Cecropin A and papiliocin are novel 37-residue cecropin-like antimicrobial peptides isolated from insect. We have confirmed that papiliocin possess high bacterial cell selectivity and has an ${\alpha}$-helical structure from $Lys^3$ to $Lys^{21}$ and from $Ala^{25}$ to $Val^{35}$, linked by a hinge region. In this study, we demonstrated that both peptides showed high antimicrobial activities against multi-drug resistant Gram negative bacteria as well as fungi. Interactions between these cecropin-like peptides and phospholipid membrane were studied using CD, dye leakage experiments, and NMR experiments, showing that both peptides have strong permeabilizing activities against bacterial cell membranes and fungal membranes as well as $Trp^2$ and $Phe^5$ at the N-terminal helix play an important role in attracting cecropin-like peptides to the negatively charged bacterial cell membrane. Cecropin-like peptides can be potent peptide antibiotics against multi-drug resistant Gram negative bacteria and fungi.
Avian beta-defensin 9 (AvBD9) is a small cationic peptide consisting of 41 amino acids that plays a crucial rule in innate immunity and acquired immunity in chickens. Owing to its wide antibacterial spectrum, lack of a residue, and failure to induce bacterial drug resistance, AvBD9 is expected to become a substitute for conventional antibiotics in the livestock and poultry industries. Using the preferred codon of Pichia pastoris, the mature AvBD9 peptide was designed and synthesized, based on the sequence from GenBank. The P. pastoris constitutive expression vector pGHKα was used to construct a pGHKα-AvBD9 recombinant plasmid. Restriction enzyme digestion was performed using SacI and BglII to remove the ampicillin resistance gene, and the plasmid was electrotransformed into P. pastoris GS115. High-expression strains with G418 resistance were screened, and the culture supernatant was analyzed by Tricine-SDS-PAGE and western blot assay to identify target bands of about 6 kDa. A concentrate of the supernatant containing AvBD9 was used for determination of antimicrobial activity. The supernatant concentrate was effective against Escherichia coli, Salmonella paratyphi, Salmonella pullorum, Pseudomonas aeruginosa, Enterococcus faecalis, and Enterobacter cloacae. The fermentation product of P. pastoris carrying the recombinant AvBD9 plasmid was adjusted to 1.0 × 108 CFU/ml and added to the drinking water of white feather broilers at different concentrations. The daily average weight gain and immune organ indices in broilers older than 7 days were significantly improved by the AvBD9 treatment.
Synbiotics are a combination of probiotics and prebiotics, which lead to synergistic benefits in host welfare. Probiotics have been used as an alternative to antibiotics. Among the probiotics, Pediococcus acidilactici (PA) has shown excellent antimicrobial activity against Salmonella Gallinarum (SG) as a major poultry pathogen and has improved the production performances of animals. Inulin is widely used as a prebiotic for the improvement of animal health and growth. The main aim of this study was to investigate the antimicrobial activity of inulin nanoparticle (IN)-internalized PA encapsulated into alginate/chitosan/alginate (ACA) microcapsules (MCs) for future in vivo application. The prepared phthalyl INs (PINs) were characterized by DLS and FE-SEM. The contents of phthal groups in the PINs were estimated by $^1H-NMR$ measurement as 25.1 mol.-%. The sizes of the PINs measured by DLS were approximately 203 nm. Internalization into PA was confirmed by confocal microscopy and flow cytometry. The antimicrobial activity of PIN-internalized probiotics encapsulated into ACA MCs was measured by coculture antimicrobial assays on SG. PIN-internalized probiotics had a higher antimicrobial ability than that of ACA MCs loaded with PA/inulin or PA. Interestingly, when PINs were treated with PA and encapsulated into ACA MCs, as a natural antimicrobial peptide, pediocin was produced much more in the culture medium compared with other groups with inulin-loaded ACA MCs and PA encapsulated into ACA MCs.
