In order to investigate the role of a small GTP-binding protein RhoA in lysophosphatidic acid (LPA)-induced stress fiber formation, C3 ADP-ribosyltransferase was prepared by expressing in E. coli and then applied to Rat-2 fibroblasts. C3 transferase isolated from E. coli was as effective as the toxin from Clostridium botulinum in ADP-ribosylation of RhoA. Incubation of the cells with C3 transferase for 2 days induced ADP-ribosylation of RhoA by a dose-dependent manner, with a sub-maximal induction at $25\;{\mu}g/ml$. As expected, LPA-induced stress fiber formation was completely blocked by pre-incubation with C3 transferase for 2 days. However, exogenously added C3 transferase had no significant effect on the formation of phosphatidylethanol by LPA. These results suggested that phospholipase D was not activated by RhoA in the LPA-induced stress fiber formation.
In order to investigate whether phospholipase C (PLC) activity in oat celIs is regulated by Gprotein, we have characterized PLC in plasma membranes of oat tissues. To identify the purified plasma membrane, $K^+$-stimulated, $Mg^{2+}$-dependent ATPase activity was measured. The activity of ATPase was shown to be proportional to the concentration of membrane protein. To examine the PLC activity regulated by G-protein, we used the inside-out and outside-out plasma membrane mixture isolated from the oat cells. The plasma membrane mixture showed higher PLC activity than the one of the outside-out plasma membrane. This suggests that PLC activity is located at the cytoplasmic surface of plasma membrane. PLC activity in plasma membrane mixture was dependent on $Ca^{2+}$ with maximum activity at 100 ${\mu}m$$Ca^{2+}$ and it was inhibited by 1 mM EGTA. Using Sep-pak $Accell^{TM}$ Plus QMA chromatography, we found that inositol 1,4,5-trisphosphate ($IP_3$) was produced in the presence of 10 ${\mu}m$$Ca^{2+}$. The PLC activity in the membrane was enhanced by an activator of G-protein ($GTP{\gamma}S$) and not by an inhibitor ($GDP{\beta}S$). This indicates that a G-protein is involved in the activation of PLC in the plasma membrane of oat cells.
Lee, Chang Sup;Ghim, Jaewang;Song, Parkyong;Suh, Pann-Ghill;Ryu, Sung Ho
BMB Reports
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제49권3호
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pp.191-196
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2016
Vascular endothelial growth factor (VEGF) is a key mediator of angiogenesis and critical for normal embryonic development and repair of pathophysiological conditions in adults. Although phospholipase D (PLD) activity has been implicated in angiogenic processes, its role in VEGF signaling during angiogenesis in mammals is unclear. Here, we found that silencing of PLD2 by siRNA blocked VEGF-mediated signaling in immortalized human umbilical vein endothelial cells (iHUVECs). Also, VEGF-induced endothelial cell survival, proliferation, migration, and tube formation were inhibited by PLD2 silencing. Furthermore, while Pld2-knockout mice exhibited normal development, loss of PLD2 inhibited VEGF-mediated ex vivo angiogenesis. These findings suggest that PLD2 functions as a key mediator in the VEGF-mediated angiogenic functions of endothelial cells.
Lee, Sang Yoon;Lee, Yan;Choi, Joon Sig;Park, Jong Sang;Choi, Myung-Un
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제34권3호
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pp.931-935
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2013
Lipid events in liposome-mediated transfection (lipofection) are largely unknown. Here we studied whether phospholipase D (PLD), an important enzyme responsible for phospholipid breakdown, was affected during lipofection of HepG2 cells with a luciferase plasmid. Synthetic cholesterol (Chol) derivatives, including $3{\beta}$[L-ornithinamide-carbamoyl]Chol, [polyamidoamine-carbamoyl]Chol and $3{\beta}$[N-(N',N'-dimethylaminoethane)-carbamoyl]Chol, and a cationic lipid, N-[1-(2,3-dioleyloxy)propyl]-N,N,N-trimethylammonium chloride were mixed with a helper lipid dioleoylphosphatidylethanolamine to form respective cationic liposomes. All cationic liposomes were found to stimulate PLD. Although orders of magnitude effects of the cationic liposomes on PLD stimulation did not consistently match those on cytotoxicity and luciferase expression, a causal relationship between PLD activation and cytotoxic effect was remarkable. PLD stimulation by the cationic liposomes was likely due to their amphiphilic characters, leading to membrane perturbation, as supported by similar results obtained with other membrane-perturbing chemicals such as oleate, melittin, and digitonin. Our results suggest that lipofection induces cellular lipid changes such as a PLD-driven phospholipid turnover.
Phospholipase D (PLD) is an enzyme hydrolyzing phosphatidylcholine to phosphatidic acid (PA) and choline. We investigated the involvement of PLD1 in the uptake of norepinephrine (NE) in PC12 cells, pheochromocytoma cells. NE uptake was specific in PC12 cells because nomifensine, a specific blocker of NE transporter, blocked NE uptake. Inhibition of PLD function in PC12 cells by the treatment of butanol suppressed the NE uptake. In contrast, overexpression of PLD1 in PC12 cells increased NE uptake efficiently. These results suggest that PLD activity is involved in NE uptake. We explored the action mechanism of PLD in NE uptake. PA phosphatase inhibitor, propranolol, blocks the formation of PKC activator diacylglycerol from PA. Propranolol treatment to PC12 cells blocked dramatically the uptake of NE. Specific PKC inhibitors, GF109203X and Ro31-8220, blocked NE uptake. Taken together, we suggest for the first time that PLD1 activity is involved in NE uptake via the activation of PKC.
