Cherl-Joon Lee;Wonseok Shin;Minsik Song;Seung-Shick Shin;Yujun Park;Kornsorn Srikulnath;Dong Hee Kim;Kyudong Han
Genomics & Informatics
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v.21
no.2
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pp.24.1-24.7
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2023
Assays of clinical diagnosis and species identification using molecular markers are performed according to a quantitative method in consideration of sensitivity, cost, speed, convenience, and specificity. However, typical polymerase chain reaction (PCR) assay is difficult to quantify and have various limitations. In addition, to perform quantitative analysis with the quantitative real-time PCR (qRT-PCR) equipment, a standard curve or normalization using reference genes is essential. Within the last a decade, previous studies have reported that the digital PCR (dPCR) assay, a third-generation PCR, can be applied in various fields by overcoming the shortcomings of typical PCR and qRT-PCR assays. We selected Stilla Naica System (Stilla Technologies), Droplet Digital PCR Technology (Bio-Rad), and Lab on an Array Digital Real-Time PCR analyzer system (OPTOLANE) for comparative analysis among the various droplet digital PCR platforms currently in use commercially. Our previous study discovered a molecular marker that can distinguish Hanwoo species (Korean native cattle) using Hanwoo-specific genomic structural variation. Here, we report the pros and cons of the operation of each dPCR platform from various perspectives using this species identification marker. In conclusion, we hope that this study will help researchers to select suitable dPCR platforms according to their purpose and resources.
In this study, qRT-PCR was employed to identify that miR-186 expression level in NSCLC tissues are highly associated with lymph node metastasis. In addition, through the application of western blotting, luciferase assay and qRT-PCR, it was found that miR-186 targeted 3'UTR of cdc42 mRNA and down-regulated cdc42 protein level in a post-transcriptional manner. Transwell assay indicated that cdc42 partially reversed the effect of miR-186 mimics. Besides, miR-186 was proved to regulate EMT by influencing biomarkers of this process and cell adhesion ability. Thus, miR-186 is a potential target for NSCLC therapy. miR-186 is proposed to be one of tumor-suppressors and may serve as a therapeutic target in NSCLC treatment.
Background: The evaluation of suitable reference genes as normalization controls is a prerequisite requirement for launching quantitative reverse transcription-PCR (RT-qPCR)-based expression study. In order to select the stable reference genes in abalone Haliotis discus hannai tissues (gill and hepatopancreas) under heavy metal exposure conditions (Cu, Zn, and Cd), 12 potential candidate housekeeping genes were subjected to expression stability based on the comprehensive ranking while integrating four different statistical algorithms (geNorm, NormFinder, BestKeeper, and ${\Delta}CT$ method). Results: Expression stability in the gill subset was determined as RPL7 > RPL8 > ACTB > RPL3 > PPIB > RPL7A > EF1A > RPL4 > GAPDH > RPL5 > UBE2 > B-TU. On the other hand, the ranking in the subset for hepatopancreas was RPL7 > RPL3 > RPL8 > ACTB > RPL4 > EF1A > RPL5 > RPL7A > B-TU > UBE2 > PPIB > GAPDH. The pairwise variation assessed by the geNorm program indicates that two reference genes could be sufficient for accurate normalization in both gill and hepatopancreas subsets. Overall, both gill and hepatopancreas subsets recommended ribosomal protein genes (particularly RPL7) as stable references, whereas traditional housekeepers such as ${\beta}-tubulin$ (B-TU) and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) genes were ranked as unstable genes. The validation of reference gene selection was confirmed with the quantitative assay of MT transcripts. Conclusions: The present analysis showed the importance of validating reference genes with multiple algorithmic approaches to select genes that are truly stable. Our results indicate that expression stability of a given reference gene could not always have consensus across tissue types. The data from this study could be a good guide for the future design of RT-qPCR studies with respect to metal regulation/detoxification and other related physiologies in this abalone species.
