The objective of this study was to induce the production of isthmic organizer (IsO)-like cells capable of secreting fibroblast growth factor (FGF) 8 and WNT1 from human embryonic stem cells (ESCs). The precise modulation of canonical Wnt signaling was achieved in the presence of the small molecule CHIR99021 ($0.6{\mu}M$) during the neural induction of human ESCs, resulting in the differentiation of these cells into IsO-like cells having a midbrain-hindbrain border (MHB) fate in a manner that recapitulated their developmental course in vivo. Resultant cells showed upregulated expression levels of FGF8 and WNT1. The addition of exogenous FGF8 further increased WNT1 expression by 2.6 fold. Gene ontology following microarray analysis confirmed that IsO-like cells enriched the expression of MHB-related genes by 40 fold compared to control cells. Lysates and conditioned media of IsO-like cells contained functional FGF8 and WNT1 proteins that could induce MHB-related genes in differentiating ESCs. The method for generating functional IsO-like cells described in this study could be used to study human central nervous system development and congenital malformations of the midbrain and hindbrain.
Pluripotent embryonic stem cells can differentiate into beating cardiomyocytes with proper culture conditions and stimulants via embryo-like aggregates. We describe here the use of mouse embryonic stem (mES03) cells as a reproducible differentiation system for cardiomyocyte. mES03 cells growing in colonies were dissociated and allowed to re-aggregated in suspension [embryoid body (EB) formation〕. To induce cardiomyocytic differentiation, cells were exposed to 0.75% dimethyl sulfoxide (DMSO) during EB formation for 4 days and then another 4 days without DMSO (4+/4-). Thus treated EB was plated onto gelatin-coated dishes for differentiation. Spontaneously contracting colonies which appeared in approximately 4~5 days upon differentiation were mechanically dissected, enzymatically dispersed, plated onto coverslips, and then incubated for another 48~72 hrs. By RT-PCR, robust expression of cardiac myosin heavy chain $\alpha$, cardiac muscle heavy polypeptide 7 $\beta$($\beta$-MHC), cardiac transcription factor GATA4, and skeletal muscle-specific $\alpha$$_1$-subunit of the L-type calcium channel ($\alpha$$_1$CaC $h_{sm}$ ) were detected as early as 8 days after EB formation, but message of cardiac muscle-specific $\alpha$$_1$-subunit of the L-type calcium channel ($\alpha$$_1$CaCh) were reveled at a low level. In contrast, expression of myosin light chain (MLC-2V) and atrial natriuretic factor (ANF) were not detected during EB formation for 8 days. However, a strong expression of the atrial-specific ANF gene was expressed from day 8 onward, which were remained constant in EB. (cardiac specialization and terminal differentiation stage). Electrophysiological examination of spontaneously contracting cells showed ventricle-like action potential 17 days after the EB formation. This study indicates that mES03 cell-derived cardiomyocytes via 4+/4- protocol displayed biochemical and electrophysiological properties of subpopulation of cardiomyocytes.
Cells that have endogenous multipotent properties can be used as a starting source for the generation of induced pluripotent cells (iPSC). In addition, small molecules associated with epigenetic reprogramming are also widely used to enhance the multi- or pluripotency of such cells. Skinderived precursor cells (SKPs) are multipotent, sphereforming and embryonic neural crest-related precursor cells. These cells can be isolated from a juvenile or adult mammalian dermis. SKPs are also an efficient starting cell source for reprogramming and the generation of iPSCs because of the high expression levels of Sox2 and Klf4 in these cells as well as their endogenous multipotency. In this study, valproic acid (VPA), a histone deacetylase (HDAC) inhibitor, was tested in the generation of iPSCs as a potential enhancer of the reprogramming potential of SKPs. SKPs were isolated from the back skins of 5-6 week old C57BL/6 X DBA/2 F1 mice. After passage 3, the SKPs was treated with 2 mM of VPA and the quantitative real time RT-PCR was performed to quantify the expression of Oct4 and Klf4 (pluripotency specific genes), and Snai2 and Ngfr (neural crest specific genes). The results show that Oct4 and Klf4 expression was decreased by VPA treatment. However, there were no significant changes in neural crest specific gene expression following VPA treatment. Hence, although VPA is one of the most potent of the HDAC inhibitors, it does not enhance the reprogramming of multipotent skin precursor cells in mice.
