TPA is known to cooperate with an activated Ras oncogene in the transformation of rodent fibroblasts, but the biochemical mechanisms responsible for this effect have not been established. In the present study we used c-fos promoter-luciferase constructs as reporters, in transient transfection assays, in NIH3T3 cells to assess the mechanism of this cooperation. We found a marked synergistic interaction between TPA and a transfected v-Ha-ras oncogene in the activation of c-fos promoter and SRE. SRE has binding sites for TCF and SRF. A dominant-negative Ras (ras-N17) inhibited the TPA-Ras synergy by blocking the PKC-MAPK-TCF pathway. Dominant-negative RhoA and Rac1 (but not Cdc42Hs) inhibited the TPA-Ras synergy by blocking the Ras-Rho-SRF signaling pathway. Constitutively active $PKC{\alpha}$ and $PKC{\varepsilon}$ showed synergy with v-Ras. These results suggest that the activation of two distinct pathways such as Ras-Raf-ERK-TCF pathway and Rho-SRF pathway are responsible for the induction of c-fos by TPA and Ras in mitogenic signaling pathways.
Kim, Youn-Uck;Kim, Youn-Hwoan;An, Duek -Jun;Kwon, Hyuk-Chu
Journal of Microbiology
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v.39
no.4
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pp.314-320
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2001
Macrophages stimulated by lipopolysaccharide(LPS) from gram negative bacteria undergo activation of a group of immediate early genes including Rantes. The mouse Rantes gene promoter region contains an LPS rsponsive element(LPE) We detected 3 specific bands termed B1, B2 and 3 formed by the interaction of the LPE and proteins found in LPS-stimulated RAW 367.7 cells. An additional band B4 was determined to be an Ap-1 binding protein. The B1 band appears within 1 hour of LPS nuclear extracts from LPS-stimulation, and this protein kinase enhances B1 and formation. The B1 band can be converted to band B2/B3 by adding specific heparin column fraction purified Ser/Thr specific protein phosphatases PP-1 and PP-2A can stimulate the same conversion to about the same extent. Thus, the formation of the LRE sequence binding complex appears to be regulated by Ser/Thr protein kinase and one or more Ser/Thr specific phosphatases. At least four proteins are involved in the trgulation of the LRE-dependent Rants experssion: two binding factors that bind directly to the target sequences. and two factors that control their binding. The future purification and characterization of these binding pro-teins will reveal in detail the mechanism of Rantes gene activation after LPS stimulation.
Heat shock proteins (HSPs) serve as molecular chaperones and play a role in cell protection from damage in response to stress stimuli. The aim of this article is to investigate whether HSP22 affects IL-8 expression in vascular smooth muscle cells (VSMCs), and which cellular factors are involved in the HSP-mediated IL-8 induction in that cell type in terms of mitogen activated protein kinase (MAPK) and transcription element. Exposure of aortic smooth muscle cells (AoSMCs) to HSP22 not only enhanced IL-8 release but also induced IL-8 transcript via promoter activation. HSP22 activated ERK and p38 MAPK in AoSMCs. HSP22-induced IL-8 release was inhibited by U0126, but not by SB202190. A mutation in the IL-8 promoter region at the binding site of NF-${\kappa}$ B, but not AP-1 or C/EBP, impaired promoter activation in response to HSP22. Delivery of I ${\kappa}$ B, but not dominant negative c-Jun, lowered HSP22-induced IL-8 release from AoSMCs. These results suggest that HS P22 induces IL-8 in VSMCs via ERK1/2, and that transcription factor NF-kB may be required for the HSP22-induced IL-8 up-regulation.
