KIEE International Transactions on Electrophysics and Applications
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v.4C
no.4
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pp.145-148
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2004
In this study, a DNA chip with a microelectrode array was fabricated using microfabrication technology. Several probe DNAs consisting of mercaptohexyl moiety at their 5' end were immobilized on the gold electrodes by a DNA arrayer. Then target DNAs were hybridized and reacted with Hoechst 33258, which is a DNA minor groove binder and electrochemically active dye. Linear sweep voltammetry or cyclic voltammetry showed a difference between target DNA and control DNA in the anodic peak current values. It was derived from Hoechst 33258 and concentrated at the electrode surface through association with the formed hybrid. This suggested that this DNA chip could recognize the sequence specific genes.
In this paper, a DNA chip with a microelectrode array was fabricated using microfabrication technology. Several probe DNAs consisting of mercaptohexyl moiety at their 5 end were immobilized on the gold electrodes by DNA arrayer. Then target DNAs were hybridized and reacted with Hoechst 33258, which is a DNA minor groove binder and electrochemically active dye. Linear sweep voltammetry or cyclic voltammetry showed a difference between target DNA and control DNA in the anodic peak current values. It was derived from Hoechst 33258 concentrated at the electrode surface through association with formed hybrid. It suggested that this DNA chip could recognize the sequence specific genes.
This research aims to develop the multiple channel electrochemical DNA chip that has the above characteristic and be able to solve the problems. At first, we fabricated a high integration type DNA chip array by lithography technology. It is able to detect a plural genes electrochemically after immobilization of a plural probe DNA and hybridization of non-labeling target DNA on the electrodes simultaneously. It suggested that this DNA chip could recognize the sequence specific genes. It suggested that multichannel electrochemical DNA microarray is useful to develop a portable device for clinical gene diagnostic system.
Multiplex ligation dependent probe amplification (MLPA) is a PCR-based method to detect gene dosage. Since its introduction, MLPA has been used to test a large number of genes for major deletions or duplications. Genetic testing, as a diagnostic tool for genetic disease, has been used primarily to identify point mutations, including base substitutions and small insertions/deletions, using PCR and sequence analysis. However, it is difficult to identify large deletions or duplications using routine PCR- gel based assays, especially in heterozygotes. The MLPA is a more feasible method for identification of gene dosage than another routine PCR-based methods, and better able to detect deleterious deletions or duplications. In addition to detection of gene dosage, MLPA can be applied to identify methylation patterns of target genes, aneuploidy during prenatal diagnoses, and large deletions or duplications that may be associated with various cancers. The MLPA method offers numerous advantages, as it requires only a small amount of template DNA, is applicable to a wide variety of applications, and is high-throughput. On the other hand, this method suffers from disadvantages including the possibility of false positive results affected by template DNA quality, difficulties identifying SNPs located in probe sequences, and analytical complications in quantitative aspects.
SHIN, BYUNG SIK;BON TAG KOO;SEUNG HWAN PARK;HO YONG PARK;JEONG IL KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.1
no.4
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pp.240-245
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1991
We have constructed a promoter-probe vector pKU20 using pKT230, a derivative of broad-host-range plsmid RSF1010, as a base. The pKU20 contains structural gene for aminoglycoside phos-photransferase (aph), without promoter, and a multiple cloning site upstream the aph. Using this vector, a 412base pairs (bp) PstI fragment showing strong promoter activity both in Escherichia coli LE392 and Pseudomonas putida KCTC1644 has been cloned from Pseudomonas fluorescens chromosomal DNA on the basis of streptomycin resistance. The nucleotide sequence of the 412 bp fragment has been determined and the putative - 35 and -10 region was observed. Insecticidal protein gene of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD-73 inserted on downstream of the promoterlike DNA fragment was efficiently expressed in E. coli and P. putida. The toxin protein was efficiently synthesized in an insoluble form in both strains.
