Kwon, Hyuk Woo;Kim, Jun Young;Choi, Min Ah;Son, Seung Yeol;Kim, Seong Hwan
Mycobiology
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제42권1호
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pp.82-85
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2014
During an investigation of microorganisms and pests in plant culture media from imported anthurium pots, a fungal isolate (DUCC4002) was detected. Based on its morphological characters including colony shape on potato dextrose agar, the microstructures of spores observed by light and scanning electron microscopy and the results of phylogenetic analysis using an internal transcribed spacer rDNA sequence, the fungal isolate was identified as Myrothecium roridum. Pathogenicity testing on anthurium leaves revealed that the fungus could colonize and produce sporodochia on the inoculated leaves. This is the first report of M. roridum detected in imported plant culture medium in Korea.
The optimal culture conditions were studied for plant regeneration from mesophyll protoplasts of Solanum sisymbriifolium. Axenic seedlings of S. sisymbriifolium were used as a explant for protoplast culture. Many viable protoplasts were isolated by incubating leaf slices in an enzyme solution containing 0.25% Meicerase and 0.05% Macerozyme for 16 hr at $25^{\circ}C$ without shaking. Protoplast density of $5.0{\times}10^4\;ml^{-1}$ in Kao medium containing 5.0 mg/L NAA, 1.0 mg/L 2,4-D and 1.0 mg/L BA was optimal for colony formation. Most colonies were formed when protoplasts were cultured at $25^{\circ}C$ after initial culture at $30^{\circ}C$ for one week. On the MS agar medium with 1.0 mg/L zeatin, 38.4% of protoplast-derived calli differentiated shoots. These shoots rooted on 1/2MS medium with 5.0 g/L sucrose and 2.5 g/L gellan gum, and developed into whole plants.
An efficient plant regeneration system in alfalfa (Medicago sativa L.) through somatic embryogenesis was established. Embryogenic callus was obtained by culture of hypocotyl segments on MS medium with 0.02mg $L^{-1}$ IAA and 1.0mg $L^{-1}$ zeatin after 45 days of culture. Embryogenic calli were converted to the somatic embryos when transferred to either MS medium without plant growth regulators (PGRs) or MS medium containing various cytokinin (BA, kinetin and zeatin). Most of the somatic embryos were developed into plantlets on MS medium supplemented with 0.1 mg $L^{-1}$ kinetin. Also, secondary embryos appeared on the surface of primary embryo but they showed abnormal growth. Regenerated plantlets were transplanted to pots containing vermiculite and perlite for further analysis.
To establish an in vitro mass production system of grape anthocyanin pigments through callus and cell suspension culture, the effects of nitrogen source and sucrose on fresh weight and anthocyanin production in cell suspension culture of 'Sheridan' grape level were studied. When the medium was devoid of $NO_3^-$, cell fresh weight was either remained stable (1% sucrose) or slightly decreased with culture time (2,3, and 4% sucrose). When $NH_4^-$ was lacking, 3% sucrose was most favorable for cell growth. When $NH_4^-$ was supplied as N source, the anthocyanin content of 2% sucrose containing medium was maintained 2 times higher than other levels till day 8 in culture, then that of 3 and 4% sucrose which peaked at day 12 thereafter. The anthocyanin content was low than $NO_3^-$-free media. Total anthocyanin content in $NH_4^-$-free medium was just about a half of that of $NH_4^+$ medium. Anthocyanin production of 2% sucrose in $NH_4^+$ medium was maintained about 3-fold till day 8, then decreased thereafter. In $NH_4^+$ medium, pH decreased gradually with final pH of 3.5 to 4.0, while pH in $NH_4^+$-free medium increased with final pH of 6.5 to 7.5.
A system was established for induction of multi-shoots and plant regeneration from mesophyll protoplasts of alfalfa, Medicago sativa L. cv. Vernal. Different hormonal effects were tested at each step of protoplast culture, i.e. cell division in modified Kao's liquid medium (K566-7). calli formation on SH semi solid medium, and multi-shoot regeneration from calli on SHa and SHb solid media. Frequency of multi-shoots and plant regeneration was affected by various combinations of phytohormones in final step. The evaluation of multi-shoots induction systems via protoplast culture was discused.
