransfection of BacPAK6 viral DNA and pBP/T4 endo V in Spodoptera frugiperda (Sf21) insect cells, and used to infect Sf21 cells to overexpress T4 endo V protein. The level of rT4 endo V protein expressed in Sf21 cells was optimized by varying the virus titers and time course of infection. The optimal expression condition was set as follows; infection of the cells at a MOI of 10 and harvest at 96 h post-infection. Under these conditions, we estimated the amount of rT4 endo V produced in the baculovirus expression vector system to be 125 mg/l. The rT4 endo V was purified to homogeneity by a rapid procedure, consisting of ion-exchange, affinity, and reversed phase chromatographies, based on FPLC. The rT4 endo V positively reacted to an antiserum made against rHis-Tag/T4 endo V and showed a residual nicking activity against CPD-containing DNA caused by UV. This is the first report to have T4 endo V expressed in an insect system to exclude the toxic effect of a bacterial expression system, retaining enzymatic activity.
In order to express the FLP recombinase in B. mori cultured cell line, BmN-4, transient expression system using a heat shock protein gene (hsp70) promoter of Dorosophilla melnogaster was constructed. This vector was designated as pHsSV. Activity strength of the hsp70 promoter was compared with that of immediate early gene (IE-1) and polyhedrin gene of BmNPV employing the E. coli $\beta$-galactosidase gene as a reporter gene. The result showed that the pHs $\beta$-gal plasmid vector expressed the $\beta$-galactosidase at 2nd and 3rd day after the transfer of plasmid DNA into BmN-4 cells, which was similar to that of pIE1 $\beta$-gal vector, but different from that of a recombinant virus, vBm $\beta$-gal. For the construction of FLP recombinase transient expression vector, the FLP recombinase gene was cloned by polymerase chain reaction technique. To express the FLP recombinase, this gene was inserted into pHsSV plasmid vector, under the control of the hsp70 promotor, and tranfected in BmN-4 cells. The expressed FLP recombinase was estimated at 44kDa on a 12.5% SDS-PAGE.
The fur (ferric uptake regulation) expression vector pMON2064 was modified to produce a Fur-fusion expression vector. A kinker site, factor Xa cleavage site, and several restriction endonuclease sites were introduced to facilitate easy cloning and isolating of the fusion protein. The resulting fusion expression vector, pMONSTER, was then used to make fusion expression vector, pMONSTER, was then used to make fusion proteins with $\beta$-galactosidase and the protease of the human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1 PR). Strain SW4020 harboring the Fur $\beta$-galactosidase fusion vector produced blue colonies on a 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-$\beta$-D-galactoside plate and the resulting 133 kDa fusion protein reacted with an anti-Fur antibody. The strain harboring the Fur-HIV-1 PR fusion vector produced a 29 kDa fusion protein, which also reacted with an anti-Fur antibody. The Fur-HIV-1 PR fusion protein was purified by a single column application that was designed to isolate the Fur protein. The purified Fur-HIV-1 PR fusion protein digested with factor Xa cleaved a recombinant Gag protein to release smaller fragments, including a p24 capsid protein. The Fur-HIV-1 PR fusion protein itself did not exhibit any proteolytic activity.
Dendrolimus punctatus tetravirus (DpTV) has been identified as a new member of the genus Omegatetravirus of the family Tetraviridae that may be related serologically to Nudaurelia capensis virus ($N{\omega}V$). To establish the function of DpTV RNA genome and to better understand the mechanism of viral replication, the putative RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) domain has been cloned and expressed in Escherichia coli. The recombinant protein was purified on a Ni-chelating HisTrap affinity column and demonstrated to initiate viral RNA synthesis in a primer-independent manner but not by terminal nucleotidyle transferase activity in the presence of $Mg^{2+}$ and RNA template. Mutation of the GDD to GAA interferes with the residues at the polymerase active site and metal ions, and thus renders the polymerase inactive.
