In this study, we describe the development of a simple and efficient method for cell lysis via the insertion of a bacteriophage lambda lysis gene cluster into the pET22b expression vector in the following order; the T7 promoter, a gene for a target protein intended for production, Sam7 and R. This insertion of R and Sam7 into pET22b exerted no detrimental effects on cellular growth or the production of a target protein. The induction of the T7 promoter did not in itself result in the autolysis of cells in culture but the harvested cells were readily broken by freezing and thawing. We compared the efficiency of the cell lysis technique by freezing and thawing to that observed with sonication, and determined that both methods completely disintegrated the cells and released proteins into the solution. With our modification of pET22b, the lysis of cells became quite simple, efficient, and reliable. This strategy may prove useful for a broad variety of applications, particularly in experiments requiring extensive cell breakage, including library screening and culture condition exploration, in addition to protein purification.
Kim, Yong-Ae;Park, Jae-Joon;Hwang, Jung-Hyun;Park, Tae-Joon
한국자기공명학회논문지
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제15권2호
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pp.175-186
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2011
Amyloid fibrils have long been known to be the well known ${\alpha}$-helix to ${\beta}$-sheet transition characterizing the conversion of cellular to scrapie forms of the prion protein. A very short sequence of Yeast prion-like protein, GNNQQNY (SupN), is responsible for aggregation that induces diseases. KSI-fused tandem repeats of SupN vector are constructed and used to express SupN peptide in Escherichia coli (E.Coli). A method for a production, purification, and cleavage of tandem repeats of recombinant isotopically enriched SupN in E. coli is described. This method yields as much as 20 mg/L of isotope-enriched fusion proteins in minimal media. Synthetic SupN peptides and $^{13}C$ Gly labeled SupN peptides are studied by Congo Red staining, Birefringence and transmission electron microscopy to characterize amyloid fibril formation. To get a better understanding of aggregation-structure relationship of 7 residues of Yeast prion-like protein, the change of a conformational structure will be studied by $^{13}C$ solid-state nmr spectroscopy as powder of both amorphous and fibrillar forms.
The genomic region of Grapevine fanleaf virus (GFLV) encoding the movement protein (MP) was cloned into pET21a and transformed into Escherichia coli strain BL21 (DE3) to express the protein. Induction was made with a wide range of isopropyl-${\beta}$-D-thiogalactopyranoside (IPTG) concentrations (1, 1.5, and 2 mM) each for duration of 4, 6, or 16 h. However, the highest expression level was achieved with 1 mM IPTG for 4 h. Identity of the expressed protein was confirmed by sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) followed by Western blotting. The expressed 41 kDa protein was purified under denaturing condition by affinity chromatography, reconfirmed by Western blotting and plate-trapped antigen enzyme-linked immunosorbent assay (PTA-ELISA) before being used as a recombinant antigen to raise polyclonal antibodies in rabbits. Purified anti-GFLV MP immunoglobulines (IgGs) and conjugated IgGs detected the expressed MP and GFLV virions in infected grapevines when used in PTA-ELISA, double antibody sandwich-ELISA, and Western blotting. This is the first report on the production of anti-GFLV MP polyclonal antibodies and application for the virus detection.
Abdul Rahman, Nor Aini;Shirai, Yoshihito;Shimizu, Kazuyuki;Hassan, Mohd Ali
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제7권5호
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pp.281-288
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2002
Recombinant Escherichia coli strain harboring the ${\lambda}$pR-pL promotor and heterologus poly-${\beta}$-hydroxybutyrate (PHB) biosynthesis genes was used to investigate the effect of culture conditions on the efficient PHB production. The expression of phb genes was induced by a temperature upshift from $33^{\circ}C\;to\;38^{\circ}C$. The protein expression levels were measured by using two-dimensional electrophoresis, and the enzyme activities were also measured to understand the effect of culture temperature, carbon sources, and the dissolved oxygen (DO) concentration on the metabolic regulations. AcetylCoA is an important branch point for PHB production. The decrease in DO concentration lowers the citrate synthase activity, thus limit the flux toward the TCA cycle, and increase the flux for PHB production. Since NADPH is required for PHB production, the PHB production does not continue leading the overproduction of acetate and lac-tate. Based on these observations, a new operation was considered where DO concentration was changed periodically, and it was verified its usefulness for the efficient PHB production by experiments.