Cytochrome P4501A2 (CYP1A2) is a member of the cytochrome P450 family of isozymes involved in the phase I drug metabolism of vertebrates. CYP1A2 is responsible for the activation of a number of aromatic amines to mutagenic and carcinogenic forms. Thus, the level of CYP1A2, which varies among different populations, may determine an individual's susceptibility to these chemicals. We have previously reported on the importance of a cis element named PRB (protected region B) in the regulation of human Cytochrome P4501A2 (CYP1A2) gene, which appeared to act as a positive regulatory element. Closer examination of the PRB sequence (-2218 to -2187 bp) revealed a putative AP-1 binding site, TGACTAA, at -2212 bp (Chung and Bresnick, 1997). To elucidate the role of AP-1 in CYP1A2 regulation, we transiently overexpressed c-Jun and c-Fos transcription factors in human hepatoma HepG2 cells, and examined their influence on the CYP1A2 promoter activity by reporter gene assays. Cotransfection of the c-Jun and the c-Fos expression vectors increased the induced transactivation by five to six fold from the CYP1A2 promoter constructs. However, deletion of the PRB element did not affect the degree of activation by the c-Jun and the c-Fos. Therefore, it is unlikely that the c-Jun and the c-Fos activate the CYP1A2 promoter through this AP-1 consensus-like sequence in the PRB region.
Diclofenac, a phenylacetic acid derivative, is a widely used non-steroidal anti-inflammatory drug (NSAID) to provide effective relief of inflammation and pain. Nitric oxide (NO) synthesized by inducible nitric oxide synthase (iNOS) has been implicated as a mediator of inflammation. We examined the inhibitory effects of diclofenac on the induction of iNOS in RAW 264.7 macrophages which were activated with lipopolysaccharide (LPS) plus interferon-gamma $(IFN-{\gamma}).$ Treatment of RAW 264.7 cells with diclofenac and other NSAIDs (aspirin and indomethacin) significantly inhibited NO production and iNOS protein expression induced by LPS plus $IFN-{\gamma}.$ Also, diclofenac but not aspirin and indomethacin, inhibited iNOS mRNA expression and nuclear factor-kappa B $(NF-{\kappa}B)$ binding activity concentration-dependently. Furthermore, transfection of RAW 264.7 cells with iNOS promoter linked to a CAT reporter gene revealed that only diclofenac inhibited the iNOS promoter activity induced by LPS plus $IFN-{\gamma}$ through the $NF-{\kappa}B$ sites of iNOS promoter. Taken together, these suggest that diclofenac may exert its anti-inflammatory effect by inhibiting iNOS gene expression at the transcriptional level through suppression of $NF-{\kappa}B$ activation.
Cytochrome P450 3A4 (CYP3A4) is the most abundant CYPs in human liver, comprising approximately $30\%$ of the total liver CYPs contents and is involved in the metabolism of more than $60\%$ of currently used therapeutic drugs. However, the molecular mechanisms underly-ing regulation of CYP3A4 gene expression have not been understood. Thus, this study has been carried out to gain the insight of the molecular mechanism of CYP3A4 gene expression, investigating if the histone deacetylation is involved in the regulation of CYP3A4 gene expression by proximal promoter. Also SXR was investigated to see if they were involved in the regulation of CYP3A4 proximal promoter activity. Hepa-1 cells were transfected with a plasmid containing ${\~}1kb$ of the human CYP3A4 proximal promoter region (863 to +64 bp) cloned in front of a reporter gene, luciferase, in the presence or absence of SXR. Transfected cells were treated with CYP3A4 inducers such as rifampicin, PCN and RU 486, in order to examine the regulation of CYP3A4 gene expression in the presence or absence of trichostatin A (TSA). In Hepa-1 cells, CYP3A4 inducers increased modestly the luciferase activity when TSA was co-treated, but this increment was not enhanced by SXR cotransfection. Taken together, these results indicated that the inhibition of histone deacetylation was required to SXR-mediated increase in CYP3A4 proximal promoter region when rifampicin, or PCN was treated. Further a trans-activation by SXR may demand other species-specific transcription factors.
