Pan-Enterovirus (Pan-EV) infects millions of children and infants worldwide every year. As severe infections have recently been reported, the need for monitoring has consequently intensified. Pan-EV is a categorical name for waterborne enteroviruses belonging to the Picornaviridae family, and includes a wide range of pathogens including Coxsackievirus (CoxV), Echovirus (EcoV) and Enterovirus (EV). In this study, we proposed an optimal RT-nested PCR method for diagnosis of various types of Pan-EV in an aquatic environment and developed a positive control. Considering detection sensitivity, specific reaction, and final identification, one condition capable of amplifying 478 bp among the four candidates in the 1st round PCR (RT-PCR) and one condition in the 2nd round PCR (nested PCR) were selected. Through the detection of nucleic acids extracted from 123 groundwater samples and the detection sensitivity test based on artificial spiking in the sample, the methods are optimal for non-disinfected water samples such as groundwater. We developed a positive control for Pan-EV detection that can be amplified to different sizes under the two conditions. Accuracy could be further improved by testing for contamination from the control group. The method proposed in this study and the positive control developed are expected to be used in monitoring Pan-EV in aquatic environments including groundwater through future research using more samples.
An, Ji-Hye;Noh, Young-Hee;Kim, Yong-Eon;Lee, Hyok-In;Cha, Jae-Soon
The Plant Pathology Journal
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제31권1호
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pp.25-32
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2015
Pseudomonas coronafaciens causes halo blight on oats and is a plant quarantine bacterium in many countries, including the Republic of Korea. Using of the certificated seed is important for control of the disease. Since effective detection method of P. coronafaciens is not available yet, PCR and TaqMan PCR assays for specific detection of P. coronafaciens were developed in this study. PCR primers were designed from the draft genome sequence of P. coronafaciens LMG 5060 which was obtained by the next-generation sequencing in this study. The PCR primer set Pc-12-F/Pc-12-R specifically amplified 498 bp from the 13 strains of P. coronafaciens isolated in the seven different countries (Canada, Japan, United Kingdom, Zimbabwe, Kenya, Germany, and New Zealand) and the nested primer set Pc-12-ne-F/Pc-12-ne-R specifically amplified 298 bp from those strains. The target-size PCR product was not amplified from the non-target bacteria with the PCR and nested primer sets. TaqMan PCR with Pc-12-ne-F/Pc-12-ne-R and a TaqMan probe, Pc-taqman, which were designed inside of the nested PCR amplicon, generated Ct values which in a dose-dependent manner to the amount of the target DNA and the Ct values of all the P. coronafaciens strains were above the threshold Ct value for positive detection. The TaqMan PCR generated positive Ct values from the seed extracts of the artificially inoculated oat seeds above 10 cfu/ml inoculation level. PCR and TaqMan PCR assays developed in this study will be useful tools to detect and identify the plant quarantine pathogen, P. coronafaciens.
The purpose of this study was to apply a nested-polymerase chain reaction (nPCR) assay to detect and differentiate PCV 2a and PCV 2b. The compared with nPCR and one-step PCR and nPCR showed more sensitive in the detection of PCV-2 from tissue and blood samples. The total of 52 tissue samples was collected from postweanning pigs from 2006 to 2010. All tissue samples showed positive for PCV-2 in one-step PCR and nPCR, followed by the nPCR in order to identify the genotypes of PCV-2. 2 samples (3.8%) showed positive for PCV 2a, and 35 samples were positive for PCV 2b (67.3%), 15 samples (28.9%) were positive the dual genotypes. In addition, 42 blood samples which were collected from the 5 different swine farms were compared figure out the detection rates of nPCR and one-step PCR. The PCV 2 was positive by one-step PCR in 21 samples (50.0%) and nPCR was positive in 37 samples (88.1%). The PCV 2 genotypes in blood samples and 32 samples (76.2%) were positive for PCV 2b and none were positive for PCV 2a, 5 samples (11.9%) were positive for dual genotypes. These results suggest that the nPCR is very efficient for genotyping blood samples and differentiating the genotypes of PCV-2 from field samples.
