Tween 80 (Polysorbate 80) is a hydrophilic nonionic surfactant commonly used as an ingredient in dosing vehicles for pre-clinical in vivo studies (e.g., pharmacokinetic studies, etc.). Tween 80 increased apical to basolateral permeability of digoxin in Caco-2 cells suggesting that Tween 80 is an in vitro inhibitor of P-gp. The overall objective of the present study was to investigate whether an inhibition of P-gp by Tween 80 can potentially influence in vivo absorption of P-gp substrates by evaluating the effect of Tween 80 on the disposition of digoxin (a model P-gp substrate with minimum metabolism) after oral administration in rats. Rats were dosed orally with digoxin (0.2 mg/kg) formulated in ethanol (40%, v/v) and saline mixture with and without Tween 80 (1 or 10%, v/v). Digoxin oral AUC increased 30 and 61% when dosed in 1 % and 10% Tween 80, respectively, compared to control (P<0.05). To further examine whether the increase in digoxin AUC after oral administration of Tween 80 is due, in part, to a systemic inhibition of digoxin excretion in addition to an inhibition of P-gp in the GI tract, a separate group of rats received digoxin intravenously (0.2 mg/kg) and Tween 80 (10% v/v) orally. No significant changes in digoxin IV AUC was noted when Tween 80 was administered orally. In conclusion, Tween 80 significantly increased digoxin AUC and Cmax after oral administration, and the increased AUC is likely to be due to an inhibition of P-gp in the gut (i.e., improved absorption). Therefore, Tween 80 is likely to improve systemic exposure of P-gp substrates after oral administration. Comparing AUC after oral administration with and without Tween 80 may be a viable strategy in evaluating whether oral absorption of P-gp substrates is potentially limited by P-gp in the gut.
Kim, Yeon-Jo;Kim, Ji-Eun;Choi, Hui-Chul;Song, Hong-Ki;Kang, Tae-Cheon
BMB Reports
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v.48
no.6
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pp.348-353
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2015
In the present study, we investigated the characteristics of drug efflux transporter expressions following status epilepticus (SE). In the hippocampus and piriform cortex (PC), vasogenic edema peaked 3-4 days after SE. The expression of breast cancer resistance protein (BCRP), multidrug resistance protein-4 (MRP4), and p-glycoprotein (p-GP) were decreased 4 days after SE when vasogenic edema was peaked, but subsequently increased 4 weeks after SE. Multidrug resistance protein-1 (MRP1) expression gradually decreased in endothelial cells until 4 weeks after SE. These findings indicate that SE-induced vasogenic edema formation transiently reduced drug efflux pump expressions in endothelial cells. Subsequently, during recovery of vasogenic edema drug efflux pump expressions were differentially upregulated in astrocytes, neuropils, and endothelial cells. Therefore, we suggest that vasogenic edema formation may be a risk factor in pharmacoresistent epilepsy. [BMB Reports 2015; 48(6): 348-353]
The purpose of this study was to investigate the effect of naringenin, one of flavonoids, on the pharmacokinetics and bioavailability of diltiazem (15 mg/kg) after oral administration of diltiazem with or without naringenin (2.0, 10 and 20 mg/kg) in rabbits. Coadministration of naringenin increased the absorption rate constant $(K_a)$, the area under the plasma concentration-time curve (AUC) and peak concentration $(C_{max})$ of diltiazem compared to the control group, but only significantly (p<0.05) by 10mg/kg of naringenin coadministration. The absolute bioavailability (AB%) of diltiazem by coadministration ranges from 7.8% to 10.3%, increased more than control (7.2%), and relative bioavailability (RB%) of diltiazem is increased from 1.08- to 1.43-fold. Coadministration caused on significant changes in the terminal half-lives $(t_{1/2})$ and the time to reach the peak concentration $(T_{max})$ of diltiazem. On the other hand, coadministration of naringenin increased the AUC desacetyldiltiazem, significantly at the dose of 10mg/kg. But the metabolite ratio (MR) was decreased, significantly at 10mg/kg of naringenin. Based on these results, we can make a conclusion that the increased bioavailability and the significant changes of these pharmacokinetic parameters might be due to naringenin, which possess the potency to inhibit the metabolizing enzyme (CYP3A4) in the liver and intestinal mucosa, and also inhibit the P-glycoprotein efflux pump in the intestinal mucosa.