Kim, Tae-Su;Jung, Hyung-Moo;Kim, Sang-Yong;Zhang, Liaoyuan;Li, Jinglin;Sigdel, Sujan;Park, Ji-Hyun;Haw, Jung-Rim;Lee, Jung-Kul
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권7호
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pp.1093-1100
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2015
Acetate and lactate in growth media are detrimental to the production of Thermus maltogenic amylase (ThMA), a heterologous protein, as well as to the growth of recombinant Escherichia coli. Only 50 mM of acetate or 10 mM of lactate reduced 90% of specific ThMA activity. In this study, mutant E. coli strains blocked in the ackA-pta or ackA-pta and ldh pathways were created, characterized, and assessed for their culture performace in 300 L-scale fermentation. The ackApta and ldh double-mutant strain formed significantly less lactate and acetate, and produced a concomitant increase in the excretion of pyruvate (17.8 mM) under anaerobic conditions. The ackA-pta mutant strain accumulated significant acetate but had an approximately 2-fold increase in the formation of lactate. The ackA-pta and ldh double-mutant strain had superior overall performance in large-scale culture under suboptimal conditions, giving 67% higher cell density and 66% higher ThMA activity compared with those of the control strain. The doublemutant strain also achieved a 179% improvement in volumetric ThMA production.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제3권1호
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pp.75-81
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2001
We have constructed a novel recombinant Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) producing the green fluorescent polyhedra. For the production of the fluorescent polyhedra, partial polyhedrin gene containing KRKK as nuclear localization site from the BmNPV polyhedrin gene and the green fluorescent protein (gfp) gene were introduced under the control of p10 promoter of BmNPV. The recombinant BmNPV was stably produced fluorescent polyhedra in the infected Bm5 cells and the morphology of the fluorescent polyhedra was similar to that of wild-type BmNPV. The fluorescent polyhedra had 32 kDa native polyhedrin and 41 kDa fusion protein. From these data, we have further developed a novel BmNPV p10-based transfer vector producing recombinant polyhedra with foreign gene Product. The novel BmNPV P10-based transfer vector is composed of partial polyhedrin gene, factor Xa, and multiple cloning sites.
Bone morphogenetic protein-4 (BMP-4) is considered to have therapeutic potential for various diseases, including cancers; however, the high expression of biologically active recombinant human BMP-4 (rhBMP-4) needed for its manufacture for therapeutic purposes has yet to be established. In the current study, we established a recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cell line overexpressing rhBMP-4 as well as a production process using 7.5-l bioreactor (5 L working volume). The expression of the mature rhBMP-4 was significantly enhanced by recombinant furin expression. The combination of a chemically defined medium and a nutrient supplement solution for high expression of rhBMP-4 was selected and used for bioreactor cultures. The 11-day fed-batch cultures of the established rhBMP-4-expressing rCHO cells in the 7.5-L bioreactor produced approximately 32 mg/l of rhBMP-4. The mature rhBMP-4 was purified to homogeneity from the culture supernatant using a two-step chromatographic procedure, resulting in a recovery rate of approximately 55% and a protein purity greater than 95%. The N-terminal amino acid sequences and N-linked glycosylation of the purified rhBMP-4 were confirmed by N-terminal sequencing and de-N-glycosylation analysis, respectively. The mature purified rhBMP-4 has been proved to be functionally active, with an effective dose concentration of $EC_{50}$ of 2.93 ng/ml.
