Although considerable effort has been devoted in the mass spectrometric analysis of phosphorylated peptides, successful identification of multi-phosphorylated peptides in enzymatically digested protein samples still remains challenging. The ionization behavior of multi-phosphorylated peptides appears to be somewhat different from that of mono- or di-phosphorylated peptides. In this study, we demonstrate increased sensitivity of detection of multi-phosphorylated peptides of beta casein without using phosphopeptide enrichment techniques. Proteinase K digestion alone increased the detection limit of beta casein multi-phosphorylated peptides in the LC-MS analysis almost 500 fold, compared to conventional trypsin digestion (~50 pmol). In order to understand this effect, various factors affecting the ionization of phosphopeptides were investigated. Unlike ionizations of phosphopeptides with minor modifications, those of multi-phosphorylated peptides appeared to be subject to effects such as selectively suppressed ionization by more ionizable peptides and decreased ionization efficiency by multi-phosphorylation. The enhanced detection limit of multi-phosphorylated peptides resulting from proteinase K digestion was validated using a complex protein sample, namely a lysate of HEK 293 cells. Compared to trypsin digestion, the numbers of phosphopeptides identified and modification sites per peptide were noticeably increased by proteinase K digestion. Non-specific proteases such as proteinase K and elastase have been used in the past to increase detection of phosphorylation sites but the effectiveness of proteinase K digestion for multi-phosphorylated peptides has not been reported.
Although offline enrichment of phosphorylated peptides is widely used, enrichment for phosphopeptides using $TiO_2$ is often performed manually, which is labor-intensive and can lead to irreproducible results. To address the problems associated with offline enrichment and to improve the effectiveness of phosphopeptide detection, we developed an automated online enrichment system for phosphopeptide analysis. A standard protein mixture comprising BSA, fetuin, crystalline, ${\alpha}$-casein and ${\beta}$-casein, and ovalbumin was assessed using our new system. Our multidimensional system has four main parts: a sample pump, a 20-mm $TiO_2$-based column, a weak anion-exchange, and a strong cation-exchange (2:1 WAX:SCX) separation column with LC/MS. Phosphorylated peptides were successfully detected using the $TiO_2$-based online system with little interference from nonphosphorylated peptides. Our results confirmed that our online enrichment system is a simple and efficient method for detecting phosphorylated peptides.
Kwon, Hye Kyeong;Choi, Hyunwoo;Park, Sung-Gyoo;Park, Woo Jin;Kim, Do Han;Park, Zee-Yong
Molecules and Cells
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제44권7호
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pp.500-516
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2021
Cardiac hypertrophic signaling cascades resulting in heart failure diseases are mediated by protein phosphorylation. Recent developments in mass spectrometry-based phosphoproteomics have led to the identification of thousands of differentially phosphorylated proteins and their phosphorylation sites. However, functional studies of these differentially phosphorylated proteins have not been conducted in a large-scale or high-throughput manner due to a lack of methods capable of revealing the functional relevance of each phosphorylation site. In this study, an integrated approach combining quantitative phosphoproteomics and cell-based functional screening using phosphorylation competition peptides was developed. A pathological cardiac hypertrophy model, junctate-1 transgenic mice and control mice, were analyzed using label-free quantitative phosphoproteomics to identify differentially phosphorylated proteins and sites. A cell-based functional assay system measuring hypertrophic cell growth of neonatal rat ventricle cardiomyocytes (NRVMs) following phenylephrine treatment was applied, and changes in phosphorylation of individual differentially phosphorylated sites were induced by incorporation of phosphorylation competition peptides conjugated with cell-penetrating peptides. Cell-based functional screening against 18 selected phosphorylation sites identified three phosphorylation sites (Ser-98, Ser-179 of Ldb3, and Ser-1146 of palladin) displaying near-complete inhibition of cardiac hypertrophic growth of NRVMs. Changes in phosphorylation levels of Ser-98 and Ser-179 in Ldb3 were further confirmed in NRVMs and other pathological/physiological hypertrophy models, including transverse aortic constriction and swimming models, using site-specific phospho-antibodies. Our integrated approach can be used to identify functionally important phosphorylation sites among differentially phosphorylated sites, and unlike conventional approaches, it is easily applicable for large-scale and/or high-throughput analyses.