The alkaline invertase ($\beta$-D-fructofuranoside fructohydrolase, EC 3.2.1.26) was isolated and characterized from the hypocotyls of mung bean (Phaseolus radiatus L.). The enzyme was purified by consecutive step using diethylaminoethyl (DEAE)-cellulose anion exchange, 1st Sephadex G-200, DEAE-Sephadex A50 and 2nd Sephadex G-200 chromatography. The overall purification was about 77-fold with a yield of about 6%. The finally purified enzyme exhibited a specific activity of about 48 $\mu$mol of glucose produced mg-1 protein min-1 at pH 7.0 and appeared to be a single protein by nondenaturing polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE). The enzyme had the native molecular weight of 450 kD and subunits molecular weight of 63 kD and 38 kD as estimated by Sephadex G-200 chromatography and SDS-PAGE, respectively, suggesting that the enzyme is a heteromultimeric protein composed of two types of subunits. On the other hand, the enzyme appeared to be not a glycoprotein according to the results of Con A chromatography and glycoprotein staining. The enzyme had a Km for sucrose of 19.7 mM at pH 7.0 and maximum activity around pH 7.5. The enzyme was most active with sucrose as substrate, compared to raffinose, cellobiose, maltose and lactose. These results indicate the alkaline invertase is a $\beta$-fructofuranosidase.
Most patients with mutant B-Raf melanomas respond to inhibitors of oncogenic B-Raf but resistance eventually emerges. To better understand the mechanisms that determine the long-term responses of mutant B-Raf melanoma cells to B-Raf inhibitor, we used chronic selection to establish B-Raf (V600E) melanoma clones with acquired resistance to the new oncogenic B-Raf inhibitor UI-152. Whereas the parental A375P cells were highly sensitive to UI-152 ($IC_{50}$ < $0.5{\mu}M$), the resistant sub-line (A375P/Mdr) displayed strong resistance to UI-152 ($IC_{50}$ < $20{\mu}M$). Immunofluorescence analysis indicated the absence of an increase in the levels of P-glycoprotein multidrug resistance (MDR) transporter in A375P/Mdr cells, suggesting that resistance was not attributable to P-glycoprotein overexpression. In UI-152-sensitive A375P cells, the anti-proliferative activity of UI-152 appeared to be due to cell-cycle arrest at $G_0/G_1$ with the induction of apoptosis. However, we found that A375P/Mdr cells were resistant to the apoptosis induced by UI-152. Interestingly, UI-152 preferentially induced autophagy in A375P/Mdr cells but not in A375P cells, as determined by GFP-LC3 puncta/cell counts. Further, autophagy inhibition with 3-methyladenine (3-MA) partially augmented growth inhibition of A375P/Mdr cells by UI-152, which implies that a high level of autophagy may protect UI-152-treated cells from undergoing growth inhibition. Together, our data implicate high rates of autophagy as a key mechanism of acquired resistance to the oncogenic B-Raf inhibitor, in support of clinical studies in which combination therapy with autophagy targeted drugs is being designed to overcome resistance.
Kim, Seon-Hwa;Jung, Seo-Jeong;Um, So-Young;Na, Mi-Ae;Choi, Min-Jin;Chung, Myeon-Woo;Oh, Hye-Young
Biomolecules & Therapeutics
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v.15
no.2
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pp.102-107
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2007
Cimetidine, a substrate for P-glycoprotein (P-gp), is a well known drug interacting with a variety of drugs and results in alteration of pharmacokinetic parameters by concomitant administration. The aim of present study was to investigate whether cimetidine affects the transport of various quinolone antibiotics in human colorectal cancer cell line (Caco-2) system which has been typically used to investigate drug transport via P-gp. The apparent permeability coefficients (P$_{app}$) value of 9 quinolone antibiotics in the co-treatment with cimetidine was examined. Apical to basolateral (AP-to-BL) transport of fleroxacin in the co-treatment with cimetidine was increased to 1.5-fold (p<0.01) compared with that of fleroxacin alone, whereas basolateral to apical (BL-to-AP) transport of fleroxacin was decreased to 0.83-fold significantly (p<0.05). Ofloxacin was decreased to 0.8-fold (p<0.01) and 0.72-fold (p<0.01) significantly in AP-to-BL and BL-to-AP direction, respectively by cimetidine cotreatment. The P$_{app}$ values of gatifloxacin, moxifloxacin, ciprofloxacin and rufloxacin also were changed by cimetidine. These results have a potential that cimetidine influences on the pharmacokinetics of quinolone antibiotics. It suggests that careful drug monitoring and dosage adjustment may be necessary during the co-administration of quinolone antibiotics with cimetidine.
