Two strains (No. 26 and 143) of bacteria which secrete both pectinase and raw-starch-digesting amylase simultaneously, were isolated from various domestic soil samples. The two bacteria were identified as Pasteurella ureae judging by their morphological and physiological characteristics. The optimal culture conditions for the production of raw-starch-digesting enzyme by the Pasteurella ureae 26 were using $NH_4NO_3$ as the nitrogen source at $37^{\circ}C$ with the pH of 7.5, and 15 of C/N ratio. Since the enzyme was produced only when raw or soluble starch was used as a carbon source, but not when glucose or other sugars was used, the enzyme was considered to be an inducible enzyme by starch. Thin layer chromatography of the hydrolyzed product of starch by the raw-starch-digesting enzyme of the strain No. 26 showed that glucose, maltose and other oligosaccharides were present in the hydrolyzates, and therefore the enzyme seemed to be ${\alpha}-amylase$. The enzyme had adsorbability onto raw com starch in the pH range of 3 to 9.
The effect of alum$(Al{\cdot}K(SO_4)_2{\cdot}12H_{2}O)$ on the activity of raw starch-digesting enzyme produced by alkali-tolerant Bacillus sp. was investigated. In adding alum of 0.5%(w/w), activities of raw starch-digesting enzyme on the gelatinized and raw rice starches have not been inhibited. In case of adding alum of 5%(w/w), competitive and uncompetitive inhibition were observed for the gelatinized and raw rice starches, respectively. The inhibitory effect on the raw starch was much higher than that on the gelatinized starch.
The raw starch hydrolysis by amylase prepared from alkaline-tolerant Bacillus sp. were investigated. Degree of hydrolysis(%) of 5%(w/v) raw rice, corn and potato starch by this enzyme were about 40, 25 and 20%, respectively. The hydrolysis action on raw starch by change of blue value was similar to the action pattern of exo ${\beta}$-amylase. The hydrolysis products of rice starch were mainly glucose and maltose. Oligosaccarides were also detected. From the above results, this enzyme was considered as exo type ${\alpha}$-amylase. This enzyme activity on the raw starch and the gelatinized starch were 28.40 and 86.60 IU/mg protein, respectively, and the ratio of raw starch-digesting activity to gelatinized starch-digesting activity (raw starch digestivity) was about 32%. The Km values for the raw and the gelatinized starch were 4.22 and 3.0mg/mL, respectively, and the VmaX values were 0.20 and 0.31mg/mL/min, respectively.
A selected fungal strain, for production of the raw-starchdigesting enzyme by solid-state fermentation, was improved by two repeated sequential exposures to ${\gamma}$-irradiation of $Co^{60}$, ultraviolet, and four repeated treatments with Nmethyl-N'-nitrosoguanidine. The mutant strain Aspergillus sp. XN15 was chosen after a rigorous screening process, with its production of the raw-starch-digesting enzyme being twice that of usual wild varieties cultured under preoptimized conditions and in an unsupplemented medium. After 17 successive subculturings, the enzyme production of the mutant was stable. Optimal conditions for the production of the enzyme by solid-state fermentation, using wheat bran as the substrate, were accomplished for the mutant Aspergillus sp. XN15. With the optimal fermentation conditions, and a solid medium supplemented with nitrogen sources of 1% urea and 1% $NH_4NO_3$, 2.5 mM $CoSO_4$, 0.05% (v/w) Tween 80, and 1% glucose, the mutant Aspergillus sp. XN15 produced the raw-starch-digesting enzyme in quantities 19.4 times greater than a typical wild variety. Finally, XN15, through simultaneous saccharification and fermentation of a raw rice corn starch slurry, produced a high level of ethanol with $Y_{p/s}$ of 0.47 g/g.
A raw starch-digesting enzyme from Streptomyces sp. 4M-2 was purified by ammonium sulfate fractionation, DEAE-Sephadex A-50 column chromatography and Sephadex G-100 gel filtration. The specific activity of the purified enzyme was 51.22 RSU/mg protein and the yield was 4.5% of the total activity of the culture broth. The purified enzyme was found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and its molecular weight was estimated to be about 102, 000 daltons by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, The optimal temperature and pH for the enzyme activity were 42$^{\circ}C$ and PH 5.5, respectively. The enzyme had Km, value of 44.44mg/$m\ell$ for raw corn starch. The enzyme was activated by addition of calcium and barium ions. Corn amylose was degraded by the enzyme very easily and raw potato starch was also degraded easily. Main products of the enzymatic hydrolysis of raw corn starch were analyzed to be maltose and maltotriose. The enzyme was considered as $\alpha$-amylase.