Proceedings of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers Conference
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2006.06a
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pp.372-373
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2006
In this paper, a DNA chip with a microelectrode array was fabricated using microfabrication technology. Several probe DNAs consisting of mercaptohexyl moiety at their 5 end were immobilized on the gold electrodes by DNA arrayer. Then target DNAs were hybridized and reacted with Hoechst 33258, which is a DNA minor groove binder and electrochemically active dye. Linear sweep voltammetry or cyclic voltammetry showed a difference between target DNA and control DNA in the anodic peak current values. It was derived from Hoechst 33258 concentrated at the electrode surface through association with formed hybrid. It suggested that this DNA chip could recognize the sequence specific genes.
This study was conducted using quantitative real-time PCR using Lactobacilli as probiotics. Quantitative real-time PCR (RT PCR) was conducted via a method involving SYBR Green 1 and a probe. Plasmid DNA was cloned using the 16S-23S rRNA intergenic species region. Gene clones were diluted from $10^2$ to $10^{10}$. Standard curves were constructed via Ct values obtained from the results of Real-time PCR via the aforementioned SYBR Green 1 and probe method. Plasmid DNA was also cloned using the 16S-23S rRNA intergenic species region and the gene clones were diluted from $10^2$ to $10^{10}$ copy numbers via the probe method. Using RT PCR, a standard curve of plasmid DNA copy numbers was also determined. The slope value for the Y-axis intercept and $R^2$ value were measured as -3.346, 33.18, and 0.993, respectively, via the first method. For the second method, the slope value for the Y-axis intercept and $R^2$ were -3.321, 31.10 and 0.995, respectively. The PCR inhibitor could not express the detection curve at a copy number over $10^{10}$ via either method, owing to high DNA density. The DNA extract from probiotics was diluted without pre-culturing, and 16 products were amplified via both methods. The Ct value was 11.06~18.12 in the first method and 16.74~22.11 in the second method. Measured probiotics and log copy values were largely similar among the methods used. It was concluded that both methods are effective for analysis, but further research will be required to verify the optimal method.
Jo, Seong-Bo;Hong, Jin-Seop;Kim, Yeong-Mi;Park, Jeong-Ho
The Transactions of the Korean Institute of Electrical Engineers C
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v.51
no.2
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pp.92-97
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2002
One of the important roles of a DNA chip is the capability of detecting genetic diseases and mutations by analyzing DNA sequence. For a successful electrochemical genotyping, several aspects should be considered including the chemical treatment of electrode surface, DNA immobilization on electrode, hybridization, choice of an intercalator to be selectively bound to double standee DNA, and an equipment for detecting and analyzing the output signal. Au was used as the electrode material, 2-mercaptoethanol was used for linking DNA to Au electrode, and methylene blue was used as an indicator that can be bound to a double stranded DNA selectively. From the analysis of reductive current of this indicator that was bound to a double stranded DNA on an electrode, a normal double stranded DNA was able to be distinguished from a single stranded DNA in just a few seconds. Also, it was found that the peak reduction current of indicator is proportional to the concentration of target DNA to be hybridized with probe DNA. Therefore, it is possible to realize a sim71e and cheats DNA sensor using the electrochemical measurement for genotyping.
Hybridization of DNA isolated from leaves of Russet Burbank potato with tomato cDNA as a probe revealed the presence of about ten inhibitor 1 genes in the genome. Screening of a genomic library of Russet Burbank potato resulted in isolation of seven different genomic clones carrying inhibitor I genes. One of the genomic clones, clone 2, contained two EcoRI fragments of 3.4 and 1.8 kb in size, respectively, which were hybridized with the probe. The nucleotide sequence of parts of the hybridizing EcoRI fragments revealed that they contain a complete gene which codes for an open reading frame of 107 amino acids. It is interrupted by two intervening sequences of 502 and 493 bp, situated at the positions of codons 17 and 43, respectively, of the open reading frame. Putative regulatory sequences, TATAAA and CCACT, were found at the 5' flanking region. In addition, a copy of a 100 bp repeat found at a tomato inhibitor I gene was identified.
Promoters of an alkali-tolerant Bacillus sp. isolated from soil have been cloned in Bacillus subtilis using promoter probe vector pPL703. The CAT specific activity of a clone harboring the strongest promoter activity among these transformants was 8.01. This activity was 2.5 times higher than that of Bacillus subtilis harboring expression vector pPL708 and was increased after the end of the logarithmic growth phase. In the 2.8kb of inserted DNA fragment, BamHI and Sal I recognition sites were located.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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