The present study showed that receptor-mediated activation of rabbit kidney proximal tubule cells by angiotensin II, the $Ca^{2+}$ ionophore A23187, or the protein kinase C activator phorbol myristate acetate (PMA) all stimulated phospholipase D (PLD). This was demonstrated by the increased formation of phosphatidic acid, and in the presence of 0.5% ethanol, phosphatidylethanol (PEt) accumulation. Angiotensin II leads to a rapid increase in phosphatidic acid and diacylglycerol, and phosphatidic acid formation preceeded the formation of diacylglycerol. This result suggests that some phosphatidic acid seems to be formed directly from phosphatidylcholine hydrolyzed by Pill. On the other hand, EGTA substantially attenuated angiotensin II and A23187-induced PEt formation, and when the cells were pretreated with verapamil angiotensin II-induced Pill activation was completely abolished. These results provide the evidence that calcium ion influx is essential for the agonist-induced Pill activation. In addition, staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, strongly inhibited PMA-induced PEt formation, but was ineffective on angiotensin II-induced PEt accumulation. $GTP{\gamma}S$ also stimulates PEt formation in digitonin-permeabilized cells, but pretreatment of the cells with pertussis toxin failed to suppress angiotensin II-induced PEt formation. From these results, we conclude that in the rabbit kidney proximal tubule cells the mechanisms of angiotensin II- and PMA-induced Pill activation are different from each other and mediated via a pertussis toxin-insensitive trimeric G protein.
Src homology (SH) domains of phospholipase C-$\gamma1$ (PLC-$\gamma1$) impair NGF-mediated PC12 cells differentiation. However, whether the enzymatic activity is also implicated in this process remains elusive. Here, we report that the enzymatic activity of phospholipase C-$\gamma1$ (PLC-$\gamma1$) is at least partially involved to the blockage of neuronal differentiation via an abrogation of MAPK activation, as well as sustained Akt activation. By contrast, Overexpression of WT-PLC-$\gamma1$ exhibited sustained NGF-induced MAPK activation, and triggered transient Akt activation resulting in profound inhibition of neurite outgrowth. However, lipase-inactive mutant (LIM) PLC-$\gamma1$ cells fail to suppress neurite outgrowth, although it contains intact SH domains, specifically enhancing the expression of cyclin D1 and p21 proteins, which regulate the function of retinoblastoma Rb protein. These observations show that the lipase inactive mutant of PLC-$\gamma1$ does not alter NGF-induced neuronal differentiation via enzymatic inability and the modulation of cell cycle regulatory proteins independent on SH3 domain.
Martinec, Jan;Feltl, Tomas;Nokhrina, Katerina;Zazimalova, Eva;Machackova, Ivana
식물조직배양학회지
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제27권5호
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pp.375-377
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2000
It is now generally accepted that a phosphoinositide cycle is involved in the transduction of a variety of signals in plant cells. In animal cells, the hydrolysis of phosphatidyl-4,5-bisphosphate catalysed by phosphatidylinositol - specific phospholipase C yields to D-myo-inositol - 1,4,5-trisphosphate and diacylglycerol, which are well known second messengers. The binding of InsP$_3$to a receptor located on the endoplasmic reticulum triggers a calcium release from the endoplasmic reticulum. We have detected and partially characterised key components of phosphoinositide signaling. First, tobacco microsomal fraction and plasma membrane PI-PLC. Consecutively, using a radioligand binding assay we have identified a $Ca^{2+}$ -dependent high affinity InsP$_3$binding site in microsomal membrane fraction vesicle preparation and then we have measured inositol-1,4,5-trisphosphate induced calcium release from tobacco microsomal fraction. These findings suggest that phosphoinositide signaling system is present and operates in the tobacco suspension culture.e.
The role of phospholipase D (PLD) in cancer development and management has been a major area of interest for researchers. The purpose of this mini-review is to explore PLD and its distinct role during chemotherapy including anti-apoptotic function. PLD is an enzyme that belongs to the phospholipase super family and is found in a broad range of organisms such as viruses, yeast, bacteria, animals, and plants. The function and activity of PLD are widely dependent on and regulated by neurotransmitters, hormones, small monomeric GTPases, and lipids. A growing body of research has shown that PLD activity is significantly increased in cancer tissues and cells, indicating that it plays a critical role in signal transduction, cell proliferation, and anti-apoptotic processes. In addition, recent studies show that PLD is a downstream transcriptional target of proteins that contribute to inflammation and carcinogenesis such as Sp1, $NF{\kappa}B$, TCF4, ATF-2, NFATc2, and EWS-Fli. Thus, compounds that inhibit expression or activity of PLD in cells can be potentially useful in reducing inflammation and sensitizing resistant cancers during chemotherapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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