To evaluate appropriate reference genes for the normalization of quantitative reverse transcription PCR (RT-qPCR) data with embryonic and larval samples from Russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii, the expression stability of eight candidate housekeeping genes, including beta-actin (ACTB), elongation factor-1A (EF1A), glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH), histone 2A (H2A), ribosomal protein L5 (RPL5), ribosomal protein L7 (RPL7), succinate dehydrogenase (SDHA), and ubiquitin-conjugating enzyme E2 (UBE2A), were tested using embryonic samples from 12 developmental stages and larval samples from 11 ontogenic stages. Based on the stability rankings from three statistic software packages, geNorm, NormFinder, and BestKeeper, the expression stability of the embryonic subset was ranked as UBE2A>H2A>SDHA>GAPDH>RPL5>EF1A>ACTB>RPL7. On the other hand, the ranking in the larval subset was determined as UBE2A>GAPDH>SDHA>RPL5>RPL7>H2A>EF1A>AC TB. When the two subsets were combined, the overall ranking was UBE2A>SDHA>H2A>RPL5>GAPDH>EF1A>ACTB>RPL7. Taken together, our data suggest that UBE2A and SDHA are recommended as suitable references for developmental and ontogenic samples of this sturgeon species, whereas traditional housekeepers such as ACTB and GAPDH may not be suitable candidates.
Cytokines are important mediators of the immune response, and quantitating cytokine mRNA is a highly sensitive and attractive method for measuring cytokine production. The objective of the current study was to develop and validate a SYBR green quantitative real-time reverse transcriptase PCR (qRT-PCR) assay for measuring canine cytokine mRNA. The optimal annealing temperatures ($T_a$) of the designed primers were $62^{\circ}C$ for interleukin (IL)-$1{\beta}$, IL-6 and IL-10; $60^{\circ}C$ for glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) and tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$; and $58^{\circ}C$ for high mobility group box 1 (HMGB1). Primer efficiencies of all primers calculated for standard curve samples were between 97.1% and 102.6%. No evidence of secondary structure or primer-dimer formation was seen via melt-curve analysis or gel electrophoresis. The developed qRT-PCR assays are highly specific and sensitive and can be used to quantify gene expression levels of canine cytokines.
In this study, a new triplex real-time quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (tqRT-PCR) assay was developed for the rapid and differential detection of three feline viral pathogens including feline calicivirus (FCV), feline herpesvirus 1 (FHV-1), and influenza A virus (IAV) in a single reaction. The assay specifically amplified three targeted viral genes with a detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with intra- and inter-assay coefficients of variation of less than 1%. Based on the diagnostic results of the assay using 120 clinical samples obtained from cats with feline respiratory disease complex (FRDC)-suspected signs, the prevalence of FCV, FHV-1, or IAV was 43.3%, 22.5%, or 0%, respectively, indicating that the diagnostic sensitivity was comparable or superior to those of previously reported monoplex qRT-PCR/qPCR assays. The dual infection rate for FCV and FHV-1 was 8.3%. These results indicate that FCV and FHV-1 are widespread and that co-infection with FCV and FHV-1 frequently occur in the Korean cat population. The developed tqRT-PCR assay will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of these three bacterial pathogens, and the prevalence data for three feline viruses obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of FRDC in the current Korean cat population.
Potential utility of 14 candidate housekeeping genes as normalization reference for RT-qPCR analysis with developmental samples (fertilized eggs to late veliger larvae) in Pacific abalone Haliotis discus hannai was evaluated using four different statistical algorithms (geNorm, NormFinder, BestKeeper and comparative ΔCT method). Different algorithms identified different genes as the best candidates, and geometric mean-based final ranking from the most to the least stable expression was as follow: RPL5, RPL4, RPS18, RPL8, RPL7, UBE2, RPL7A, GAPDH, RPL36, PPIB, EF1A, ACTB and B-TU. The findings were further validated via relative quantification of metallothionein (MT) transcripts using the stable and unstable reference genes, and expression levels of MT were greatly influenced according to the choice of reference genes. In overall, our data suggest that RPL5 and RPS18, either singly or in combination, are appropriate for normalizing gene expression in developmental samples of this abalone species, whereas ACTB, B-TU and EF1A are less stable and not recommended. In addition, our findings propose that standard deviations in geometric ranking as well as geometric mean itself should also be taken into account for the final selection of reference gene(s). This study could be a useful basis to facilitate the generation of accurate and reliable RT-qPCR data with developmental samples in this abalone species.
