Insect plasma protein is abundant in the hemolymph of holometabolous insect larvae and is used as a source of amino acids and energy for construction of adult structures during metamorphosis. In order to understand the mechanism of decomposition of larval plasma proteins by hemocyte protease, we tried to purify a cysteine protease from the hemocyte lysate by using Carbobenzoxy-L-Phenylalanyl-L-Arginine-4-Methyl-Coumaryl-7-Amide (Z-Phe-Arg-MCA) as substrate and to identify plasma proteins that are selectively susceptible to the purified protease. Here, we describe the purification and characterization of a cysteine protease that specifically hydrolyzes the plasma protein of the coleopteran insect, Tenebrio molitor, larvae. The molecular mass of this enzyme was 25 kDa, as determined by SDS-PAGE under reducing conditions. The amino acids sequence of its $NH_{2}-terminus$ was determined to be Leu-Pro-Gly-Gln-Ile-Asp-Trp-Arg-Asp-Lys-Gly. This sequence contained Pro, Asp, and Arg residues, conserved in many papain superfamily enzymes. The specific cysteine protease inhibitors, such as E-64 and leupetin, inhibited its hydrolytic activity. One plasma protein with a molecular mass of 48 kDa was selectively hydrolyzed within 3 h when the purified enzyme and plasma proteins were incubated in vitro. However, the 48 kDa protein was not hydrolyzed by the purified 25 kDa protease in the presence of E-64. Western blotting analysis at various developmental stages showed that the purified enzyme was detected at larvae, pupae, and adult stages, but not the embryo stage.
As we approach the completion of the first 25 years of the human immunodeficiency virus(HIV) epidemic, there have been dramatic improvements in the care of patients with HIV infection. These have prolonged life and decreased morbidity. There are twenty currently available antiretrovirals approved in the United States for the treatment of this infection. The medications, including their pharmacokinetic properties, side effects, and dosing are reviewed. In addition, the current approach to the use of these medicines is discussed. We have included a section addressing common comorbid conditions including hepatitis B and C along with tuberculosis.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1998.11a
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pp.127-127
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1998
Specific inhibitors of a calcium activated neutral protease calpain could be used for the treatment of neurodegenerative diseases, cataract and muscular dystrophy diseases because of their therapeutic effects. In the course of screening for potential calpain inhibitors from microorganisms, a new analogue of chymostatins named calmostinol was isolated from the culture filtrate of an actinomycete. The MW was determined to be 596 [(M + H)$\^$+/] by FAB-MS in glycerol matrix. The structure was elucidated to be N-[((S)-1-carboxy-2-phenylethyl)-carbamoyl]-${\alpha}$-[2- iminohexahydro-4(S)-pyrimidyl]-L-glycyl- L-valyl-phenylalaninol, by the spectroscopic methods such as NMR and MS fragmentation studies. Calmostinol exhibited strong activity against calpain while not against a Ca$\^$2+/ -independent cysteine protease papain.
KIM DAE WI;KANG SUNG GYUN;KIM IN SEOP;LEE BYONG KYU;RHO YONG TAIK;LEE KYE JOON
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.5-14
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2006
Streptomycetes are Gram-positive microorganisms producing secondary metabolites through unique physiological differentiation [4]. The microbes show unusual morphological differentiation to form substrate mycelia, aerial mycelia, and arthrospores on solid medium [19]. Substrate mycelium growth is sustaining with sufficient nutrients in the culture medium. The concentration of a specific individual substrate in the culture environment is the most important extracellular factor allowing vegetative mycelia growth, where extracellular hydrolytic enzymes participate in the utilization of waterinsoluble substrates. However, with starvation of nutrients in the culture medium, the vegetative mycelia differentiate to aerial mycelia and spores. It has been considered that shiftdown of essential nutrients for mycelia growth is the most important factor triggering morphological and physiological differentiation in Streptomyces spp. Since proteineous macromolecule compounds are the major cellular components, these are faced to endogenously metabolize following a severe depletion of nitrogen source in culture nutrients (Fig. 1). Various proteases were identified of which production was specifically related with the phase of mycelium growth and also morphological differentiation. The involvement of proteases and protease inhibitor is reviewed as a factor explaining the mycelium differentiation in Streptomyces spp.