Human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) contains several nonstructural genes which are required for the viral replication and disease pathogenesis. Among them, tat and nef genes encode an essential transactivator of HIV-1 LTR and a pluripotent protein which seems to be essential for the in vivo but not in vitro viral replication, respectively. We constructed two tat and n of defective HIV-1 and tested for their ability to replicate in several T cells. The defective viruses did not replicate in CD4$\^$+/ T cells, but rescued in the recombinant Jurkat-tat cell which also contains tat gene. The replication of tat and nef defective HIV-1 which expresses chloramphenicol acetyltransferase(CAT) gene was easily detected by a sensitive CAT assay. No revertant was identified during the passages of the mutant viruses for more than two months in Jurkat-tat cells. tat and n of defective HIV-1 could be used instead of wild type viruse for several purposes such as inhibitor screening and development of attenuated AIDS vaccine.
Care of patients with sepsis has improved over the last decade. However, in the recent two years, there was no significant progress in the development of a new drug for critically ill patients. In January 2011, it was announced that the worldwide phase 3 randomized trial of a novel anti-Toll-like receptor-4 compound, eritoran tetrasodium, had failed to demonstrate an improvement in the mortality of patients with severe sepsis. In October 2011, Xigris (drotrecogin alfa, a recombinant activated protein C) was withdrawn from the market following the failure of its worldwide trial that had attempted to demonstrate improved outcome. These announcements were disappointing. The recent failure of 2 promising drugs to further reduce mortality suggests that new approaches are needed. A study was published showing that sepsis can be associated to a state of immunosuppression and loss of immune function in human. However, the timing, incidence, and nature of the immunosuppression remain poorly characterized, especially in humans. This emphasizes the need for a better understanding of sepsis as well as new therapeutic strategies. Many clinical experiences of the extracorporeal membrane oxygenator (ECMO) treatment for adult acute respiratory distress syndrome (ARDS) patients, which is caused by the H1N1 influenza A virus, were reported. The use of ECMO in severe respiratory failure, particularly in the treatment of adult ARDS, is occurring more commonly.
Background: To develop a novel treatment strategy for hepatitis B virus infection, a major cause of liver chirosis and cancer, we aimed to make human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein playing in important role in HBV replication. In this regard, phage display technology was employed and demonstrated as an efficient cloning method for human monoclonal antibody. So this study analysed the usability of human monoclonal antibody as protein based gene therapy. Methods: RNase H of HBV was expressed as fusion protein with maltose binding protein and purified with amylose resin column. Single chain Fv (scFv) phage antibody library was constructed by PCR cloning using total RNAs of PBMC from 50 healthy volunteers. Binders to RNase H were selected with BIAcore 2000 from the constructed library, and purified as soluble antibody fragment. The affinity and sequences of selected antibody fragments were analyzed with BIAcore and ABI automatic sequencer, respectively. And finally RNase H activity inhibiting assay was carried out. Results: Recombinant RNase H expressed in E. coli exhibited an proper enzyme activity. Naive library of $4.46{\times}10^9cfu$ was screened by BIAcore 2000. Two clones, RN41 and RN56, showed affinity of $4.5{\times}10^{-7}M$ and $1.9{\times}10^{-7}M$, respectively. But RNase H inhibiting activity of RN41 was higher than that of RN56. Conclusion: We cloned human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein of HBV. These antibodies can be expected to be a good candidate for protein-based antiviral therapy by preventing a replication of HBV if they can be expressed intracellularly in HBV-infected hepatocytes.
