Phosphoinositides are the phosphorylated derivatives of phosphatidylinositol, and play a very significant role in a diverse range of signaling processes in eukaryotic cells. A number of phosphoinositide-metabolizing enzymes, including phosphoinositide-kinases and phosphatases are involved in the synthesis and degradation of these phospholipids. Recently, the function of various phosphatases in the phosphatidylinositol signaling pathway has been of great interest. In the present review we summarize the structural insights and biochemistry of various phosphatases in regulating phosphoinositide metabolism.
Phosphoinositides are critical regulators of ion channel and transporter activity. There are multiple isomers of biologically active phosphoinositides in the plasma membrane and the different lipid species are non-randomly distributed. However, the mechanism by which cells impose selectivity and directionality on lipid movements and so generate a non-random lipid distribution remains unclear. In the present study we investigated which structural elements of phosphoinositides are responsible for their subcellular location and movement. We incubated phosphatidylinositol (PI), phosphatidylinositol 4-monophosphate (PI(4)P) and phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate ($PI(4,5)P_2$) with short or long acyl chains in CHO and HEK cells. We show that phosphate number and acyl chain length determine cellular location and translocation movement. In CHO cells, $PI(4,5)P_2$ with a long acyl chain was released into the cytosol easily because of a low partition coefficient whereas long chain PI was released more slowly because of a high partition coefficient. In HEK cells, the cellular location and translocation movement of PI were similar to those of PI in CHO cells, whereas those of $PI(4,5)P_2$ were different; some mechanism restricted the translocation movement of $PI(4,5)P_2$, and this is in good agreement with the extremely low lateral diffusion of $PI(4,5)P_2$. In contrast to the dependence on the number of phosphates of the phospholipid head group of long acyl chain analogs, short acyl chain phospholipids easily undergo translocation movement regardless of cell type and number of phosphates in the lipid headgroup.
The present study was conducted to assess the effect of total saponins from Korean red ginseng on the biosynthesis of inositol phospholipids in vivo and also effects on the metabolic enzymes, such as phosphatidylinositol-specific phospholipase C(Pl-PLC) and PI-kinases. The administration of 0.1% saponin solution, 0.1 ml 3 times a day intraperitoneally to 5 mice for 30 days has increased a 23% of the body weight when it compared with a control group. The amounts of 32P-phoschorus radioactivity incorporated into the phosphoinositides from the liver and brain tissues have increased a 310% and 260%, respectively, in the saponin treated mice. The activities of PI-PLC from liver and brain were stimulated in the various amounts by the conditions treated with saponins. The PI-kinases from liver and brain were also activated by saponins, but its effect was lower than that of PI-PLC. From these results, it was confirmed that red ginseng saponins have affected positively not only on the biosynthesis of phosphoinositides but also on the PI-PLC and PI-kinases related to the cellular signal transduction.
Activation of the T lymphocytes results in a variety of early biochemical events ultimately leading to cell proliferation and lymphokine production. Stimulation of the signal transduction cascade in T cells through the T cell receptor coincides with activation of the phosphatidylinositol-phospholipase C (PI-PLC) pathway. Therefore, we have established a model system to screen immune-simulator that can increase the hydrolysis of phosphoinositides in human T cell leukemia Jurkat cells. As a result of screening from herbal medicine extract, 4 extracts (O1ibanum, Ephedrae Herba, Real Gar, Saussureae Radix) were found 14 increase the production of inositol phosphates. All the active fraction from the four kinds of extract were fluted in a different retention time on C-18 HPLC and these active fraction also showed difference in cell specificity. And all the active fractions increased DNA synthesis in T cell. Therefore, it is suggested that the active fraction among 4 extracts might contain a compound having different properties one another.
Le, Oanh Thi Tu;Nguyen, Tu Thi Ngoc;Lee, Sang Yoon
BMB Reports
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제47권7호
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pp.361-368
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2014
Lipid components in biological membranes are essential for maintaining cellular function. Phosphoinositides, the phosphorylated derivatives of phosphatidylinositol (PI), regulate many critical cell processes involving membrane signaling, trafficking, and reorganization. Multiple metabolic pathways including phosphoinositide kinases and phosphatases and phospholipases tightly control spatio-temporal concentration of membrane phosphoinositides. Metabolizing enzymes responsible for PI 4,5-bisphosphate (PI(4,5)P2) production or degradation play a regulatory role in Toll-like receptor (TLR) signaling and trafficking. These enzymes include PI 4-phosphate 5-kinase, phosphatase and tensin homolog, PI 3-kinase, and phospholipase C. PI(4,5)P2 mediates the interaction with target cytosolic proteins to induce their membrane translocation, regulate vesicular trafficking, and serve as a precursor for other signaling lipids. TLR activation is important for the innate immune response and is implicated in diverse pathophysiological disorders. TLR signaling is controlled by specific interactions with distinct signaling and sorting adaptors. Importantly, TLR signaling machinery is differentially formed depending on a specific membrane compartment during signaling cascades. Although detailed mechanisms remain to be fully clarified, phosphoinositide metabolism is promising for a better understanding of such spatio-temporal regulation of TLR signaling and trafficking.