Kim, Min-Jeong;Ahn, Kwang-Sung;Kim, Young-June;Shim, Ho-Sup
Reproductive and Developmental Biology
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v.33
no.3
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pp.133-137
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2009
Pluripotent embryonic stem (ES) cells isolated from inner cell mass (ICM) of blastocyst-stage embryos are capable of differentiating into various cell lineages and demonstrate germ-line transmission in experimentally produced chimeras. These cells have a great potential as tools for transgenic animal production, screening of newly-developed drugs, and cell therapy. Miniature pigs, selectively bred pigs for small size, offer several advantages over large breed pigs in biomedical research including human disease model and xenotransplantation. In the present study, factors affecting primary culture of somatic cell nuclear transfer blastocysts from miniature pigs for isolation of ES cells were investigated. Formation of primary colonies occurred only on STO cells in human ES medium. In contrast, no ICM outgrowth was observed on mouse embryonic fibroblasts (MEF) in porcine ES medium. Plating intact blastocysts and isolated ICM resulted in comparable attachment on feeder layer and primary colony formation. After subculture of ES-like colonies, two putative ES cell lines were isolated. Colonies of putative ES cells morphologically resembled murine ES cells. These cells were maintained in culture up to three passages, but lost by spontaneous differentiation. The present study demonstrates factors involved in the early stage of nuclear transfer ES cell isolation in miniature pigs. However, long-term maintenance and characterization of nuclear transfer ES cells in miniature pigs are remained to be done in further studies.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.102-102
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2003
Embryonic stem (ES) cells proliferate extensively in the undifferentiated state and have the potential to differentiate into a variety of cell types in response to various environmental cues. The generation of functional dopaminergic neurons from ES cells is promising for cell replacement therapy to treat Parkinson's disease. We compared the in vitro differentiation potential of pluripotent human embryonic stem (hES, MB03) cells induced with basic fibroblast growth factor (bFGF) or retinoic acid (RA). Both types of treatment resulted in similar neural cell differentiation patterns at the terminal differentiation stage, specifically, 75% neurons and 11% glial cells. Additionally, treatment of hES cells with brain derived neurotrophic factor (BDNF) or transforming growth factor (TGF)- $\alpha$ during the terminal differentiation stage led to significantly increased tyrosine hydroxylase (TH) expression, compared to control (P<0.05). In contrast, no effect was observed on the rate of mature or glutamic acid decarboxylase-positive neurons. Immunostaining and HPLC analyses revealed the higher levels of TH (20.3%) and dopamine in bFGF and TGF-$\alpha$ treated hES cells than in RA or BDNF treated hES cells. The results indicate that TGF-$\alpha$ may be successfully used in the bFGF induction protocol to yield higher numbers of functional dopaminergic neurons from hES cells.
OCT4, also known as POU5F1 (POU domain class 5 transcription factor 1), is a transcription factor that acts as a master regulator of pluripotency in embryonic stem cells and is one of the reprogramming factors required for generating induced pluripotent stem cells. The human OCT4 encodes three isoforms, OCT4A, OCT4B, and OCT4B1, which are generated by alternative splicing. Currently, the functions and expression patterns of OCT4B remain largely unknown in malignancies, especially in human glioblastomas. Here, we demonstrated the function of OCT4B in human glioblastomas. Among the isoform of OCT4B, OCT4B-190 ($OCT4B^{19kDa}$) was highly expressed in human glioblastoma stem cells and glioblastoma cells and was mainly detected in the cytoplasm rather than the nucleus. Overexpression of $OCT4B^{19kDa}$ promoted colony formation of glioblastoma cells when grown in soft agar culture conditions. Clinical data analysis revealed that patients with gliomas that expressed OCT4B at high levels had a poorer prognosis than patients with gliomas that expressed OCT4B at low levels. Thus, $OCT4B^{19kDa}$ may play a crucial role in regulating cancer cell survival and adaption in a rigid environment.
Parkinson's disease (PD) is a complicated neurodegenerative disorder although it is oftentimes defined by clinical motor symptoms originated from age dependent and progressive loss of dopaminergic neurons in the midbrain. The pathogenesis of PD involves dopaminergic and nondopaminergic neurons in many brain regions and the molecular mechanisms underlying the death of different cell types still remain to be elucidated. There are indications that PD causing disease processes occur in a global scale ranging from DNA to RNA, and proteins. Several PD-associated genes have been reported to play diverse roles in controlling cellular functions in different levels, such as chromatin structure, transcription, processing of mRNA, translational modulation, and posttranslational modification of proteins. The advent of quantitative high throughput screening (HTS) tools makes it possible to monitor systemic changes in DNA, RNA and proteins in PD models. Combined with dopamine neuron isolation or derivation of dopamine neurons from PD patient specific induced pluripotent stem cells (PD iPSCs), HTS techonologies will provide opportunities to draw PD causing sequences of molecular events in pathologically relevant PD samples. Here I discuss previous studies that identified molecular functions in which PD genes are involved, especially those signaling pathways that can be efficiently studied using HTS methodologies. Brief descriptions of quantitative and systemic tools looking at DNA, RNA and proteins will be followed. Finally, I will emphasize the use and potential benefits of PD iPSCs-derived dopaminergic neurons to screen signaling pathways that are initiated by PD linked gene mutations and thus causative for dopaminergic neurodegneration in PD.