Anaplasma phagocytophilum major surface protein-2 (Msp2 or p44) is the immunodominant outer membrane protein of the bacterium. Recently, we disclosed that Msp2 was an A. phagocytophilum adhesin for binding to host neutrophils and HL-60 cells, probably mediated by attachment to platelet selectin glycoprotein ligand-1 (PSGL-1). In this study, we further elucidated that Msp2 bound to PSGL-1/FucT IV-transfected BJAB but not nontransfected BJAB cells. Binding of recombinant Msp2 or cell (lee bacteria to the surface of PSGL-1/FucT IV-transfected BJAB cells was significantly higher than to nontransfected BJAB cells (p<0.01 and p<0.01). Also, Msp2 monoclonal antibody and soluble recombinant Msp2 as antagonist led to concentration-dependent reductions in A. phagocytophilum adhesln (p<0.05 and p<0.01) to transfected BJAB cells. Thus, we conclude that Msp2 of. A. phagocytophilum acts as an adhesin by which the bacterium binds to PSGL-1 on host neutrophils and myeloid cells.
Killer toxin from killer yeast fusant FWKS 260 developed by protoplast fusion between the wild killer yeast and alcohol-fermenting yeast was purified by ammonium sulfate fractionation. Amicon PM I0 concentration. Sephadex G-200 and Scphadcx G-75 column chromatography. The purified killer toxin showed a single band by SIX-polyacvlamide gel electrophoresis. The protein part of killer toxin was active site. which was found by treating the proteolytic enzyme such as pronase E and pepsin to killer toxin. The killer toxin was stable at pH 2.0-5.0 and 20$^{\circ}$C. but inactivated with increasing temperature. The molecular weight was determined to be approximately 13.000 according to the results obtained from the SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. It was confirmed that the purified killer toxin is glycoprotein by showing a red single band after st'tining with Schiffs reagent.
The purposes of this study were to clarify the involvement of P-glycoprotein (P-gp) in the efflux of levosulpiride in knockout mice that lack the mdr1a1b gene and to evaluate the relationship between the genetic polymorphisms in MDR1 gene (exon 21) and levosulpiride disposition in healthy Korean subjects. After oral administration ($10\;{\mu}g/g$) of levosulpiride to mdr1a/1b(-/-) and wild-type mice, plasma and brain samples were obtained at 45 min. We also investigated the genotype for MDR1 (exon 21) gene in humans using a polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) method. A single oral dose of 25 mg levosulpiride was administered to 58 healthy subjects, who were based on the MDR1 genotype for the G2677T SNP. Blood samples were taken up to 36 hr after dosing. The concentrations of levosulpiride in mouse plasma and brain were statistically significant difference between the two animal groups (P<0.05). In addition, the average brain-to-plasma concentration ratio (Kp) of levosulpiride was 3.4-fold (P<0.01) higher in the mdr1a/1b(-/-) mice compared with the wild-type mice. We also found that the values of $AUC_{0-{\infty}$, partial AUC ($AUC_{0-4h}$) and $C_{max}$ were significantly different between homozygous 2677TT subjects and the subjects with at least one wild-type allele (GG and GT subjects, P=0.012 for $AUC_{0-{\infty}$; P=0.008 for $AUC_{0-4h}$; P=0.038 for $C_{max}$). The results confirm that levosulpiride is a P-gp substrate in vivo, and clearly demonstrate the effect of SNP 2677G>T in exon 21 of the MDR1 gene on levosulpiride disposition.
The pharmacokinetics of nifedipine was studied after oral coadministration of nifedipine (5 mg/kg) with quercetin (1.5, 7.5, 15 and 30 mg/kg, respectively) and 0.5 h or 3days pretreatment with quercetin (1.5 and 7.5mg/kg) in rabbits. Pretreatment of quercetin significantly (p<0.05, at 0.5 h; p<0.01, at 3 days) increased the plasma concentration of nifedipine, but not significant in coadministraiton. The area under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentration $(C_{max})$ of nifedipine pretreated with quercetin were increased significantly (p<0.05, at 0.5 h; p<0.01, at 3 days) compared to the control. By coadministration of quercetin, only 7.5 mg/kg of quercetin increased plasma AUC and $C_{max}$ of nifedipine significantly (p<0.05) compared to the control. Plasma AUC of intravenous nifedipine (1 mg/kg) is $4235\;{\pm}\;1192\;ng/ml{\cdot}hr$. Pretreatment of quercetin significantly (p<0.05, at 0.5 h; p<0.01, at 3 days) increased the absolute bioavailability (AB%) of nifedipine to 23.9-29.2% compared to the control (17.8%). Coadministration of quercetin showed no significant effect on the AB% of nifedipine except for 7.5 mg/kg. It is suggested that quercetin alters disposition of nifedipine by inhibition of P-glycoprotein efflux pump and its first-pass metabolism. The dosage of nifedipine should be adjusted when it is administered chronically with quercetin in a clinical situation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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