KiSS1-derived peptide receptor, a GPCR protein, binds with the hormone Kisspeptin plays a major role in the neuroendocrine regulation of reproduction. It is important in the onset of puberty and triggers the release of gonadotrophin-releasing hormone. It is a potential drug target for the disorders related to GnRH, hence, analysing the structural features of the receptor becomes important. The three dimensional of the receptor modelled in a previous study was utilised. In this study, we have analysed the protein - protein interaction of the receptor with Kisspeptin 10 and 15. The study revealed the important residues which are involved in the interaction. The result of this study could be helpful in understanding the mechanism of Kiss1 receptor activation and the pathophysiology of the disorders related to the receptor.
To investigate the effect of the third intracellular loop (i3 loop) peptide of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor on receptor agonist binding, we expressed third intracellular loop region of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor as glutathione S-transferase fusion protein in E. coli. DNA fragment of the receptor gene which encodes amino acid 221-274 of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor was amplified by polymerase chain reaction and subcloned into the bacterial fusion protein expression vector pGEX-CS and expressed as a form of glutathione-S-transferase (GST) fusion protein in E. coli DH5$\alpha$. The receptor fusion protein was identified by SDS-PAGE and Western blot using monoclonal anti-GST antibody. The fusion protein expressed in this study was purified to an apparent homogeneity by glutathione Sepharose CL-4B affinity chromatography. The purified i3 loop fusion proteins at a concentration of 10 $\mu\textrm{g}$/ι caused right shift of the isoproterenol competition curve of [$^3$H]Dihydroalprenolol binding to hamster lung $\beta$$_2$-adrenergic receptor indicating lowered affinity of isoproterenol to $\beta$$_2$-adrenergic receptor possibly due to the uncoupling of receptor and G protein in the presence of the fusion protein. The uncoupling of receptor and G protein suggests that i3 loop region plays a critical role on $\beta$$_2$-adrenergic receptor G protein coupling.
Bradykinin receptor B2 (B2R) is a GPCR protein which binds with the inflammatory mediator hormone bradkynin. Kallidin, a decapeptide, also signals through this receptor. B2R is crucial in the cross-talk between renin-angiotensin system (RAS) and the kinin-kallikrein system (KKS) and in many processes including vasodilation, edema, smooth muscle spasm and pain fiber stimulation. Thus the structural study of the receptor becomes important. We have predicted the peptide structures of Bradykinin and Kallidin from their amino acid sequences and the structures were docked with the receptor structure. The results obtained from protein-protein docking could be helpful in studying the B2R structural features and in the pathophysiology in various diseases related to it.
For screening of autoregulator receptor gene from Saccharopolyspora erythraea, PCR was performed with primers of receptor gene designed on the basis of amino acid sequences of autoregulator receptor proteins with known function. PCR products were subcloned into the BamHI site of pUC19 and transformed into the E. coli DH5$\alpha$. The isolated plasmid from transformant contained the fragment of 120 bp, which was detected on 2% gel after BamHI treatment. The insert, 120 bp PCR product, was confirmed as the expected internal segment of gene encoding autoregulator receptor protein by sequencing. Southern and colony hybridization using Saccha. erythraea chromosomal DNA were performed with the insert as probe. The plasmid (pEsg) having 3.2 kbp SacI DNA fragment from Saccha. erythraea is obtained. The 3.2 kbp SacI DNA fragment was sequenced by the dye terminator sequencing. The nucleotide sequence data was analyzed with GENETYX-WIN (ver 3.2) computer program and DNA database. frame analyses of the nucleotide sequence revealed a gene encoding autoregulator receptor protein which is a region including KpnI and SalI sites on 3.2 kbp SacI DNA fragment. The autoregulator receptor protein consisting of 205 amino acid was named EsgR by author. In comparison with known autoregulator receptor proteins, homology of EsgR showed above 30%.
To investigate whether human $\beta$$_2$-adrenergic receptor devoid of the C-terminal two transmembrane helices retain its ligand binding activity and specificity, 5'780-bp DNA fragment of the receptor gene which encodes amino acid 1-260 of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor was subcloned into the bacterial fusion protein expression vector and expressed as a form of glutathione-S-transferase (GST) fusion protein in E. coli DH5$\alpha$. The receptor fusion protein was expressed as a membrane bound form which was verified by SDS-PAGE and Western blot. The fusion protein expressed in this study specifically bound $\beta$-adrenergic receptor ligand [$^3$H] Dihydroalprenolol. In saturation ligand binding assay, the $K_{d}$ value was 7.6 nM which was similar to that of intact $\beta$$_2$-adrenergic receptor in normal animal tissue ( $K_{d}$=1~2 nM) and the $B_{max}$ value was 266 fmol/mg membrane protein. In competition binding assay, the order of binding affinity of various adrenergic receptor agonists to the fusion protein was isoproterenol》epinephrine norepinephrine, which was similar to that of intact receptor in normal animal tissue. These results suggest that N-terminal five transmembrane helices of the $\beta$$_2$-adrenergic receptor be sufficient to determine the ligand binding activity and specificity, irrespective of the presence or absence of the C-terminal two transmembrane helices.s.s.s.