Green tea (Camellia sinensis) is one of the most popular beverages in the world and has been acknowledged for centuries as having significant health benefits. (-)-Epigallocatechin-3-gallate (EGCG) is the most abundant catechin in green tea, and it has been reported to have health benefit effects. Peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ coactivator $(PGC)-1{\alpha}$ is a crucial regulator of mitochondrial biogenesis and hepatic gluconeogenesis. The objective of this study was to investigate whether EGCG from green tea can affect the ability of transcriptional regulation on $PGC-1{\alpha}$ mRNA expression in HepG2 cells and 3T3-L1 adipocytes. To study the molecular mechanism that allows EGCG to control $PGC-1{\alpha}$ expression, the promoter activity levels of $PGC-1{\alpha}$ were examined. The $PGC-1{\alpha}$ mRNA level was measured using quantitative real-time PCR. The -970/+412 bp of $PGC-1{\alpha}$ promoter was subcloned into the pGL3-Basic vector that includes luciferase as a reporter gene. EGCG was found to up-regulate the $PGC-1{\alpha}$ mRNA levels significantly with $10{\mu}mol/L$ of EGCG in HepG2 cells and differentiated 3T3-L1 adipocytes. $PGC-1{\alpha}$ promoter activity was also increased by treatment with $10{\mu}mol/L$ of EGCG in both cells. These results suggest that EGCG may induce $PGC-1{\alpha}$ gene expression, potentially through promoter activation.
Cytochrome P4503A4(CYP3A4) is the most abundnat CYPs in human liver, comparising approximately 30% of the total liver CYPs contents ans is involbed in the metabolism of more than 60% of currently used therapeutic drugs. The expression of CYP3A4 is induced by a variety of structurally unrelated xonobiotics including the antibiotic rifampicin and endogenous hormones, and might be mediated through steroid and xenobiotic receptor(SXR) system. The molecular mechanisms underlying regulation of CYP3A4 gene expression hae not been understood. In order to gain the insight of the molecular mechanism of CYP3A4 gene expression, study has been undertaken to investigate if the histone deacelylation is involved in the regulation of CYP3A4 gene expression by proximal promoter or not. Also SXR was investigated to see if they were involved in the regulation of CYP3A4 proximal promoter activity. HepG2 or Hena-I cells were transfected with a plasmid containing~1kb of the CYP3A4 proximal promoter region (-863 to +64bp) cloned in front of a reporter gene, luciferase, in the presence or absence of SXR or hER. Transfected cells were treated with CYP3A4 inducers such as rifampicin, PCN and RU 486, or with estradiol, in order to exmine to regulation of CYP3A4 gene expression in the presence or absence of trichostatin A (TSA). In HepG2 cells, CYP3A4 inducers and estradiol increased significantly the luciferase activity by CYP3A4 proximal promoter, only when TSA was co-treated after SXR cotransfection. In the case of Hepa-I cells CYP3A4 inducers and estradiol incressed modestly the luciferase activity when TSA was co-treated, but this increment was not enhanced by SXR cotransfection in contrast to HepG2 cells. Taken together, these results indicated that the inhibition of histone deacetylation was required to SXR-mediated increase in CYP3A4 proximal promoter region when rifampicin, or PCN was treated. Futher a trans-activation by SXR may demand other species-specific transcription factors.
In a signal transduction network, from the perception of stress signals to stress-responsive gene ex- pression, binding of various transcription factors to cis-acting elements in stress-responsive promoters coordinate the adaptation of plants to abiotic stresses. Among the AP2/ERF transcription factor family genes, group VII ERF genes, such as RAP2.12, RAP2.2, RAP2.3, AtERF73/HRE1, and AtERF71/ HRE2, are known to be involved in the response to hypoxia stress in Arabidopsis. In this study, we dissected the HRE1 promoter to identify hypoxia-responsive region(s). The 1,000 bp upstream promoter region of HRE1 showed increased promoter activity in Arabidopsis protoplasts and transgenic plants under hypoxia conditions. Analysis of the promoter deletion series of HRE1, including 1,000 bp, 800 bp, 600 bp, 400 bp, 200 bp, 100 bp, and 50 bp upstream promoter regions, using firefly luciferase and GUS as reporter genes indicated that the -200 to -100 region of the HRE1 promoter is responsible for the transcriptional activation of HRE1 in response to hypoxia. In addition, we identified two putative hypoxia-responsive cis-acting elements, the ERF-binding site and DOF-binding site, in the -200 to -100 region of the HRE1 promoter, suggesting that the expression of HRE1 might be regulated via the ERF transcription factor(s) and/or DOF transcription factor(s). Collectively, our results suggest that HRE1 contains hypoxia-responsive cis-acting elements in the -200 to -100 region of its promoter.
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