The biosynthesis study of antibiotics saframycin (SFM) in Streptomyces lavendulae and safracin (SAC) in Pseudomonas fluorescens demonstrated that 3-hydroxy-S-methyl-O-methyltyrosine (3hSmOmTyr), a nonproteinogenic amino acid, is the precursor of the tetrahydroisoquinoline molecular core. In the biosynthetic gene cluster of SAC/SFM, sacD/sfmD encodes a protein with high homology to each other but no sequence similarity to other known enzymes; sacF/sfmM2 and sacG/sfmM3 encode methyltransferases for C-methylation and O-methylation; and sacE/sfinF encodes a small protein with significant sequence similarity to the MbtH-like proteins, which are frequently found in the biosynthetic pathways of non ribosomal peptide antibiotics and siderophores. To address their function, the biosynthetic cassette of 3h5mOmTyr was heterologously expressed in S. coelicolor and P. putida, and an in-frame deletion and complementation in trans were carried out. The results revealed that (i) SfmD catalyzes the hydroxylation of aromatic rings; (ii) sacD/sacF/sacG in the SAC gene cluster and sfmD/sfmM2/sfmM3 in the SFM cluster are sufficient for the biosynthesis of 3h5mOmTyr; and (iii) the mbtH-like gene is not required for the biosynthesis of the 3h5mOmTyr precursor.
Most problematic antibiotic resistance mechanism for MLS (macrolide-lincosamide-streptogramn B) antibiotics encountered in clinical practice is mono- or dimethylation of specific adenine residue at 2058 (E. coli coordinate) of 23S rRNA which is performed by Erm (erythromycin ribosome resistance) protein through which bacterial ribosomes reduce the affinity to the antibiotics and become resistant to them. ErmSF is one of the four gene products produced by Streptomyces fradiae to be resistant to its own antibiotic, tylosin. Unlike other Erm proteins, ErmSF harbors idiosyncratic long N-terminal end region (NTER) 25% of which is comprised of arginine well known to interact with RNA. Furthermore, NTER was found to be important because when it was truncated, most of the enzyme activity was lost. Based on these facts, capability of NTER peptide to inhibit the enzymatic activity of ErmSF was sought. For this, expression system for two different proteins to be expressed in one cell was developed. In this system, two plasmids, pET23b and pACYC184 have unique replication origins to be compatible with each other in a cell. And expression system harboring promoter, ribosome binding site and transcription termination signal is identical but disparate amount of protein could be expressed according to the copy number of each vector, 15 for pACYC and 40 for pET23b. Expression of NTER peptide in pET23b together with ErmSF in pACYC 184 in E. coli successfully gave more amounts of NTER than ErmSF but no inhibitory effects were observed suggesting that there should be dynamicity in interaction between ErmSF and rRNA rather than simple and fixed binding to each other in methylation of 23S rRNA by ErmSF.
The bacterial strain that was isolated from chinese cabbage rhizosphere, showed inhibition of yeast growth. This strain was identified as Pseudomonas fluorescens BB2 by API 20NE test and 16S rRNA gene sequence analysis. P. fluorescens BB2 strain produced antibiotics against yeast as a secondary metabolite effectively when the culture was carried out in YM medium with 3% glucose at $20^{\circ}C$. The protein antibiotic of BB2 strain which was concentrated by ammonium sulfate precipitation and n-butanol extraction inhibited the growth of yeast with the minimal inhibitory concentration of $10{\mu}g/ml$ against Candida albicans KCTC 7965, and the growth of yeast was completely inhibited at $80{\mu}g/ml$. The hydrophilic fraction of n-butanol extraction inhibited the growth of Bacillus cereus ATCC 21366, showed orange halo on chrome azurol S plate, which means the fraction contained iron chelating siderophore. The results of crystal violet uptake through the cell membrane showed that membrane permeability was increased about 9% than control, when the concentration of hydrophobic antibiotic against yeast C. albicans was $60{\mu}g/ml$. As a result, the antibiotic produced by P. fluorescens BB2 against yeast Candida is considered antimicrobial peptide, and this is the first report in the genus Pseudomonas.