The CDP/Cux transcription factor was previously shown to be proteolytically processed at the G1/S transition. In view of characterizing and eventually identifying the protease responsible for CDP/Cux processing, we have established an in vitro proteolytic processing assay. CDP/Cux recombinant proteins expressed in mammalian or bacterial cells were efficiently processed in vitro using as a source of protease either whole cell extracts, the nuclear or the cytoplasmic fraction. Processing was found to take place optimally at a lower pH, to be insensitive to variations in salt concentration, and to be inhibited by the protease inhibitors MG132 and E64D. Interestingly, the bacterially-produced substrate was more efficiently processed than the substrate purified from mammalian cells. Moreover, processing in vitro was more efficient when CDP/Cux substrates were purified from populations of cells enriched in the S phase than in the G1 phase of the cell cycle. Altogether, these results suggest that post-translational modifications of CDP/Cux in mammalian cells inhibits processing and contributes to the cell cycle-dependent regulation of processing. The in vitro processing assay described in this study will provide a useful tool for the purification and identification of the protease responsible for the processing of CDP/Cux.
A-factor I a microbial hormone that can positively control cell differentiation leading to spore formation and secondary metabolite formation in Streptomyces griseus. to identify a protease that is deeply involved in the morphological and physiological differentiation of Streptomyces, the proteases produced by Streptomyces griseus IFO 13350 and its A-factor deficient mutant strain, Streptomyces griseus HH1, as well as Streptomyces griseus HH1 transformed with the afsA gene were sturdied. In general Streptomyces griseus showed a higher degree of cell growth and protease activity in proportion to its ability to produce a higher amount of A-factor. In particular, the specific activity of the trypsin of Streptomyces griseus IFO 13350 was greatly enhanced more than twice compared with that of Streptomyces griseus HH1 in the later stage of growth. The specific activity of the metalloprotease of Streptomyces griseus HH1 was greatly enhanced more than twice compared with that of Streptomyces griseus IFO 13350, and this observation was reversed in the presence of thiostreptione, However, Streptomyces griseus HH1 transformed with the afsA gene showed a significantly decreased level of trypsin and metalloprotease activity compared with that of the HH1 strain. There was no significant difference between Streptomyces griseus IFO 13350 and HH1 strain in their chymotrypsin and thiol protease activity, yet the level of leu-amionpeptidase activity was 2 times higher in Streptomyces griseus HH1 than in strain IFO 13350 . Streptomyces griseus HH1 harboring afsA showed a similar level of enzyme activity , however, all the three protease activities sharply increased and the thiol protease activity was critically increased at the end of the fermentation. When a serine protease inhibitor, pefabloc SC, and metalloprotease inhibitor, EDTA, were applied to strain IFO 13350 to examine the in vivo effects of the protease inhibitors on the morpholofical differentiation, the formation of aerial meycelium and spores was delayed by two or three days.
Objective: Two serine protease inhibitors, peptidase inhibitor 3 (PI3) and secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI), play important roles in protease inhibition and antimicrobial activity, but their expression, regulation, and function at the maternal-fetal interface in pigs are not fully understood. Therefore, we determined the expression and regulation of PI3 and SLPI in the endometrium throughout the estrous cycle and at the maternal-fetal interface in pigs. Methods: Endometrial tissues during the estrous cycle and pregnancy, conceptus tissues during early pregnancy, and chorioallantoic tissues during mid to late pregnancy were obtained, and the expression of PI3 and SLPI was analyzed. The effects of the steroid hormones estradiol-17β (E2) and progesterone (P4) on the expression of PI3 and SLPI were determined in endometrial explant cultures. Results: PI3 and SLPI were expressed in the endometrium during the estrous cycle and pregnancy, with higher levels during mid to late pregnancy than during the estrous cycle and early pregnancy. Early-stage conceptuses and chorioallantoic tissues during mid to late pregnancy also expressed PI3 and SLPI. PI3 protein and SLPI mRNA were primarily localized to endometrial epithelia. In endometrial explant cultures, the expression of PI3 was induced by increasing doses of P4, and the expression of SLPI was induced by increasing doses of E2 and P4. Conclusion: These results suggest that the PI3 and SLPI expressed in the endometrium and conceptus tissues play an important role in antimicrobial activity for fetal protection against potential pathogens and in blocking protease actions to allow epitheliochorial placenta formation.