본 연구에서는 RT-nested PCR을 수행하여 부산 도심의 하천 중 동천에 존재하는 노로바이러스를 검출하고자 하였다. 기존에 보고되어진 노로바이러스의 capsid protein의 염기서열을 비교하여 노로바이러스 genogroup I,II (GI,II) 를 검출하기 위한 새로운 degenerated primer sets (PNK, KGIF/KGIR and KG2F/KG2R) 를 제작하였으며, 채수한 동천 시료를 초고속원심분리기를 통해 농축 후 물 속에 존재하는 노로바이러스의 검출을 시도하였다. 노로바이러스를 검출하기 위해 PCR primer를 비교한 결과 본 연구에서 제작한 capsid protein gene을 target으로 하는 primer set가 기존에 보고되어 있는 primer set보다 동일 시료에 대한 검출빈도가 우수하였다. 동천에 존재하는 노로바이러스의 오염 수준은 GI과 GII가 각각 76.47% (13/17), 70.59% (12/17) 로 나타났다. 그러나 기존에 알려진 primer와 본 연구에서 제작한 primer를 사용하였을 때 검출된 양성비율이 차이가 나지 않았다. 검출된 노로바이러스를 염기서열 비교를 통한 계통 발생학적 분석 결과, 동천에서 검출된 GI의 경우 1/2/4/5/9/10의 genotype이 GII의 경우 3/4/5/11/13의 genotype으로 분류되었다. 그리고 본 연구에서 검출된 major type 중 GII/4의 경우, 최근 아시아 각국에서 많은 문제를 일으키고 있는 major genotype으로 알려져 노로바이러스에 대한 위험성을 제고하게 하였다. 또한, 이러한 결과는 국내의 강, 호수, 하천 등이 비슷한 노로바이러스의 GI,II의 genotype으로 오염되어 있음을 암시하며 수계환경 중 미생물의 질을 개선하기 위한 지속적인 노로바이러스의 모니터링이 요구된다.
Listeria monocytogenes의 식품 속에서 신속하고 특이적인 검출을 위하여, listeriolysin O gene에 의한 primer, LM 1과 LM 2를 선택하여 PCR을 수행하였다. L. monocytogenes의 DNA 추출이나 cell lysis 없이 intact whole cell을 직접 이용하여 PCR을 하였으며 $10^{2-6}$ CFU 수준의 균체 배양액으로부터 L. monocytogenes에 특이적인 702 bp의 PCR 증폭 산물을 확인하였다. 우유, 닭고기, 김치 등의 식품에 L. monocytogenes를 접종하여 증균배양 전후 균의 PCR에 대한 감도와 생균수를 비교한 결과, 실험된 식품 속에서의 L. monocytogenes의 검출 감도는 순수 배양액에서의 경우에 비해 약 1/10로 둔화되었으나 역시 특이적인 검출이 가능하였다. Primer LM 1과 2를 이용한 본 실험조건에서의 L. monocytogenes의 PCR에 의한 검출은 약 4시간으로 확인이 가능하였으며, 기존의 배양 방법에 비해, 특이성이나 검출 속도 면에서 식품위생 실무에 적용하기 위한 높은 잠재력을 보여 주었다.
Koh, Hyun Seok;Sohn, San Ho;Lee, Young Sun;Koh, Young Jin;Song, Jang Hoon;Jung, Jae Sung
The Plant Pathology Journal
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제29권4호
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pp.357-363
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2013
The fungus Venturia nashicola is the causal agent of scab on Asian pears. For the rapid and reliable identification as well as sensitive detection of V. nashicola, a PCR-based technique was developed. DNA fingerprints of three closely related species, V. nashicola, V. pirina, and V. inaequalis, were obtained by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. Two RAPD markers specific to V. nashicola were identified by PCR, after which two pairs of sequence characterized amplified region (SCAR) primers were designed from the nucleotide sequences of the markers. The SCAR primer pairs, designated as D12F/D12R and E11F/E11R, amplified 535-bp and 525-bp DNA fragments, respectively, only from genomic DNA of V. nashicola. The specificity of the primer sets was tested on strains representing three species of Venturia and 20 fungal plant pathogens. The nested PCR primer pair specific to V. nashicola was developed based on the sequence of the species-specific 525-bp DNA fragment amplified by primer set E11F/E11R. The internal primer pair Na11F/Na11R amplified a 235-bp fragment from V. nashicola, but not from any other fungal species tested. The nested PCR assay was sensitive enough to detect the specific fragment in 50 fg of V. nashicola DNA.
