Reliable discrimination of a single nucleotide mismatch was demonstrated using arrays with peptide nucleic acid (PNA) probes. The newly developed PNA probes immobilization method and hybridization conditions for PNA arrays gave excellent specificity and sensitivity. In addition we compared the specificity, sensitivity, and stability obtained with the PNA and DNA arrays in discriminating single nucleotide mismatches. The PNA arrays had superior perfect match-to-mismatch signal ratios and sensitivities. The relative signal intensities of mismatch PNA probes ranged from 1.6% to 12.1% of the perfect-match PNA probes. These results demonstrated that the PNA arrays were 2.0 to 37.3 times more specific and about 10 times more sensitive than DNA arrays. The PNA array showed the same specificity and sensitivity after 12-month storage at room temperature.
Unlike RNA interference, whose usage is limited to eukaryotic cells, Peptide Nucleic Acid (PNA) technique is applicable to both eukaryotic and prokaryotic cells. PNA has been proven to be an effective agent for blocking gene expressions and has several advantages over other antisense techniques. Here we developed a parallel computing software that provides the ideal sequences to design PNA oligos to prevent any off-target effects. We applied a new approach in our location-finding algorithm that finds a target gene from the whole genome sequence. Message Passing Interface (MPI) was used to perform parallel computing in order to reduce the calculation time. The software will help biologists design more accurate and effective antisense PNA by minimizing the chance of off-target effects.
PCR amplification with universal primer is a useful tool for speciation of symbionts in marine eukaryote coupled with robust separation method such as denaturing high performance chromatography (DHPLC). To overcome the biased amplification, clamping PCR is recommended to suppress the amplification of host gene. In this study, we evaluated the efficiency of rare gene detection for two kinds of clamping probes which were successfully utilized for eukaryotic symbiont analysis: C3 linked nucleotide (C3) and peptide nucleic acid (PNA). PNA was 3-4 orders of magnitude higher than that of C3 tested in clamping efficiency and rare gene detection. This represented that PNA could be a more competent clamping probe for the enhancement of PCR amplification for rare symbiont genes.
This study was carried out to identify Korean ginseng cultivars using peptide nucleic acid (PNA) microarray. Sixty-seven probes were designed based on nucleotide variation to distinguish Korean ginseng cultivars of Panax ginseng. Among those PNA probes, three (PGB74, PGB110 and PGB130) have been developed to distinguish five Korean ginseng cultivars. Five Korean ginseng cultivars were denoted as barcode numbers depending on their fluorescent signal patterns of each cultivar using three probe sets in the PNA microarray. Five Korean ginseng cultivars, Chunpoong, Yunpoong, Gopoong, Gumpoong and Sunpoong, were simply denoted as '111', '222', '211', '221' and '122', respectively. This is the first report of PNA microarray which provided an objective and reliable method for the authentication of Korean ginseng cultivars. Also, the PNA microarray will be useful for management system and pure guarantee in ginseng seed.
비브리오 콜레라는 수산물과 선박평형수 내에서 모니터링되고 있는 중요 병원성 박테리아이다. 이를 검출하기 위한 여러 방법들이 개발되어 왔으나, 시간 소모가 크고 민감도에서 한계가 있었다. 본 연구는 비브리오 콜레라를 보다 정확하게 검출하기 위한 방법을 개발하는 목적으로 수행하였다. PNA 기반 비대칭 real-time PCR 기술에 적용하기 위하여 펩티드 핵산(Peptide nucleic acid, PNA) 프로브를 개발하였다. 독성 유전자인 Cholera enterotoxin subunit B (ctxB)를 비브리오 콜레라 검출을 위한 타겟 유전자로 선정하고, conventional PCR과 real-time PCR을 위한 positive template를 합성하였다. Real-time PCR 프라이머와 PNA 프로브를 디자인하여, 정량 분석을 위한 표준곡선 실험을 수행하였다. 선택된 PNA 프로브는 비브리오 콜레라에 특이적으로 반응하였으며, 검출한계는 0.1 cfu/100 mL이었다. 종합해 보면, 본 연구에서 개발된 PNA 프로브와 비대칭 real-time PCR 방법은 수산물과 선박평형수 뿐만 아니라 해양환경에 있는 비브리오 콜레라를 신속하고 정확하게 모니터링할 수 있는 기술로 판단된다.
