Few studies have evaluated the apoptosis-inducing efficacy of NaF on cancer cells in vitro but there has been no previous investigation of the apoptotic effects of NaF on human oral squamous cell carcinoma cells. In this study, we have investigated the mechanisms underlying the apoptotic response to NaF treatment in the YD9 human squamous cell carcinoma cell line. The viability of YD9 cells and their growth inhibition were assessed by MTT and clonogenic assays, respectively. Hoechst staining, DNA electrophoresis and TUNEL staining were conducted to detect apoptosis. YD9 cells were treated with NaF, and western blotting, immunocytochemistry, confocal microscopy, FACScan flow cytometry, and MMP and proteasome activity assays were performed sequentially. The NaF treatment resulted in a time- and dose-dependent decrease in YD9 cell viability, a dose-dependent inhibition of cell growth, and the induction of apoptotic cell death. The apoptotic response of these cells was manifested by nuclear condensation, DNA fragmentation, the reduction of MMP and proteasome activity, a decreased DNA content, the release of cytochrome c into the cytosol, the translocation of AIF and DFF40 (CAD) into the nucleus, a significant shift of the Bax/Bcl-2 ratio, and the activation of caspase-9, caspase-3, PARP, Lamin A/C and DFF45 (ICAD). Furthermore, NaF treatment resulted in the downregulation of G1 cell cyclerelated proteins, and upregulation of p53 and the Cdk inhibitor $p27^{KIP1}$. Taken collectively, our present findings demonstrate that NaF strongly inhibits YD9 cell proliferation by modulating the expression of G1 cell cycle-related proteins and inducing apoptosis via mitochondrial and caspase pathways.
Resveratrol has been examined in several model systems for potential effects against cancer. Adenosine monophosphate-activated protein kinase (AMPK) is reported to suppress proliferation in most eukaryocyte cells. Whether resveratrol via AMPK inhibits proliferation of oesophageal adenocarcinoma cells (OAC) is unknown. The aim of this study was to determine the roles of AMPK in the protective effects of resveratrol in OAC proliferation and to elucidate the underlying mechanisms. Treatment of cultured OAC derived from human subjects or cell lines with resveratrol resulted in decreased cell proliferation. Further, inhibition of AMPK by pharmacological reagent or genetical approach abolished resveratrol-suppressed OAC proliferation, reduced the level of $p27^{Kip1}$, a cyclin-dependent kinase inhibitor, and increased the levels of S-phase kinase-associated protein 2 (Skp2) of $p27^{Kip1}$-E3 ubiquitin ligase and 26S proteasome activity reduced by resveratrol. Furthermore, gene silencing of $p27^{Kip1}$ reversed resveratrol-suppressed OAC proliferation. In conclusion, these findings indicate that resveratrol inhibits Skp2-mediated ubiquitylation and 26S proteasome-dependent degradation of $p27^{Kip1}$ via AMPK activation to suppress OAC proliferation.
The 90-kDa heat shock protein (HSP90) normally functions as a molecular chaperone participating in folding and stabilizing newly synthesized proteins, and refolding denatured proteins. The HSP90 inhibitor geldanamycin (GA) occupies the ATP/ADP binding pocket of HSP90 so inhibits its chaperone activity and causes subsequent degradation of HSP90 client proteins by proteasomes. Here we show that GA reduces the level of endogenous c-Jun in human embryonic kidney 293 (HEK293) cells in a time and dose dependent manner, and that this decrease can be reversed by transfection of HSP90 plasmids. Transfection of HSP90 plasmids in the absence of GA increases the level of endogenous c-Jun protein, but has no obvious affect on c-Jun mRNA levels. We also showed that HSP90 prolongs the half-life of c-Jun by stabilizing the protein; the proteasome inhibitor N-benzoyloxycarbonyl (Z)-Leu-Leu-leucinal (MG132) blocks the degradation of c-Jun promoted by GA. Transfection of HSP90 plasmids did not obviously alter phosphorylation of c-Jun, and a Jun-2 luciferase activity assay indicated that over-expression of HSP90 elevated the total protein activity of c-Jun in HEK293 cells. All our evidence indicates that HSP90 stabilizes c-Jun protein, and so increases the total activity of c-Jun in HEK293 cells.