Tokalov, Sergey V.;Gruner, Susanne;Schindler, Sebastian;Iagunov, Alexey S.;Baumann, Michael;Abolmaali, Nasreddin D.
Molecules and Cells
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v.24
no.2
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pp.255-260
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2007
Bone marrow (BM) derived mesenchymal stem cells (MSC) are pluripotent cells which can differentiate into osteogenic, adipogenic and other lineages. In spite of the broad interest, the information about the changes in BM cell composition, in particularly about the variation of MSC number and their properties in relation to the age of the donor is still controversial. The aim of this study was to investigate the age associated changes in variations of BM cell composition, phenotype and differentiation capacities of MSC using a rat model. Cell populations were characterized by flow cytometry using light scattering parameters, DNA content and a set of monoclonal antibodies. Single cell analysis was performed by conventional fluorescent microscopy. In vitro culture of MSC was established and their phenotype and capability for in vitro differentiation into osteogenic and adipogenic cells was shown. Age related changes in tibiae and femurs, amount of BM tissue, BM cell composition, proportions of separated MSC and yield of MSC in 2 weeks of in vitro culture were found. At the same time, neither change in phenotype no in differentiation capacities of MSC was registered. Age-related changes of the number of MSC should be taken into account whenever MSC are intended to be used for investigations.
Shim, Sang Woo;Han, Dong Wook;Yang, Ji Hoon;Lee, Bo Yeon;Kim, Seung Bo;Shim, Hosup;Lee, Hoon Taek
Molecules and Cells
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v.25
no.3
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pp.358-367
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2008
The embryonic germ cell (EGCs) of mice is a kind of pluripotent stem cell that can be generated from pre- and post-migratory primordial germ cells (PGCs). Most previous studies on DNA methylation of EGCs were restricted to 12.5 days post coitum (dpc). This study was designed to establish and characterize murine EGC lines from migrated PGCs as late as 13.5 dpc and to estimate the degrees of methylation of their imprinted genes as well as of the non-imprinted locus, Oct4, using an accurate and quantitative method of measurement. We established five independent EGC lines from post migratory PGCs of 11.5-13.5 dpc from C57BL/6 ${\times}$ DBA/2 F1 hybrid mouse fetuses. All the EGCs exhibited the typical features of pluripotent cells including hypomethylation of the Oct4 regulatory region. We examined the methylation status of three imprinted genes; Igf2, Igf2r and H19 in the five EGC lines using bisulfite genomic sequencing analysis. Igf2r was almost unmethylated in all the EGC lines irrespective of the their sex and stage of isolation; Igf2 and H19 were more methylated than Igf2r, especially in male EGCs. Moreover, EGCs derived at 13.5 dpc exhibited higher levels of DNA methylation than those from earlier stages. These results suggest that in vitro derived EGCs acquire different epigenotypes from their parental in vivo migratory PGCs, and that sex-specific de novo methylation occurs in the Igf2 and H19 genes of EGCs.
The aim of the present study was to improve the cell viability of human dental papilla derived single-induced pluripotent stem cells (iPSCs) using a Rho-associated protein kinase (ROCK) inhibitor, Y-27632. The iPSCs were produced using an episomal plasmid-based reprogramming method. After cell separation using trypsin, the iPSCs were treated with 0, 0.5, 1, 2.5, 5, 7.5, or $10{\mu}M$ Y-27632 for 5 d. Cell viability increased significantly following the $5{\mu}M$ Y-27632 treatment (p<0.05). When the iPSCs were exposed to medium containing $10{\mu}M$ Y-27632 for 0, 1, 2, 3, 4, and 5 d, the cell viability rate increased significantly in accordance with the cell viability rate (p<0.05). To evaluate the effect of the Y-27632 treatment on stemness characteristics, the expression of stem cell-specific transcripts and telomerase activity were investigated in the iPSCs treated with $10{\mu}M$ Y-27632 for 5 d. The expression levels of stem cell-specific transcripts, such as OCT-4, NONOG, and SOX-2, and telomerase activity were not significantly different in the iPSCs treated with $10{\mu}M$ Y-27632 as compared with those of untreated control iPSCs (p>0.05). Taken together, the results demonstrated that cell viability can be improved by treatment with the ROCK inhibitor Y-27632, without losing iPSC stemness characteristics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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