Da-Som Lee;Junghwa Lee;Seong-Jin Lee;Seungmo Lim;Jaeyong Chun
농업과학연구
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제49권4호
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pp.821-831
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2022
American plum line pattern virus (APLPV), a member of the genus Ilarvirus in the family Bromoviridae, is one of the plant quarantine pathogens in Korea. In this study, 15 candidate primer sets were designed and examined to develop a reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay for plant quarantine inspection of APLPV. Using APLPV-infected and healthy samples, the primer sets were assessed for APLPV detection. To confirm the occurrence of nonspecific reactions, six ilarviruses (Apple mosaic virus, Asparagus virus 2, Blueberry shock virus, Prune dwarf virus, Prunus necrotic ringspot virus, and Tobacco streak virus) and 10 target plants (Prunus mume, P. yedoensis, P. persica, P. armeniaca, P. dulcis, P. tomentosa, P. avium, P. glandulosa, P. salicina, and P. cerasifera) were examined. Finally, two primer sets were selected. These primer sets could generate the expected amplicons even with at least 1 ng of the total RNA template in concentration-dependent amplifications. In addition, a positive clone was developed for use as a positive control in the abovementioned RT-PCR assay.
The World Health Organization (WHO) has declared the coronavirus disease 2019 (COVID-19) as an international health emergency. Current diagnostic tests are based on the reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) method, which is the gold standard test that involves the amplification of viral RNA. However, the RT-qPCR assay has limitations in terms of sensitivity and quantification. In this study, we tested both qPCR and droplet digital PCR (ddPCR) to detect low amounts of viral RNA. The cycle threshold (CT) of the viral RNA by RT-PCR significantly varied according to the sequences of the primer and probe sets with in vitro transcript (IVT) RNA or viral RNA as templates, whereas the copy number of the viral RNA by ddPCR was effectively quantified with IVT RNA, cultured viral RNA, and RNA from clinical samples. Furthermore, the clinical samples were assayed via both methods, and the sensitivity of the ddPCR was determined to be equal to or more than that of the RT-qPCR. However, the ddPCR assay is more suitable for determining the copy number of reference materials. These findings suggest that the qPCR assay with the ddPCR defined reference materials could be used as a highly sensitive and compatible diagnostic method for viral RNA detection.
A newly designed Cytophaga-Flavobacteria-specific 16S rRNA gene primer pair was employed to investigate the CF community structure in the Bering Sea, revealing a previously unknown and unexpected high CF diversity in this high latitude cold sea. In total, 56 clones were sequenced and 50 unique CF 16 rRNA gene fragments were obtained, clustering into 16 CF subgroups, including nine cosmopolitan subgroups, five psychrophilic subgroups, and two putatively autochthonous subgroups. The majority of sequences (82%) were closely related to uncultured CF species and could not be classified into known CF genera, indicating the presence of a large number of so-far uncultivated CF species in the Bering Sea.
We have examined the 16S-23S rRNA intergenic spacer region (ISR) of Vibrio vulnificus KCTC 2959. ISRs were amplified by primers complementary to conserved regions of 16S and 23S rRNA genes. ISR amplicons were cloned and sequenced. Analysis of the ISR sequences showed that V. vulnificus KCTC 2959 contains five types of polymorphic ISRs. Size of ISRs ranged from 424 to 741 bp in length and the number of tRNA genes ranged from one to four. The ISRs were designated as ISR-E $(tRNA^{Glu}),\;ISR-IA\;(tRNA^{Ile}-tRNA^{Ala})$, ISR-EKV $(tRNA^{Glu}-tRNA^{Lys}-tRNA^{Val})$, ISR-IAV $(tRNA^{Ile}-tRNA^{Ala}-tRNA^{val})$ and ISR-EKAV $(tRNA^{Glu}-tRNA^{Lys}-tRNA^{Ala}-tRNA^{Val})$ based on their tRNA genes. Multiple alignment of representative sequences from different Vibrio species revealed several domains of high sequence variability. We used the sequences of variable domains to design species-specific primer for detection PCR. Specificity of the primers was examined using genomic DNA prepared from 18 different Vibrio species. The results showed that the PCR using primers designed in this study can be used to detect V. vulnificus from other Vibrio species.
PSTVd 를 접종시킨 감자의 Superior 품종으로부터 PSTVd RNA를 분리하여 역전사효소와 PSTVd genome 중 356 uncleotides를 증폭할 수 있는 PSTVd 특이적 primer 쌍을 사용하여 RT-PCR를 수행한 결과 356 nuclcotides의 DNA 절편이 증폭되었고 이 절편을 sequencing인 결과 PSTVd 의 유전자임을 확인하였다. 감염된 잎과 괴경에수 모두 RT-PCR 기법을 이용한 PSTVd 의 검정이 가능하였고 특히 RT 반응시 downstream primer만을 이용할 때보다 downstream과 upstream primer를 동시에 사용할 때가 PSTVd 의 검정에 더 효과적이었다.