Hantavirus is a genus of the Bunyaviridae family consisting following serotype groups: Hantaan, Seoul, Puumala, Prospect Hill, Thailand, Belgrade, Thotta palayam, Sin Nombre. Most of Hantavirus group have been associated with many clinically similar disease known collectively as hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS). Hantaan virus is the prototype of the genus hantavirus, originally isolated from Apodemus agrarius. Bat was found as a natural host for Hantaan virus in Lee's lab for the first time. Then, Hantaan-like virus was isolated Hantaan-like virus from bat. To identify hantaviruses that are present in Korea among bats, bats were collected from Jeong-Sun, Won-Joo, Chung-Ju and Hwa-Cheon area, RNA was isolated from lung and serum. RT-PCR was performed with a universal primer from M segment. Nested RT-PCR was carried out to differentiate Hantaan, Seoul and Puumala virus using serotype specific primers. As we expected, Hantaan viruses were detected in bats and Seoul virus was not detected. Interestingly, Puumala viruses were also detected in bats from Won-Ju, but not in other areas. Puumala virus is originally isolated from Clethrinomys glareolus, and cause light HFRS. Recently, Paradoxomis webbiana, a wild bird turn out to be a reservoir for Puumala virus in Korea. These data indicate that bat is a new natural reservoir of Puumala virus.
Caprine arthritis encephalitis (CAE) virus is a causative agent of caprine arthritis-encephalitis. In our previous study we reported a prevalence of CAE. In this study, we described the further detailed pathological features of CAE and examined the detection of virus by in situ hybridization (ISH). Histopathologically, interstitial pneumonia and bronchopneumonia in lung, focal inflammation in mammary glands, perivascular cuffing in brain, arthritis, and focal necrosis, mild steatosis, inflammatory cell infiltration of liver were noted. CAEV proviral-DNA was identified by nested polymerase chain reaction (PCR) in blood cells, brain, synovial fluid, and lymph node. Confirmation by nested PCR involved amplification of a 296 bp ($1^{st}$ PCR) and 185 bp ($2^{nd}$ PCR) fragments corresponding to a conserved region on the gag gene of CAEV. Positive ISH signals were detected in the brain and liver. In conclusion, significant histopathological findings included parenchymal infection in various organs, including the lung, liver, brain, joint, and mammary gland were noted in the CAEV infected dairy goat. ISH can help confirm the diagnosis of CAE in formalin-fixed samples.
C. destructans는 인삼에서 가장 문제가 되고 있는 뿌리섞음병을 유발하는 매우 중요한 미생물이다. 현재까지 정상적인 인삼포장이나 폐포지에서도 이 병원균의 농도를 조사할 만한 방법이 없어 이를 쉽게 조사함으로서 인삼 예정지 관린시 도움을 줄 수 있는 새로운 방법이 절실이 요구되고 있다. 본 연구에서는 nested PCR이란 분자생물학적 방법을 이용하여 효과적으로 매우 낮은 농도의 C. destructans을 검출할 수 있는 방법을 개발하였다. 2개의 universal ITS primers(ITS5F와 ITS4R)을 사 용 하 여 Cylindrocarpon spp.의 rDNA로부터 ITS영역을 증폭하였다. 이어 C. destructans의 specific primer(Nest 1 과 Nest 2)을 사용하여 최적의 PCR조건으로 재증폭시켜 밴드를 확인하였다. 또한 이런 2번의 과정을 4개의 primer를 동시에 사용함으로서 한번에 확인할 수 있는 방법을 개발하였으며 이에 따른 PCR조건도 확립하였다. 따라서 본 방법에 의해서 인삼포장의 토양에서 채취된 매우 낮은 농도의 wild type C. destructans spore로부터 성공적으로 positive band을 확인함으로써 추후 인삼포장의 선정 및 4년생에서 6년까지(홍삼포) 재배기간등의 예측에 활용 될 것으로 생각된다.
사람 아이치바이러스(Aichivirus A; AiV-A)는 positivesense single-strand RNA 비외피 바이러스로 지난 10년 동안 하수, 강, 지표 및 지상의 다양한 물환경에서 전 세계적으로 검출이 보고되고 있다. 지하수 등 물환경에서 AiV-A 진단을 위한 고감도 및 특이성이 우수한 방법의 개발이 요구됨에 따라, 본 연구에서는 기존 및 신규 설계된 프라이머 세트를 기초로 역전사(RT) 및 이중 중합효소연쇄반응이 가능한 조합을 개발하였다. 개발한 방법을 국내 음용 지하수 시료에 적용 및 평가하였으며, 그 결과 지하수 시료에서 AiV-A를 성공적으로 검출 및 동정할 수 있는 RT-nested PCR primer sets가 선정되었고 후속적으로 동정할 수 있는 절차가 고안되었다. 본 연구 결과는 지하수 등 물 환경에서 AiV-A 오염을 탐지하기 위한 모니터링 시스템 마련에 기여할 것으로 기대된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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