Glycinin, one of the predominant storage proteins in soybeans, was examined as to whether it could be used as a calcium-binding mediator after chemical phosphorylation and enzymatic hydrolysis. Glycinin is composed of six subunits. One of the proglycinin subunits $(A_{la}B_{lb})$ was overexpressed in E. coli to obtain nonphosphorylated proteins with homogeneity. To investigate the enhanced calcium-binding properties of the phosphopeptides, the proglycinin was purified, phosphorylated, and hydrolyzed with trypsin. The proglycinin expressed in E. coli was purified by ammonium sulfate precipitation, ion-exchange chromatography, and cryoprecipitation. Chemical phosphorylation by sodium trimetaphosphate was performed to obtain phosphorylated proglycinin. After the phosphorylation, one-dimensional isoelectric focusing gel electroanalysis confirmed the phosphorylation of the proglycinin. The phosphorylated peptides were then hydrolyzed with trypsin, followed by a binding reaction with calcium chloride. The calcium-bound phosphopeptides were finally separated using immobilized metal $(Ca^{2+})$ chromatography. Consequently, a limited tryptic hydrolysate of the isolated phosphopeptides exhibited an enhanced calcium-binding ability, suggesting the potential of glycinin phosphopeptides as a calcium-binding mediator with greater availability.
신경수초 염기성 단백질(MBP)에 대한 탈인산화의 자리 특이성에 대한 연구를 시험관에서 수행하였다. MBP에서 인산화된 자리를 알아내기 위해서 MBP를 단백질 키나제 C로 인산화 시키고 단백질 탈인산화 효소 PP2A로 탈인산화시켰다. 인산화된 MBP는 트립신으로 잘라내어서 역상 HPLC 크로마토그래피로 펩티드 조각들을 분리하였다. 각 조각들을 섬광 계측한 후 일부 펩티드의 아미노산 서열을 결정하였다. 일곱 개의 방사능을 보이는 펩티드 조각이 검출되었으며 두번째 조각($P_2$)의 $Ser^{55}$에 해당하는 아미노산이 인산화 반응에 가장 큰 민감도를 보였다. 그러나 탈인산화는 다섯번째 고작($P_5$)의 인산이 가장 잘 방출되는 것으로 나타났다. 이 결과는 MBP가 단백질 탈인산화 반응에 적절한 기질임을 보여주고 있다.
Phosphorylation and glycosylation are two of the most important and widespread post-translational modifications (PTMs) in an organism. Proteomics analysis of the PTMs has been challenged by low stoichiometry of the modified proteins and suppression effects by high abundance proteins, typically no-functional house-keeping proteins. In this study, a novel method was applied for not only isolating PTM peptides from intact peptides but also concurrently characterizing of glyco- and phosphoproteome using electrostatic repulsion hydrophilic interaction chromatography (ERLIC) packed with silica coated by crosslinked polyethyleneimine. For 2 mg tryptic digest of mouse proteome of epicardial adipose tissue with fat diet, 802 N-glycosylated peptides of 316 glycoproteins and 159 phosphorylated peptides of 75 phosphoproteins were identified using HPLC chip/quadrupole time-of-flight (Q-OF) tandem mass spectrometer.
A Saccharomyces cerevisiae Protein Tyrosine Phosphatase, PTP1, was expressed from an Escherichia coli expression system and milligram quantities of active PTP1 were purified chromatographically. The substrate specificity of the recombinant PTP1 was probed using synthetic phosphotyrosine-containing peptides corresponding to the regulatory phosphorylation sites of the yeast MAP kinase homologues $Fus3_{176-186}$, $Kss1_{179-189}$, and $Hog1_{170-180}$. Peptide sequences derived from the MAP kinase homologues were chosen arbitrarily as starting points for sequence variation studies even though they are not likely to be candidates for physiological substrates of PTP1. Phosphotyrosyl-$Hog1_{170-180}$ peptide showed a $K_M$ value of 877 ${\mu}M$ and phosphorylated $Kss1_{179-189}$ and $Fus3_{176-186}$ peptides showed lower $K_M$ values of 74 ${\mu}M$ and 51 ${\mu}M$ each. To study the effect of sequence variations of the peptide, amino acids of the undecapeptide $Hog1_{170-180}$ (DPQMTGpYVSTR) were sequentially substituted by an alanine residue. More extensive variations of each amino acid revealed positional importance of each amino acid residue. Based on these results, we derived a peptide sequence (DADEpYDA) that is recognized by PTP1 with an affinity ($K_M$ is 4 ${\mu}M$) significantly higher than that of the peptides derived from the phosphorylation sites of Fus3, Kss1, and Hog1.