Ethanol production by the simultaneous saccharification and fermentation (SSF) of low-value rice wine cake (RWC) without cooking was investigated. RWC is the filtered solid waste of fermented rice wine mash and contains 53% raw starch. For the SSF, the RWC slurry was mixed with the raw-starch-digesting enzyme of Rhizopus sp. and yeast, where the yeast strain was selected from 300 strains and identified as Saccharomyces cerevisiae KV25. The highest efficiency (94%) of ethanol production was achieved when the uncooked RWC slurry contained 23.03% starch. The optimal SSF conditions were determined as 1.125 units of the raw-starch-digesting enzyme per gram of RWC, a fermentation temperature of $30^{\circ}C$, slurry pH of 4.5, 36-h-old seeding culture, initial yeast cell number of $2{\times}10^7$ per ml of slurry, 17 mM of urea as the nitrogen additive, 0.25 mM of $Cu^{2+}$ as the metal ion additive, and a fermentation time of 90 h. Under these optimal conditions, the ethanol production resulting from the SSF of the uncooked RWC slurry was improved to 16.8% (v/v) from 15.1% (v/v) of pre-optimization.
A raw starch-digesting enzyme from Rhizopus oryzae was purified by ammonium sulfate fractionation, DEAE-sephacel column chromatography and Sephadex G-150 gel filtration. The specific activity of purified enzyme was 45.2 Ulmg protein and the yield was 16.2%. The purified enzyme was found to be homogeneous bypolyacrylamide gel electrophoresis and its molecular weight was estimated to be 67,000 by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, and also the enzyme had Km value of 4.082 mg/ml for raw corn starch. The optimal temperature and pH for the enzyme activity were $50^{\circ}C$ and 4.0-5.0, respectively. Reaction product of raw corn starch by purified enzyme was glucose mainly.
Complementary DNAs encoding $\alpha$-amylases (Amyl I, Amyl III) and glucoamylase (GA I) were cloned from Aspergillus awamori KT-11 and their nucleotide sequences were determined. The sequence of Amyl III that was a raw starch digesting $\alpha$-amylase was found to consist of a 1,902 bp open reading frame encoding 634 amino acids. The signal peptide of the enzyme was composed of 21 amino acids. On the other hand, the sequence of Amyl I, which cannot act on raw starch, consisted of a 1,500 bp ORF encoding 499 amino acids. The signal peptide of the enzyme was composed of 21 amino acids. The sequence of GA I consisted of a 1,920 bp ORF that encoded 639 amino acids. The signal peptide was composed of 24 amino acids. The amino acid sequence of Amyl III from the N-terminus to the amino acid number 499 showed 63.3% homology with Amyl I. However, the amino acid sequence from the amino acid number 501 to C-terminus, including the raw-starch-affinity site and the TS region rich in threonine and serine, showed 66.9% homology with GA I.
Raw-starch-digesting enzyme (RSDA) was immobilized on Amberlite beads by conjugation of glutaraldehyde/polyglutaraldehyde (PG)-activated beads or by crosslinking. The effect of immobilization on enzyme stability and catalytic efficiency was evaluated. Immobilization conditions greatly influenced the immobilization efficiency. Optimum pH values shifted from pH 5 to 6 for spontaneous crosslinking and sequential crosslinking, to pH 6-8 for RSDA covalently attached on polyglutaraldehyde-activated Amberlite beads, and to pH 7 for RSDA on glutaraldehyde-activated Amberlite. RSDA on glutaraldehyde-activated Amberlite beads had no loss of activity after 2 h storage at pH 9; enzyme on PG-activated beads lost 9%, whereas soluble enzyme lost 65% of its initial activity. Soluble enzyme lost 50% initial activity after 3 h incubation at $60^{\circ}C$, whereas glutaraldehyde-activated derivative lost only 7.7% initial activity. RSDA derivatives retained over 90% activity after 10 batch reuse at $40^{\circ}C$. The apparent $K_m$ of the enzyme reduced from 0.35 mg/ml to 0.32 mg/ml for RSDA on glutaraldehyde-activated RSDA but increased to 0.42 mg/ml for the PG-activated RSDA derivative. Covalent immobilization on glutaraldehyde Amberlite beads was most stable and promises to address the instability and contamination issues that impede the industrial use of RSDAs. Moreover, the cheap, porous, and non-toxic nature of Amberlite, ease of immobilization, and high yield make it more interesting for the immobilization of this enzyme.
A potent actinomycetes strain was selected to digest raw starch, which was classified as a strain of Streptomyces sp.. Its amylase production was maximized when it was grown on wheat bran extract media added 4% of cooked corn starch and 0.16% of potassium nitrate for 6 days at 3$0^{\circ}C$ and initial pH 6.2.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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