Synaptic vesicles (SVs) are key structures for synaptic transmission in neurons. Numerous membrane-associated proteins are sorted from the Golgi complex to the axon and the presynaptic terminal. Protein-protein and protein-lipid interactions are involved with SV targeting in neurons. Interestingly, many SV proteins have lipid binding capability, primarily with either cholesterol or phosphoinositides (PIs). As examples, the major SV protein synaptophysin can bind to cholesterol, a major lipid component in SVs, while several other SV proteins, including synaptotagmin, can bind to PIs. Thus, lipid-protein binding plays a key role for the SV targeting of synaptic proteins. In addition, numerous SV proteins can be palmitoylated. Palmitoylation is thought to be another synaptic targeting signal. Here, we briefly describe the relationship between lipid binding and SV targeting.
In this study, we have investigated the effect of panaxatriol (PT) on phosphoinositides (PIS) breakdown and $Ca^{2+}$-elevation in thrombin-induced platelet aggregation. Thrombin (5U/ml), a potent platelet agonist which activates phospholipase $C_{\beta}$ via protease activated receptor (PAR), hydrolyzed PIS in platelet membrane. The phosphatidylinositol 4, 5-bisphosphate $(PIP_2)$ was hydrolyzed after 10 sec of the thrombin-stimulation, and both the phosphatidylinositol 4-monophosphate (PIP) and phosphatidylinositol (PI) were brokendown after 30 sec of the thrombin-stimulation. However, PT inhibited the thrombin-stimulated hydrolysis of $PIP_2$, PIP, and PI. On the other hand, thrombin increased the level of phosphatidic acid (PA) which is phosphorylated from diacylglycerol (DG) generated by PIS-hydrolysis. However, Pr inhibited the thrombin-increased PA level non-significantly. Thrombin increased cytosolic free $Ca^{2+}([Ca^{2+}])_i$) up to 72% as compared with control $(30.8{\pm}0.9 nM)$ in intact platelet. However, PT (100 ${\mu}g/ml$) inhibited the thrombin-elevated $[Ca^{2+}]_i$ to 100%. These results suggest that PT may have a beneficial effect on platelet aggregation-mediated thrombotic disease by inhibiting thrombin-induced platelet aggregation via suppression of the $[Ca^{2+}]_i$ level and PIS breakdown.
Jahan, Nusrat;Park, Taeseong;Kim, Young Hwan;Lee, Dongsun;Kim, Hackyoung;Noh, Kwangmo;Kim, Young Jun
Mass Spectrometry Letters
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제4권3호
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pp.41-46
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2013
The goal of this study is to find an experimental condition which enables us to perform enzymatic studies on the cellular behavior of PTEN (phosphatase and tensine homolog) through identification of molecular species of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphates and their quantitative analysis in a mammalian cell line using mass spectrometry. We initially exployed a two-step extraction process using HCl for extraction of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphates from two mammalian cell lines and further analyzed the extracted phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphates using tandem mass spectrometry for the identification of them. We finally quantified the concentration of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphates using internal standard calibration. From these observation, we found that HEK 293-T cells is a good model to examine the enzymatic behavior of PTEN in a cell, and the minimum amount of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphates is more than 50 pmol for quantification in a mass spectrometer. These results suggest that the well-optimized experimental conditions are required for the investigation of the cellular PTEN in terms of the catalytic mechanism and further for the detailed identification of cellular substrates.
Ptdlns(4,5)$P_2$ is a key cellular phosphoinositide that localizes in separate and distinctive pools in subcellular membrane and vesicular compartments. In membranes, Ptdlns(4,5)$P_2$ acts as a precursor to second messengers and is itself a main signaling and targeting molecule. Specific subcellular localization of type I PIP kinases directed by interacting with specific targeting module differentiates Ptdlns(4,5)$P_2$ production in a spatial and temporal manner. Several lines of evidences support the idea that Ptdlns(4,5)$P_2$ is generated in very specific pools in a spatial and temporal manner or by feeding Ptdlns(4,5)$P_2$ directly to effectors. In this concept, the interaction of PIPKI isoforms with a specific targeting module to allow precise subcellular targeting modulates highly specific Ptdlns(4,5)$P_2$ synthesis and channeling overall effectors. For instance, localization of PIPKI${\gamma}$661 to focal adhesions by an interaction with talin results in spatial and temporal production of Ptdlns(4,5)$P_2$, which regulates EGF-stimulated directional cell migration. In addition, Type $I{\gamma}$ PIPK is targeted to E-cadherin in cell adherence junction and plays a role in controlling dynamics of cell adherence junction and endocytosis of E-cadherin. Characterizing how PIP kinase isoforms are regulated by interactions with their targeting modules, as well as the mechanisms by which their product, Ptdlns(4,5)$P_2$, exerts its effects on cellular signaling processes, is crucial to understand the harmonized control of numerous cellular signaling pathways. Thus, in this review the roles of the Ptdlns(4)P(5) kinases and Ptdlns(4,5)$P_2$ were described and critically reviewed in terms of regulation of the E-cadherin trafficking, cell migration, and formation of cell adherence junction which is indispensable and is tightly controlled in epithelial-to-mesenchymal transition process.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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