We previously demonstrated that resveratrol and clofarabine elicited a marked cytotoxicity on malignant mesothelioma (MM) MSTO-211H cells but not on the corresponding normal mesothelial MeT-5A cells. Little is known of the possible molecules that could be used to predict preferential chemosensitivity on MSTO-211H cells. Resveratrol and clofarabine induced downregulation of Mcl-1 protein level in MSTO-211H cells. Treatment of cells with cycloheximide in the presence of proteasome inhibitor MG132 suggested that Mcl-1 protein levels were regulated at the post-translational step. The siRNA-based knockdown of Mcl-1 in MSTO-211H cells triggered more growth-inhibiting and apoptosis-inducing effects with the resultant cleavages of procaspase-3 and its substrate PARP, increased caspase-3/7 activity, and increased percentage of apoptotic propensities. However, the majority of the observed changes were not shown in MeT-5A cells. Collectively, these studies indicate that the preferential activation of caspase cascade in malignant cells might have important applications as a therapeutic target for MM.
Eo, Hyun Ji;Jeong, Jin Boo;Koo, Jin Suk;Jeong, Hyung Jin
Korean Journal of Plant Resources
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v.30
no.3
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pp.265-271
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2017
In this study, we elucidated the molecular mechanism of silymarin by which silymarin may inhibits cell proliferation in human colorectal cancer cells in order to search the new potential anti-cancer target associated with the cell growth arrest. Silymarin reduced the level of c-Myc protein but not mRNA level indicating that silymarin-mediated downregulation of c-Myc may result from the proteasomal degradation. In the confirmation of silymarin-mediated c-Myc degradation, MG132 as a proteasome inhibitor attenuated c-Myc degradation by silymarin. In addition, silymarin phosphorylated the threonine-58 (Thr58) of c-Myc and the point mutation of Thr58 to alanine blocked its degradation by silymarin, which indicates that Thr58 phosphorylation may be an important modification for silymarin-mediated c-Myc degradation. We observed that the inhibition of ERK1/2, p38 and $GSK3{\beta}$ blocked the Thr58 phosphorylation and subsequent c-Myc degradation by silymarin. Finally, the point mutation of Thr58 to alanine attenuated silymarin-mediated inhibition of the cell growth. The results suggest that silymarin induces the cell growth arrest through c-Myc proteasomal degradation via ERK1/2, p38 and $GSK3{\beta}-dependent$ Thr58 phosphorylation.
Cyclin D is a member of the cyclin protein family, which plays a critical role as a core member of the mammalian cell cycle machinery. D-type cyclins (D1, D2, and D3) bind to and activate the cyclin-dependent kinases 4 and 6, which can then phosphorylate the retinoblastoma tumor suppressor gene products. This phosphorylation in turn leads to release or derepression of E2F transcription factors that promote progression from the G1 to S phase of the cell cycle. Among the D-type cyclins, cyclin D3 encoded by the CCND3 gene is one of the least well studied. In the present study, we have investigated the biochemistry of the proteolytic mechanism that leads to loss of cyclin D3 protein. Treatment of human prostate carcinoma PC-3-M cells with lovastatin and actinomycin D resulted in a loss of cyclin D3 protein that was completely reversible by the peptide aldehyde calpain inhibitor, LLnL. Additionally, using inhibitors for various proteolytic systems, we show that degradation of cyclin D3 protein involves the $Ca^{2+}$-activated neutral protease calpain. Moreover, the half-life of cyclin D3 protein half-life increased by at least 10-fold in PC-3M cells in response to the calpain inhibitor. We have also demonstrated that the transient expression of the calpain inhibitor calpastatin increased cyclin D3 protein in serum-starved NIH 3T3 cells. These data suggested that the function of cyclin D3 is regulated by $Ca^{2+}$-dependent protease calpain.