This review summarizes some recent research into ways of improving the productivity of ruminal fermentation by increasing protein flow from the rumen and decreasing the breakdown of protein that results from the action of ruminal microorganisms. Proteinases derived from the plant seem to be of importance to the overall process of proteolysis in grazing animals. Thus, altering the expression of proteinases in grasses may be a way of improving their nutritive value for ruminants. Inhibiting rumen microbial activity in ammonia formation remains an important objective: new ways of inhibiting peptide and amino acid breakdown are described. Rumen protozoa cause much of the bacterial protein turnover which occurs in the rumen. The major impact of defaunation on N recycling in the sheep rumen is described. Alternatively, if the efficiency of microbial protein synthesis can be increased by judicious addition of certain individual amino acids, protein flow from ruminal fermentation may be increased. Proline may be a key amino acid for non-cellulolytic bacteria, while phenylalanine is important for cellulolytic species. Inhibiting rumen wall tissue breakdown appears to be an important mechanism by which the antibiotic, flavomycin, improves N retention in ruminants. A role for Fusobacterium necrophorum seems likely, and alternative methods for its regulation are required, since growth-promoting antibiotics will soon be banned in many countries.
Recently, marine organisms are emerging as a leading group for identifying and extracting novel bioactive substances. These substances are known to possess a potential regarding not only as a source of pharmaceutical products but also their beneficial effects on humans. Among the substances, antimicrobial peptides (AMPs) specifically have attracted considerable interest for possible use in the development of new antibiotics. AMPs are characterized by relatively short cationic peptides containing the ability to adopt a structure in which cationic or hydrophobic amino acids are spatially scattered. Although a few reports address novel marine organisms-derived AMPs, their antimicrobial mechanism(s) are still remain unknown. In this review, we summarized the peptides previously investigated, such as Pleurocidin, Urechistachykinins, Piscidins and Arenicin-1. These peptides exhibited significant antimicrobial activities against human microbial pathogens without remarkable hemolytic effects against human erythrocytes, and their mode of actions are based on permeabilization of the plasma membrane of the pathogen. Therefore, the study of antimicrobial peptides derived from marine organisms may prove to be useful in the design of future therapeutic antimicrobial drugs.
Soil is the major source of plant-associated microbes. Several fungal and bacterial species live within plant tissues. Actinomycetes are well known for producing a variety of antibiotics, and they contribute to improving plant health. In our previous report, Streptomyces globisporus SP6C4 colonized plant tissues and was able to move to other tissues from the initially colonized ones. This strain has excellent antifungal and antibacterial activities and provides a suppressive effect upon various plant diseases. Here, we report the genome-wide analysis of antibiotic producing genes in S. globisporus SP6C4. A total of 15 secondary metabolite biosynthetic gene clusters were predicted using antiSMASH. We used the CRISPR/Cas9 mutagenesis system, and each biosynthetic gene was predicted via protein basic local alignment search tool (BLAST) and rapid annotation using subsystems technology (RAST) server. Three gene clusters were shown to exhibit antifungal or antibacterial activity, viz. cluster 16 (lasso peptide), cluster 17 (thiopeptide-lantipeptide), and cluster 20 (lantipeptide). The results of the current study showed that SP6C4 has a variety of antimicrobial activities, and this strain is beneficial in agriculture.
Plant Chloroplast have several advantages as an expression platform of biopharmaceuticals over conventional expression platforms such as mammalian cells, yeast and bacteria. First, plants do not serve as a host for mammalian infectious virus and have endotoxin like bacteria which can cause anaphylactic shock. In addition, high copy number of chloroplast genome allows for chloroplast transformants to reach the high level of expression of heterologous genes. Moreover, the integration of transgenes into specific region of chloroplast genomes makes chloroplast transformants unaffected by positional effect which can be frequently observed from nuclear transformants, resulting in loss of transgene expressions. Antimicrobial peptides (AMPs) are a kind of innate immunity which is found from bacteria to humans. Unlike conventional antibiotics, very less dosage of AMPs can have catastrophic effect on bacterial survival. Further, the repeated use of AMPs does not trigger the development of bacterial resistance. Moricin, one of the AMPs, was isolated from Bombyx mori, a silkworm moth. The C-terminal of moricin consists largely of basic amino acids, and the N-terminal has an α-helix structure. Moricin was chosen and expressed in a SUMO/SUMOase without leaving any unwanted amino acids which could potentially affect the anti-bacterial activity of the moricin. The transformation vector used in this study has already been created in this lab for the expression in both prokaryotic systems such as E. coli and chloroplast. The expressed moricin was purified using Ni columns and SUMOase, and the antibacterial activity of the purified moricin was confirmed using an agar diffusion assay.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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