Kim, Eunjin;Park, Mi-Jeong;Jang, Yeongseon;Ryoo, Rhim;Ka, Kang-Hyeon
한국균학회지
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제49권3호
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pp.285-294
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2021
In general, mycoviruses remain latent and rarely cause visible symptoms in fungal hosts; however, some viral infections have demonstrated abnormal mycelial growth and fruiting body development in commercial macrofungi, including Lentinula edodes. Compared to other cultivated mushrooms, L. edodes is more vulnerable to viral infections as it is still widely cultivated under near-natural conditions. In this study, we investigated whether Korean wild strains of L. edodes were infected by RNA mycoviruses that have previously been reported in other parts of the world (LeSV, LePV1, LeV-HKB, LeNSRV1, and LeNSRV2). Using specific primer sets that target the RNA-dependent RNA polymerase genes of each of the RNA mycovirus, reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) was used to detect viral infection. Viral infection was detected in about 90% of the 112 wild strains that were collected in Korea between 1983 and 2020. Moreover, multiple infections with RNA mycoviruses were detected in strains that had normal fruiting bodies. This work contributes to our understanding of the distribution of RNA mycoviruses in Korea and the impact of multiple viral infections in a single strain of L. edodes.
본 연구는 mt DNA 12S rRNA 유전자의 PCR-RFLP 분석기법을 이용하여 다양한 식육자원 및 각종 가공 육제품의 원료육에 대한 정확하고 재현성 높은 축종 및 육종 감별기술을 개발하기 위하여 수행되었다. 국내에서 유통되고 있는 9종류 축종(소, 돼지, 양, 염소, 말, 사슴, 닭, 오리 및 칠면조)의 육류로부터 12S rRNA유전자의 특정 염기서열을 포함하는 primer를 설계 제작하여 PCR-RFLP 분석을 실시하였다. 각 공시축의 근육조직으로부터 genomic DNA를 추출하고 PCR 증폭 반응을 수행한 후 얻어진 PCR 증폭산물(약 455 bp)을 Tsp5091와 MboI 제한효소로 각각 절단한 결과 Tsp5091 제한효소는 포유류 6종간에서 그리고 MboI 제한효소는 가금류 3종간에서 명확한 차이를 보이는 종 특이적인 PCR-RFLP profile을 검출하였다. 따라서 본 연구에서 개발한 12S rRNA 유전자의 종 특이적 DNA 분자표지는 각종 원료육 및 가공 육제품의 육종 및 축종 판별에 매우 유용한 동물 종 감별 DNA marker로 이용될 수 있을 것이다.
Murine mycoplasmosis, caused by Mycoplasma (M.) pulmonis, is a prominent disease in rodent animals. The aim of this study was to develop a sensitive and specific PCR assay to detect M. pulmonis in animals and to assess the suitability of this assay for the detection of mycoplasmal infection in rats experimentally infected with M. pulmonis. A new PCR assay using the M. pulmonis-specific primer pairs MPul-F and MPul-R was developed. The primers and probe for the assay were designed from regions in the 16S rRNA gene that are unique to M. pulmonis. The novel PCR assay was very specific and sensitive for M. pulmonis, detecting the equivalent of 5 pg of target template DNA. It detected only M. pulmonis and no other Mycoplasma species or other bacterial species. The newly developed PCR assay also effectively detected M. pulmonis infection in rats. These results suggest that this PCR assay using M. pulmonis-specific primer pairs of MPul-F and MPul-R will be useful and effective for monitoring M. pulmonis infection in animals.
Phytoplasma was identified from leaf lettuce (Lactuca sativa) cultivated in commercial green-house in Korea. Diseased leaf lettuce revealed proliferation of shoots, and yellowing and shrinking of leaves (lettuce proliferation-K). Polymerase chain reaction (PCR) with universal primer pair P1/P6, and aster yellows (AY) specific primer pair R16F1/R1 amplified 1.5kb and 1.1kb length of DNA fragments, respectively. Nucleotide sequences of 16S rRNA gene were determined (Gen Bank accession no EF489024). Phylogenetic analysis of 16S rDNA showed the closest relationship with AY phytoplasma (GenBank accession no. AY389822 and AY389826), indicating that lettuce proliferation-K is a member of AY. Phytoplasma bodies were detected in phloem sieve tubes of diseased lettuce by transmission electron microscopy. The structures had round or pleomorphic shapes with a diameter of 130-300nm. Phylogenetic analysis of 16S rRNA gene, microscopic observation of phytoplasma bodies and symptomatology indicated that lettuce proliferation-K is caused by phytoplasma in the AY group. This is the first report of phytoplasma disease in lettuce in Korea.
이 연구는 약용버섯 번데기 동충하초로부터 특이적 자실체 형성 유전자를 선별하기 위하여 수행하였다. cDNA는 버섯의 분화 4단계 균사체, 원기, 미성숙 자실체, 성숙한 자실체로부터 분리한 각각의 total RNA를 이용하여 합성하였다. 특이적으로 발현된 유전자의 선별은 cDNA와 랜덤한 primer set을 이용한 DD-PCR에 의해 수행되었고, pGEM 클로닝 벡터를 이용하여 6개의 partial 유전자 서열을 확인하였다. 6개의 DD-PCR product는 보고된 유전자와 유사도를 확인하기 위해 NCBI BLAST search를 사용하여 GenBank에서 비교하였고, 6개의 유전자는 보고되지 않은 유전자임을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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