Baek, Yun Hee;Cheon, Hyo-Soon;Park, Su-Jin;Lloren, Khristine Kaith S.;Ahn, Su Jeong;Jeong, Ju Hwan;Choi, Won-Suk;Yu, Min-Ah;Kwon, Hyeok-il;Kwon, Jin-Jung;Kim, Eun-Ha;Kim, Young-il;Antigua, Khristine Joy C.;Kim, Seok-Yong;Jeong, Hye Won;Choi, Young Ki;Song, Min-Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.11
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pp.1928-1936
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2018
Recently, human infections caused by severe fever with thrombocytopenia syndrome virus (SFTSV), which can lead to fatality, have dramatically increased in East Asia. With the unavailability of vaccines or antiviral drugs to prevent and/or treat SFTSV infection, early rapid diagnosis is critical for prevention and control of the disease. Here, we report the development of a simple, rapid and sensitive portable detection method for SFTSV infection applying reverse transcription-loop mediated isothermal amplification (RT-LAMP) combined with one-pot colorimetric visualization and electro-free reaction platform. This method utilizes a pocket warmer to facilitate diagnosis in a resource-limited setting. Specific primers were designed to target the highly-conserved region of L gene of SFTSV. The detection limit of the RT-LAMP assay was approximately $10^0$ viral genome copies from three different SFTSV strains. This assay exhibited comparable sensitivity to qRT-PCR and 10-fold more sensitivity than conventional RT-PCR, with a rapid detection time of 30 to 60 minutes. The RT-LAMP assay using SFTSV clinical specimens has demonstrated a similar detection rate to qRT-PCR and a higher detection rate compared to conventional RT-PCR. Moreover, there was no observed cross-reactive amplification of other human infectious viruses including Japanese Encephalitis Virus (JEV), Dengue, Enterovirus, Zika, Influenza and Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (MERS-CoV). This highly sensitive, electro- and equipment-free rapid colorimetric visualization method is feasible for resource-limited SFTSV field diagnosis.
Ji, Xiaolin;Wang, Qi;Gao, Yulong;Wang, Yongqiang;Qin, Liting;Qi, Xiaole;Gao, Honglei;Wang, Xiaomei
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.5
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pp.630-636
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2013
Recently, there has been a growing body of evidence showing that cellular microRNAs (miRNAs) are involved in virus-host interactions. Numerous studies have focused on analyses of the expression profiles of cellular miRNAs, but the expression patterns of Dicer, which is responsible for the generation of miRNAs, have only rarely been explored in Gallus gallus. We developed a duplex real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) assay for the relative quantification of the mRNAs of Dicer and ${\beta}$-actin in G. gallus. To apply this method, the expression of Dicer in avian cells after infection with avian leukosis virus subgroup J (ALV-J) was detected using our established duplex real-time RT-PCR. The duplex real-time RT-PCR assay is sufficiently sensitive, specific, accurate, reproducible, and cost-effective for the detection of Dicer in G. gallus. Furthermore, this study, for the first time, demonstrated that ALV-J can induce differential expression of Dicer mRNA in the ALV-J-infected cells.
Choi, Yeon Hee;Lee, Jun Seung;Yun, Sora;Baik, Hyung Suk
Journal of Life Science
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v.25
no.2
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pp.136-150
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2015
Pseudomonas syringae pathovar tabaci is a plant pathogenic bacterium that causes wildfire disease in tobacco plants. In P. syringae pv. tabaci, PsyI, a LuxI-type protein, acts as an AHL synthase, while primary and secondary sequence analysis of PsyR has revealed that it is a homolog of the LuxR-type transcriptional regulator that responds to AHL molecules. In this study, using phenotypic and genetic analyses in P. syringae pv. tabaci, we show the effect of PsyR protein as a quorum-sensing (QS) transcriptional regulator. Regulatory effects of PsyR on swarming motility and production of siderophores, tabtoxin, and N-acyl homoserine lactones were examined via phenotypic assays, and confirmed by quantitative real-time reverse transcription-polymerase chain reaction (qRT-PCR). Further qRT-PCR showed that PsyR regulates expression of these virulence genes in response to environmental signals. However, an upstream region of the gene was not bound with purified MBP-PsyR protein; rather, PsyR was only able to shift the upstream region of psyI. These results suggested that PsyR may be indirectly controlled via intermediate-regulatory systems and that auto-regulation by PsyR does not occur.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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