The $G_{q/11}$ protein-coupled receptors, such as muscarinic (M1 & M3) receptors, have been shown to regulate the release of a soluble amyloid precursor protein (sAPP$\alpha$) produced from $\alpha$-secretase processing. However, there is no direct evidence for the precise characteristics of G proteins, and the signaling mechanism for the regulation of $G_{q/11}$ protein-coupled receptor mediated sAPP$\alpha$ release is not clearly understood. This study examined whether the muscarinic receptor-mediated release of sAPP$\alpha$ is directly regulated by $G\alpha_{q/11}$ proteins. The HEK293 cells were transiently cotransfected with muscarinic M3 receptors and a dominant-negative minigene construct of the G protein $\alpha$ subunit. The sAPP$\alpha$ release in the media was measured using an antibody specific for sAPP. The sAPP$\alpha$ release enhancement induced by muscarinic receptor stimulation was decreased by a $G_{q/11}$ minigene construct, whereas it was not blocked by a control minigene construct (the G$\alpha$ carboxy peptide in random order, G$\alpha_{q}$R) or $G\alpha_{j}$ constructs. This indicated a direct role of the $G\alpha_{q/11}$ protein in the regulation of muscarinic M3 receptor-mediated sAPP$\alpha$ release. We also investigated whether the transactivation of the epidermal growth factor receptor (EGFR) by a muscarinic agonist could regulate the sAPP$\alpha$ release in SH-SY5Y cells. Pretreatment of a specific EGFR kinase inhibitor, tyrophostin AG1478 (250 nM), blocked the EGF-stimulated sAPP$\alpha$ release, but did not block the oxoMstimulated sAPP$\alpha$ release. This demonstrated that the transactivation of the EGFR by muscarinic receptor activation was not involved in the muscarinic receptor-mediated sAPP$\alpha$ release.
Glucagon like pepide-2, one of the GLPs, is involved in various metabolic functions in the gastrointestinal tract. It plays a major role in the regulation of mucosal epithelium and the intestinal crypt cell proliferation. Because of their therapeutic importance towards the diseases in the gastrointestinal tract, it becomes necessary to study their interaction with its receptor, GLP-2R. In this study, we have developed protein-protein docking complexes of GLP-2 - GLP-2 receptor. Homology models of GLP-2 are developed, and a reliable model out of the predicted models was selected after model validation. The model was bound with the receptor, to study the important interactions of the complex. This study could be useful in developing novel and potent drugs for the diseases related with GLP-2.
G protein-coupled receptor kinases (GRKs) and ${\beta}$-arrestins have been known as regulators of G protein-coupled receptors. However, it has been recently reported that GRKs and ${\beta}$-arrestins mediate receptor-mediated cellular responses in a G proteinin-dependent manner. In this scheme, GRKs work as a mediator or a scaffold protein. Among 7 members of the GRK family (GRK1-GRK7), GRK2 is the most extensively studied in vitro and in vivo. GRK2 is involved in cellular migration, insulin signaling, and cardiovascular disease. GRK6 in concert with ${\beta}$-arrestin 2 mediates chemoattractant-stimulated chemotaxis of T and B lymphocytes. GRK5 shuttles between the cytosol and nucleus, and regulates the activities of transcription factors. GRK3 and GRK4 do not seem to have striking effects on cellular responses other than receptor regulation. GRK1 and GRK7 play specific roles in regulation of rhodopsin function. In this review, these newly discovered functions of GRKs are briefly described.
Corticotropin - releasing hormone receptor 1 (CRHR1) forms an integral part of the pathophysiology of disorders like post-traumatic stress disorder, stress, anxiety, addiction, and depression. Hence it is essential to look for new, potent and structure-specific inhibitors of CRHR1. We have analysed the protein-protein interaction complexes of the CRHR1 receptor with its native ligand CRF and full agonist Sauvagine. The structure of Sauvagine was predicted using homology modelling. We have identified that the residues TYR253, ASP254, GLU256, GLY265, ARG1014 and LY1060 are important in the formation of protein-protein complex formation. Future studies on these residues could throw light on the crucial structural features required for the formation of CRHR1-inhibitor complex and in studies that try to solve the structural complexities of CRHR1.
Stanniocalcin (STC), a glycoprotein hormone originally discovered in fish, has been implicated in calcium and phosphate homeostasis. While fishes and mammals possess two STC homologs (STC1 and STC2), the physiological roles of STC2 are largely unknown compared with those of STC1. In this study, we identified Ran-binding protein M (RanBPM) as a novel binding partner of STC2 using yeast two-hybrid screening. The interaction between STC2 and RanBPM was confirmed in mammalian cells by immunoprecipitation. STC2 enhanced the RanBPM-mediated transactivation of liganded androgen receptor (AR), but not thyroid receptor ${\beta}$, glucocorticoid receptor, or estrogen receptor ${\beta}$. We also found that AR interacted with RanBPM in both the absence and presence of testosterone (T). Furthermore, we discovered that STC2 recruits RanBPM/AR complex in T-dependent manner. Taken together, our findings suggest that STC2 is a novel RanBPM-interacting protein that promotes AR transactivation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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