In this paper, a fed-batch cultivation process in recombinant Escherichia coli BL21(DE3) bacteria, for the production of human soluble catechol-O-methyltransferase (hSCOMT), is presented. For the first time, a straightforward model is applied in a recombinant hSCOMT expression system and distinguishes an initial cell growth phase from a protein production phase upon induction. Specifically, the kinetic model predicts biomass, substrate, and product concentrations in the culture over time and was identified from a series of fed-batch experiments designed by testing several feed profiles. The main advantage of this model is that its parameters can be identified more reliably from distinct fed-batch strategies, such as glycerol pulses and exponential followed by constant substrate additions. Interestingly, with the limited amount of data available, the proposed model accomplishes satisfactorily the experimental results obtained for the three state variables, and no exhaustive process knowledge is required. The comparison of the measurement data obtained in a validation experiment with the model predictions showed the great extrapolation capability of the model presented, which could provide new complementary information for the COMT production system.
최근 급속도로 당뇨병 환자가 증가하면서 인슐린 시장이 크게 성장하고 있다. 또한 최근 식물체를 이용하여 의약용 단백질 생산이 경제적인 측면과 안정성 측면에서 매우 효과적임이 보고되고 있어 이를 이용한 분자농업이 주목을 받고 있다. 본 연구에서는 인슐린 단백질을 식물체에서 생산하기 위한 유전자 발현 construct를 설계하기 위한 실험으로서 식물발현용 preprominiinsulin construct를 제조하기 위한 단계적 실험을 수행하였다. 우선 proinsulin이 무세포 식물 전사/번역시스템에서 성공적으로 발현됨을 확인하였다. Prominiinsulin construct를 제조하여 대장균에서 발현시키는데 성공하였으며, 이를 트립신으로 절단한 후 인간 항인슐린 항체를 이용한 western 분석을 통하여 효과적으로 A-펩타이드와 B-펩타이드가 형성되며 이후 적절하게 접힘이 일어나고 hexamer로 조립됨을 확인하였다. 이후 식물체에서 재조합 인슐린 유전자가 발현되는지를 확인하기 위하여 RFP 결합 construct를 제조하여 담배의 현탁배양세포인 BY-2 세포에 형질전환시켜 RFP 결합 preprominiinsulin이 성공적으로 발현됨을 확인 하였다. 이러한 성공적인 연구 결과를 토대로 향후 이 construct는 RFP 단백질을 제거하여 35S 프로모터에 직접 유도되는 [N 말단 ${\rightarrow}$ tobacco E2 시그널 펩타이드 ${\rightarrow}$ B-펩타이드(1-29 AA) ${\rightarrow}$ AAK ${\rightarrow}$ A-펩타이드(1-21 AA) ${\rightarrow}$ RR ${\rightarrow}$ His6 ${\rightarrow}$ KDEL ${\rightarrow}$ C 말단] construct를 제조하여 담배 식물체에 형질전환시켜 분자농업을 통해 인간 인슐린 단백질을 생산하는데 활용하고자 한다.
본 연구는 가금에서 호흡기 질환, 심낭수종, 봉입체 간염, 산란저하증 등을 유발하는 가금 아데노바이러스의 fiber 2 유전자에 대한 특이 난황 항체를 개발하고자 실험을 실시하였다. Fiber 2 유전자를 클로닝한 뒤, 대장균 발현 시스템을 이용하여 약 22 kDa의 재조합 fiber 2 단백질을 생산하였다. 이를 산란계에 3주 간격으로 총 4회 면역하여 혈청 및 난황 내 항체가를 측정한 결과, 면역 후 12주경에 항체가가 최고치에 달하였으며, 산란계로부터 획득한 난황 항체를 이용한 Western blot analysis 결과, 가금 아데노바이러스 내 fiber 2 단백과 특이적으로 반응한다는 것을 규명하였다. 결론적으로, 가금 아데노바이러스 fiber 2에 특이적인 난황 항체 생산에 성공하였으며, 이러한 특이적인 난황 항체는 가금 아데노바이러스로 인한 질병의 예방 및 치료에 활용 가능할 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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