Aminoacyl tRNA synthetase complex interacting multifunctional protein 2 (AIMP2) is a scaffolding protein required for the assembly of multi-tRNA synthetase, and it can exert pro-apoptotic activity in response to DNA damage. In the presence of DNA damage, AIMP2 binds to mouse double minute 2 homolog (MDM2) to protect p53 from MDM2 attack. TGF-β signaling results in the nuclear translocation of AIMP2, whereby AIMP2 interacts with FUSE-binding protein, and, thus, suppresses c-myc. TNF receptor-associated factor 2 (TRAF2) is an important mediator between TNF-receptors 1 and 2 which are involved in the signaling of c-Jun N-terminal kinase (JNK), nuclear factor κB (NF-κB), and p38 mitogen-activated protein kinases (MAPKs). TRAF2 is required for the activations of JNK and NF-κB via TNF-α and the mediation of anti-apoptosis signaling. AIMP2 can also enhance pro-apoptosis in the TNF-α signaling. During this signaling, AIMP2 assists the association of E3 ubiquitin ligase, the cellular inhibitor of apoptosis protein 1 (c-IAP1) which is well known and responsible for the degradation of TRAF2. The formation of a complex among AIMP2, TRAF2, and c-IAP1 results in proteasome-mediated TRAF2 degradation. AIMP2 can induce apoptosis via downregulation of TRAF2 to interact directly in TNF-α signaling. This review provides new insight into the molecular mechanism responsible for AIMP2 and TRAF2 complex formation and treatments for TNFα-associated diseases.
The Bis protein is known to be involved in a variety of cellular processes including apoptosis, migration, autophagy as well as protein quality control. Bis expression is induced in response to a number of types of stress, such as heat shock or a proteasome inhibitor via the activation of heat shock factor (HSF)1. We report herein that Bis expression is increased at the transcriptional level in HK-2 kidney tubular cells and A172 glioma cells by exposure to oxidative stress such as $H_2O_2$ treatment and oxygen-glucose deprivation, respectively. The pretreatment of HK-2 cells with N-acetyl cysteine, suppressed Bis induction. Furthermore, HSF1 silencing attenuated Bis expression that was induced by $H_2O_2$, accompanied by increase in reactive oxygen species (ROS) accumulation. Using a series of deletion constructs of the bis gene promoter, two putative heat shock elements located in the proximal region of the bis gene promoter were found to be essential for the constitutive expression is as well as the inducible expression of Bis. Taken together, our results indicate that oxidative stress induces Bis expression at the transcriptional levels via activation of HSF1, which might confer an expansion of antioxidant capacity against pro-oxidant milieu. However, the possible role of the other cis-element in the induction of Bis remains to be determined.
Baek, Ji I;Seol, Dong-Won;Lee, Ah-Reum;Lee, Woo Sik;Yoon, Sook-Young;Lee, Dong Ryul
Molecules and Cells
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v.40
no.11
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pp.871-879
/
2017
Levels of maturation-promoting factor (MPF) in oocytes decline after vitrification, and this decline has been suggested as one of the main causes of low developmental competence resulting from cryoinjury. Here, we evaluated MPF activity in vitrified mouse eggs following treatment with caffeine, a known stimulator of MPF activity, and/or the proteasome inhibitor MG132. Collected MII oocytes were vitrified and divided into four groups: untreated, 10 mM caffeine (CA), $10{\mu}M$ MG132 (MG), and 10 mM caffeine + $10{\mu}M$ MG132 (CA+MG). After warming, the MPF activity of oocytes and their blastocyst formation and implantation rates in the CA, MG, and CA+MG groups were much higher than those in the untreated group. However, the cell numbers in blastocysts did not differ among groups. Analysis of the effectiveness of caffeine and MG132 for improving somatic cell nuclear transfer (SCNT) technology using cryopreserved eggs showed that supplementation did not improve the blastocyst formation rate of cloned mouse eggs. These results suggest that maintaining MPF activity after cryopreservation may have a positive effect on further embryonic development, but is unable to fully overcome cryoinjury. Thus, intrinsic factors governing the developmental potential that diminish during oocyte cryopreservation should be explored.
The Wnt/${\beta}$-catenin pathway plays important roles in a variety of biological processes, such as cell proliferation, differentiation, and organ development. Here, we used a cell-based reporter assay to identify bryostatin-1, a natural macrocyclic lactone, as an inhibitor of the Wnt/${\beta}$-catenin pathway. Bryostatin-1 suppressed ${\beta}$-catenin response transcription (CRT), which was activated by a Wnt3a-conditioned medium (Wnt3a-CM), through a decrease in the intracellular ${\beta}$-catenin protein levels, without affecting its mRNA level. In addition, pharmacological inhibition of proteasome abrogated bryostatin-1-mediated down-regulation of the ${\beta}$-catenin protein level. Our findings suggest that bryostatin-1 attenuates the Wnt/${\beta}$-catenin pathway through the promotion of proteasomal degradation of ${\beta}$-catenin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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