Orostachys japonicus A. Berger is a Perennial herbaceous plant which has been traditionally used as an anti-inflammatory agent to treat hepatitis and as an anticancer agent. The objective of this study was 1) to establish and proliferate in vitro plant of O. japonicus 2) to induce indirect somatic embryogenesis from O. japonicus. General calli and embryogenic calli in all ranges of 2,4-D and BA combination, were induced and were best at 22% (embryogenic cell) in 5.0 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BA combination. Embryogenic cell line was maintained by subculture at 2 week intervals and transferred to solid and liquid medium for embryo formation. In solid medium culture, globular and heart shaped embryos were observed in MS medium containing 5.0 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BA combination. The number of embryos was 6.5 per 0.5 g cell, and then the immature embryos transferred to MS basal medium for embryo development. In a suspension culture of embryogenic cells, globular and heart shaped embryos were emerged in MS medium supplemented with 3.0 mg/L 2,4-D and 0.3 mg/L BA combination after 10 days of incubation. The embryo formation rate was about 33% by suspension culture. The ratio of embryo germination was 60.9%, on the other side, the root formation rate was 74.3% in 1/2 MS continuously.
The experiment was conducted to identify the optimal in vitro propagation condition for P. lactiflora Pall. Through apical shoot tip and axillary shoot tip culture of winter bud. When apical shoot tip and axillary shoot tips excised from winter bud were cultured on MS medium supplemented with various concentrations of plant growth regulators, all the apical shoot tips elongated regardless of the composition of the medium but axillary shoot tips responded differently. Shoot of 'Uisong' local cultivate was well elongated in the medium containing 0.01mg/L NAA. Frequency of shoot formation and subsequent shoot growth in axillary shoot tip culture were promoted in the medium containing 0.01 mg/L NAA and 5.0mg/L zeatin. 30% of the elongated shoots were vigorously rooted on the medium containing 0.1mg/L NAA with vermiculite as a support medium.
An efficient protocol for in vitro multiple shoot bud induction and plant regeneration from mature green cotyledon derived callus tissues of Acacia sinuata has been developed. Callus formation occurs at all the concentrations of thidiazuron (TDZ) in Murashige and Skoog's (MS) medium, but 0.6 ${\mu}M$ proved to be the best with maximum callus formation frequency. Supplementation of TDZ in combination with indole-acetic acid (IAA) in MS media accelerates shoot bud organogenesis in differentiating callus tissues with 60-70% conversion of shoot buds into shoot Most efficient shoot organogenesis was recorded when TDZ induced calli were subcultured at different concentrations of 6-benzyla-denine (BA). Optimum shoot bud induction and plant regeneration from callus was achieved when 0.6 ${\mu}M$ (TDZ) induced calli were subcultured at 3.0 ${\mu}M$ (BA) where $16.6{\pm}0.74$ shoots/unit callus on obtained. Rooting in in vitro differentiated shoots was achieved when transferred to medium containing different concentration of indole-3-butyric acid (IBA) in full & half strength MS medium. The well rooted plantlets were hardened and transferred to net house with 90% survival rate.
Culture conditions for high frequency embryogenesis and plant regeneration in anther cultures of various F$_1$ hybrid and homozygous lines of pepper (Capsicum annuum L.) are described. Anthers pigmented less than halfway from the distal end were dissected from the flower bud in which petals elongated 2 mm higher than the receptacle. They were placed on Dumas medium supplemented with 0.1 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L kinetin. After four weeks of culture, embryos began to appear on anthers. After eight weeks of culture, frequencies of embryo formation reached up to 58.3%. Upon transfer to MS basal medium, greater than 95% of embryos developed into plantlets.
Haloxylon recurvum (Locally known as Khar) is drought and salt tolerant plant of Thar Desert. This plant is a major biomass producer and has economic and ecological importance for the region. There is need for study on biology, propagation and genetic improvement for utilization of this plant for reclamation of saline soils. We report here on in vitro propagation of Haloxylon recurvum (Moq.) using nodal explant. Secretion of phenolic compound from explants was a major constraint for establishment of culture. This was checked by thorough washing and quick transfer of explant on fresh culture medium. Juvenile nodal explant with leaves was found suitable for culture establishment. Benzy-ladenine($4.0\;{\mu}M$) incorporated in Murashige and Skoog (MS) medium with additives (50 mg/L ascorbic acid and 25 mg/L each of adenine sulphate, arginine and citric acid) induced multiple shoots from nodal explant. Addition of $1.0\;{\mu}M$ naphthalene acetic acid (NAA) in combination with $4.0\;{\mu}M$ BAP improved the growth of axillary shoots. Further shoot amplification was achieved by repeated subculture of mother explants on fresh medium. Forty percent of the micropropagated shoots rooted on half-strength MS medium with $4.0\;{\mu}M$ indolebutyric acid (IBA) and 100 mg/L activated charcoal, at $28{\pm}2^{\circ}C$ and $60\%$ RH. Sixty percent of these plantlets were hardened in green house.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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