${\beta}$-catenin, which plays a critical role in both the cytoskeleton and in transcriptional regulation in variousadherent cell types, undergoes degradation during adherent cell apoptosis. Although ${\beta}$-catenin has been reported to be present in Jurkat T-acute lymphoblastic leukemia cells, the regulation of ${\beta}$-catenin in hematologic malignancies have not been examined. The data presented here demonstrate that treatment of the T cell leukemia Jurkat iwht the apoptosis inducer anti-Fas induced proteolytic cleavage of ${\beta}$-catenin. ${\beta}$-catenin was cleaved at both the N- and C-terminus after anti-Fas treatment. Cleavage of intact ${\beta}$-catenin was completely inhibited by caspase selective protease inhibitors. These data demonstrate that ${\beta}$ -catenin proteolysis is triggered by the cross-linking of the Fas receptor on Jurkat cells and subsequent activation of caspase protease. There was a clear accumulatio of the large proteolytic fragment in Jurkat cells treated with lactacystin of ALLM. These are potent inhibitors of proteasome and calpain. these results suggest that both the proteasome and clapain may recognize the large ${\beta}$-catenin fragment as a substrate fot further degradation and that these pathewasy may act downstream of scapase in response to Fas receptor activation. Therefore, we suggest that ${\beta}$-catenin may play a role in promoting Jurkat survival.
Amyloid-${\beta}$-peptide ($A{\beta}$) is important in the pathogenesis of Alzheimer's disease (AD). Calpain ($Ca^{2+}$-dependent protease) and caspase-8 (the initiating caspase for the extrinsic, receptor-mediated apoptosis pathway) have been implicated in $AD/A{\beta}$ toxicity. We found that $A{\beta}$ promoted degradation of calpastatin (the specific endogenous calpain inhibitor); calpastatin degradation was prevented by inhibitors of either calpain or caspase-8. The results implied a cross-talk between the two proteases and suggested that one protease was responsible for the activity of the other one. In neuron-like differentiated PC12 cells, calpain promotes active caspase-8 formation from procaspase-8 via the $A{\beta}$ and CD95 pathways, along with degradation of the procaspase-8 processing inhibitor caspase-8 (FLICE)-like inhibitory protein, short isoform (FLIPS). Inhibition of calpain (by pharmacological inhibitors and by overexpression of calpastatin) prevents the cleavage of procaspase-8 to mature, active caspase-8, and inhibits FLIPS degradation in the $A{\beta}$-treated and CD95-triggered cells. Increased cellular Ca2+ per se results in calpain activation but does not lead to caspase-8 activation or FLIPS degradation. The results suggest that procaspase-8 and FLIPS association with cell membrane receptor complexes is required for calpain-induced caspase-8 activation. The results presented here add to the understanding of the roles of calpain, caspase- 8, and CD95 pathway in $AD/A{\beta}$ toxicity. Calpain-promoted activation of caspase-8 may have implications for other types of CD95-induced cell damage, and for nonapoptotic functions of caspase-8. Inhibition of calpain may be useful for modulating certain caspase-8-dependent processes.
Cho, Jae Eun;Kim, Jun Tae;Jung, Seo Hee;Kang, Nam Sook
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.34
no.4
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pp.1212-1220
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2013
The human coagulation factor XI (FXI) is a serine protease that plays a significant role in blocking of the blood coagulation cascade as an attractive antithrombotic target. Selective inhibition of FXIa (an activated form of factor XI) disrupts the intrinsic coagulation pathway without affecting the extrinsic pathway or other coagulation factors such as FXa, FIIa, FVIIa. Furthermore, targeting the FXIa might significantly reduce the bleeding side effects and improve the safety index. This paper reports on a docking-based three dimensional quantitative structure activity relationship (3D-QSAR) study of the potent FXIa inhibitors, the chloro-phenyl tetrazole scaffold series, using comparative molecular field analysis (CoMFA) and comparative molecular similarity analysis (CoMSIA) methods. Due to the characterization of FXIa binding site, we classified the alignment of the known FXIa inhibitors into two groups according to the docked pose: S1-S2-S4 and S1-S1'-S2'. Consequently, highly predictive 3D-QSAR models of our result will provide insight for designing new potent FXIa inhibitors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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