3D8 single chain variable fragment (scFv) is a recombinant monoclonal antibody with nuclease activity that was originally isolated from autoimmune-prone MRL mice. In a previous study, we analyzed the nuclease activity of 3D8 scFv and determined that a HeLa cell line expressing 3D8 scFv conferred resistance to herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and pseudorabies virus (PRV). In this study, we demonstrate that 3D8 scFv could be delivered to target tissues and cells where it exerted a therapeutic effect against PRV. PRV was inoculated via intramuscular injection, and 3D8 scFv was injected intraperitoneally. The observed therapeutic effect of 3D8 scFv against PRV was also supported by results from quantitative reverse transcription polymerase chain reaction, southern hybridization, and immunohistochemical assays. Intraperitoneal injection of 5 and $10{\mu}g$ 3D8 scFv resulted in no detectable toxicity. The survival rate in C57BL/6 mice was 9% after intramuscular injection of 10 $LD_{50}$ PRV. In contrast, the 3D8 scFv-injected C57BL/6 mice showed survival rates of 57% ($5{\mu}g$) and 47% ($10{\mu}g$). The results indicate that 3D8 scFv could be utilized as an effective antiviral agent in several animal models.
This study was conducted to investigate enhancement of anti-tumor effects of the lentogenic Newcastle disease virus Clone30 strain (NDV rClone30) expressing cytosine deaminase (CD) gene against tumor cells and in murine groin tumor-bearing models. Cytotoxic effects of the rClone30-CD/5-FC on the HepG2 cell line were examined by an MTT method. Anti-tumor activity of rClone30-CD/5-FC was examined in H22 tumor-bearing mice. Compared to the rClone30-CD virus treatment alone, NDV rClone30-CD/5-FC at 0.1 and 1 MOIs exerted significant cytotoxic effects (P<0.05) on HepG2 cells. For treatment of H22 tumor-bearing mice, recombinant NDV was injected together with 5-FC given by either intra-tumor injection or tail vein injection. When 5-FC was administered by intra-tumor injection, survival for the rClone30-CD/5-FC-treated mice was 4/6 for 80 days period vs 1/6, 0/6 and 0/6 for the mice treated with rClone30-CD, 5-FC and saline alone, respectively. When 5-FC was given by tail vein injection, survival for the rClone30-CD/5-FC-treated mice was 3/6 vs 2/6, 0/6 and 0/6 for the mice treated with rClone30-CD, 5-FC or saline alone, respectively. In this study, NDV was used for the first time to deliver the suicide gene for cancer therapy. Incorporation of the CD gene in the lentogenic NDV genome together with 5-FC significantly enhances cell death of HepG2 tumor cells in vitro, decreases tumor volume and increases survival of H22 tumor-bearing mice in vivo.
흰반점바이러스(WSSV)는 새우양식산업에 막대한 경제적 손실을 일으키는 가장 치명적인 바이러스성 질병 원인체 중 하나이다. 본 연구는 인위적인 실험모델로서 WSSV에 대한 자주새우(Crangon affinis)의 감수성을 확인하고자 실험을 수행하였다. WSSV가 희석된 수조 내에서 침지법으로 감염된 새우는 감염 후 7일째에 100% 누적폐사율을 보여 자주새우가 WSSV에 대해 매우 높은 감수성을 갖고 있음을 확인하였다. 또한 재조합단백질인 rVP466에 대한 항혈청의 중화효과를 확인하기 위해 항혈청과 반응시킨 바이러스액($1{\times}10^4$ 배로 희석된 WSSV)을 이용하여 침지법으로 자주새우에 대해 공격실험(challenge test)을 수행하였다. 실험 결과, WSSV로 challenge한 감염대조구(positive control)의 새우들은 감염 후 5일째에 100% 폐사하였으며, WSSV와 rVP466 항혈청을 1:0.01, 1:0.1, 1:1로 혼합한 액으로 challenge한 새우들은 감염 후 14일째에 각각 100%, 68.8%, 68.8%의 누적폐사율을 보였다. 따라서 본 연구 결과는 연안서식종인 자주새우가 양식장으로부터 배출된 WSSV에 의해 자연상태에서 감염 될 수 있는 가능성과 함께 항혈청에 대한 중화효과를 나타냄으로써 겨울철 저수온기에 WSSV 감염을 위한 대체 실험생물로서의 유용성을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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