NR2B는 연접후 치밀질의 주요 tyrosine 인산화 단백질이다. 본 연구에서는 mass spectrometry 방법을 적용하여 NR2B의 tyrosine 인산화 위치를 동정하였다. NR2B를 N-octyl glucoside (NOG)에 용해되지 않는 PSD 분획으로부터 SDS-PAGE와 electroelution방법으로 분리하였다. 분리한 단백질을 NR2B와 phos-photyrosine에 특이한 항체로 조사한 결과 이들은 phosphotyrosine을 유지하고 있는 NR2B임이 확인되었다. 이 단백질을 trypsin 혹은 endolys-C 처리하고, matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight (MALDI-TOF) mass spectrometry 방법으로 조사한 결과 Tyr-1304이 인산화됨을 확인하였다.
수산가공공장에서 부산물로 대량 생산되고 있는 민태 frame 단백질로부터 회수된 펩타이드의 이용성을 탐색할 목적으로 민태 frame 단백질 유래 펩타이드와 이를 인산화시킨 펩타이드에 대한칼슘흡수 촉진효과를 칼슘의 침전형성 저지율을 이용한 in vitro 실험과 칼슘 결핍 흰쥐를 이용한 in vivo실험으로 검토하였다. 먼저 in vitro 실험에서 칼슘의 침전형성 반응시간의 변화에 따른 상충액중의 칼슘농도는 민태 frame 펩타이드(HFP)와 인산화시킨 펩타이드 (PHFP)를 첨가한 경우 대조군보다 각각 약 1.5배 및 2.5배 높은 것으로 나타났으며, 펩타이드의 첨가농도에 따른 실험에서도 HFP는 농도가 1.0mg/ml일 때 가용화율이 $70\%$로 증가하였고, PHFP는 0.8mg/ml일 때 약 $75\%$, 그리고 2.0mg/ml일 때는 CPP와 같은 $100\%$로 증가하였다. 흰쥐를 이용한 in vivo 실험에서 HFP 및 PHFP 섭취군 모두에서 대퇴골내 칼슘농도가 유의적으로 상승하였으며, 특히 PHFP 섭취군은 소장내 가용성 칼슘의 함유량이 대조군에 비해 약 $60\%$ 이상 높았다. 또 소변으로 배출되는 칼슘의 양은 HFP를 섭취한 군이 대조군보다 약 1.5배 높았다. 이들의 결과로부터 어류가공 부산물로부터 단백질 유래의 칼슘흡수 촉진제의 개발이 가능할 것으로 기대된다.
Integrin-linked kinase 1 (ILK1) regulates several protein kinases, including PKB/Akt kinase and glycogen synthase kinase ${\beta}$. ILK1 is also involved distinctively in the cell morphological and structural functions by interacting with the components of the extracellular matrix or integrin. According to the information of serum- and glucocorticoid-induced kinase 1 (SGK1) substrate specificity (R-X-R-X-X(S/T)-${\phi};{\phi}$ indicates a hydrophobic amino acid), two putative phosphorylation sites, $Thr^{181}\;and\;Ser^{246}$, were found in ILK1. We showed that ILK1 fusion protein and two fluorescein-labeled ILK1 peptides, $FITC-^{174}RTRPRNGTLN^{183}$ and $FITC-^{239}CPRLRIFSHP^{248}$, were phosphorylated by SGK1 in vitro. We also identified that 14-3-3 ${\theta}\;{\varepsilon}\;and\;{\xi}$, among several 143-3 isotypes $({\beta},\;{\gamma},\;{\varepsilon},\;{\eta},\;{\sigma},\;{\theta},\;{\tau}\;and\;{\xi})$ formed protein complex with ILK1 in COS-1 cells. Furthermore, the phosphorylation of $Ser^{246}$ by SGK1 induced the binding with 14-3-3. It was also demonstrated that 14-3-3-bound ILK1 has reduced kinase activity. Thus, these data suggest that SGK1 phosphorylates $Thr^{181}\;and\;Ser^{246}$ of ILK1 and the phosphorylation of its $Ser^{246}$ makes ILK1 bind to 14-3-3, resulting in the inhibition of ILK1 kinase activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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