Suh, Soo Hwan;Yun, Han Seong;Lee, Sang-Eun;Kwak, Hyo-Sun
한국미생물·생명공학회지
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제47권4호
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pp.645-650
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2019
Despite differences in virulence between strains of Toxoplasma gondii, rapid and accurate genotyping methods are lacking. In this study, a method was developed to detect and genotype T. gondii in food and environmental samples using PCR and a novel peptide nucleic acid (PNA) melting array. An alignment of genome sequences for T. gondii type I, II, and III obtained from NCBI was generated, and a single nucleotide polymorphism analysis was performed to identify targets for PCR amplification and a PNA melting array. Prior to the PNA melting array, conventional PCR was used to amplify GRA6 of T. gondii. After amplification, the PNA melting array was performed using two different PNA hybridization probes with fluorescent labels (FAM and HEX) and quenchers. Melting curves for each probe were used to determine genotypes and identify mutations. A 214-bp region of the GRA6 gene of T. gondii was successfully amplified by PCR. For all T. gondii strains (type I, II, and III) used to evaluate specificity, the correct genotypes were determined by the PNA melting array. Non-T. gondii strains, including 14 foodborne pathogens and 3 protozoan parasites, such as Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum, and Entamoeba histolytica, showed no signal, suggesting that the assay has a high specificity. Although this is only a proof-of-concept study, the assay is promising for the fast and reliable genotyping of T. gondii from food and environmental samples.
Kim, Hyoseon;Lee, Kwang Hyun;Kim, Kyung Bo;Park, Yong Serk;Kim, Keun-Sik;Kim, Dong-Eun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제34권3호
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pp.735-742
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2013
Peptide nucleic acids (PNAs) that bind to complementary nucleic acid sequences with extraordinarily high affinity and sequence specificity can be used as antisense oligonucleotides against microRNAs, namely antagomir PNAs. However, methods for efficient cellular delivery must be developed for effective use of PNAs as therapeutic agents. Here, we demonstrate that antagomir PNAs can be delivered to hepatic cells by complementary DNA oligonucleotide and cationic liposomes containing galactosylated ceramide and a novel cationic lipid, DMKE (O,O'-dimyristyl-N-lysyl glutamate), through glycoprotein-mediated endocytosis. An antagomir PNA was designed to target miR-122, which is required for translation of the hepatitis C virus (HCV) genome in hepatocytes, and was hybridized to a DNA oligonucleotide for complexation with cationic liposome. The PNA-DNA hybrid molecules were efficiently internalized into hepatic cells by complexing with the galactosylated cationic liposome in vitro. Galactosylation of liposome significantly enhanced both lipoplex cell binding and PNA delivery to the hepatic cells. After 4-h incubation with galactosylated lipoplexes, PNAs were efficiently delivered into hepatic cells and HCV genome translation was suppressed more than 70% through sequestration of miR-122 in cytoplasm. PNAs were readily released from the PNA-DNA hybrid in the low pH environment of the endosome. The present study indicates that transfection of PNA-DNA hybrid molecules using galactosylated cationic liposomes can be used as an efficient non-viral carrier for antagomir PNAs targeted to hepatocytes.
Jung, Da Hyun;Kim, Jie-Hyun;Jeong, Su Jin;Park, Soon Young;Kang, Il-Mo;Lee, Kyoung Hwa;Song, Young Goo
Gut and Liver
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제12권6호
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pp.641-647
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2018
Background/Aims: Helicobacter pylori eradication rates are decreasing because of increases in clarithromycin resistance. Thus, finding an easy and accurate method of detecting clarithromycin resistance is important. Methods: We evaluated 70 H. pylori isolates from Korean patients. Dual-labeled peptide nucleic acid (PNA) probes were designed to detect resistance associated with point mutations in 23S ribosomal ribonucleic acid gene domain V (A2142G, A2143G, and T2182C). Data were analyzed by probe-based fluorescence melting curve analysis based on probe-target dissociation temperatures and compared with Sanger sequencing. Results: Among 70 H. pylori isolates, 0, 16, and 58 isolates contained A2142G, A2143G, and T2182C mutations, respectively. PNA probe-based analysis exhibited 100.0% positive predictive values for A2142G and A2143G and a 98.3% positive predictive value for T2182C. PNA probe-based analysis results correlated with 98.6% of Sanger sequencing results (${\kappa}$-value=0.990; standard error, 0.010). Conclusions: H. pylori clarithromycin resistance can be easily and accurately assessed by dual-labeled PNA probe-based melting curve analysis if probes are used based on the appropriate resistance-related mutations. This method is fast, simple, accurate, and adaptable for clinical samples. It may help clinicians choose a precise eradication regimen.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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