One-tube nested polymerase chain reaction (PCR) was evaluated for its efficacy in detecting Mycobacterium leprae in biopsy samples from leprosy patients. Primers were derived from the M leprae-specific element (RLEP) sequences which yield a 230 bp fragment. The specificity and the sensitivity of the one-tube nested PCR were compared with those of single PCR for detecting M leprae. The results showed that the one-tube nested PCR was about 100 times more sensitive than that of the single indicating the one-tube nested primer sets developed in this study can be an effective screening tool for the detection of M leprae in clinical diagnostic laboratories.
Kim, Seok-Ryel;Kim, Du-Woon;Kwon, Ki-Sung;Hwang, In-Gyun;Oh, Myung-Joo
Food Science and Biotechnology
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v.17
no.3
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pp.651-654
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2008
In order to enhance the efficacy of norovirus detection by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) and nested PCR, this study developed a norovirus mRNA concentration method using poly oligo dT-conjugated magnetic beads. An efficient norovirus detection protocol was performed on commercial ham using 2 viral elution buffers (glycine buffer and Tris beef extract buffer) and 2 concentration solutions [polyethylene glycol (PEG) and zirconium hydroxide]. The different approaches were verified by RT-PCR and nested PCR. This method was performed on ham in less than 8 hr by artificial inoculation of serial dilutions of the virus ranging from 1,000 to 1 RT-PCR unit/mL. The viral extraction and concentration method had 10-fold higher sensitivity using the combination of Tris beef extract buffer and PEG as compared to glycine buffer and zirconium hydroxide. This method proved that RT-PCR and nested PCR have the sensitive ability to detect norovirus in commercial ham, in that norovirus was successfully detected in artificially contaminated samples at a detection level as low as 1-10 RT-PCR unit/mL. Overall, such a detection limit suggests this protocol is both quick and efficient in terms of its potential use for detecting norovirus in meat products.
Human enteric Adenovirus-41 (HuEAdV-41) causes gastroenteritis, which detected by the polymerase chain reaction (PCR) base diagnostic system for clinical, food, environmental, fish and shellfish samples. We developed improved PCR and nested PCR primer set which had high specificity, sensitivity and reduced times. In this study, we compared seventeen conditions reported in the previous study that was using the PCR based HuEAdV-41 detection system, and non-enteric Adenovirus were detected in nine conditions. The most sensitive detection condition was up to 25 copies however it took 184 minutes of PCR reaction time. In this study, the PCR primer set developed had same level of sensitivity, it reduced the time of detection for clinical, food and seafood samples to 112 minutes. Developed nested PCR primer set needed 112 minutes but detected up to approximately 1 copy. In addition, developed PCR and nested PCR primer set was validated with twenty samples of underground water at random, of which ten samples showed specific band without non-specific reaction. We expect this study will be used to diagnose HuEAdV-41 from various samples.
To develop a simplified method that can rapidly prepare DNA microarray probes in a massive scale, a lambda phage genomic DNA-fragments library was constructed for the microarray-probes collection. Four methods of DNA band recovery from the first PCR products were tested and compared. The DNA microarray probes were collected by a novel method of nested PCR that was mediated by gel isolation of the first PCR products. This method was named GIN-PCR. The probes that were prepared by this GIN-PCR technique were used as subjects to fabricate a DNA microarray. The results showed that a wooden toothpick was superior to the other 3 methods, since this technique can steadily transfer the DNA bands as the template of the second PCR after the first PCR. A group of probes were successfully collected and DNA microarrays were constructed using these probes. Hybridization results demonstrated that this technique of DNA recovery and probe preparation was rapid, efficient, and effective. We developed a cost-effective and less labor-intensive method for DNA microarray probe preparation by nested PCR that is mediated by wooden toothpick transfer of the DNA bands in the gel after electrophoresis.
The detectable levels and population fluctuations of phytoplasmas infecting dwarf mulberry trees were investigated using nested-PCR and competitive-PCR methods. Samples of five different types were studied : A. petiole of a leaf that displays dwarf symptoms, B. petiole from apparently healthy leaf residing on a branch also supports a leaf with dwarf symptoms, C. the branch portion that supports a leaf with dwarf symptoms, D. the leaf petiole from healthy appearing leaves on branch with no dwarf symptoms, and branch portion of branch with no dwarf symptoms, E. the rootlets of trees with dwarf symptoms. These 5-parts were collected from each tree during June - April, once in every two months. The phytoplasma was detected from all parts of collected mulberry samples during all seasons using nested-PCR with AS-1/AS-2 primer pairs. The phytoplasma was detected until $10^4$ dilution using direct-PCR method, but it was detected until $10^{13}$ dilution by the nested-PCR method. The density of pytoplasma was found to be $7.94{\times}10^{18}-10^{12}copies/{\mu}L$ in mulberry trees. The density of phytoplasma was observed throughout the year in all samples of mulberry trees. The highest rates of phytoplasma was found in the samples B and C during the early growing season followed by the sample A and D during the dormant season. Samples C and E displayed the highest phytoplasma density followed sample D. The density of phytoplasma appeared stable during all the seasons for samples C and A. The result of the present study demonstrates the utility of nested-PCR and competitive-PCR for detection and determination of population fluctuations of phytoplasmas in plant tissues.
A rapid and sensitive method has been developed to detect hepatitis B virus DNA (HBV) by nested polymerase chain reaction (PCR) technique with primers specific for the surface and core regions in capillary thermal cycler within 80 min. The lower limit for detection by present PCR method is $10^{-5}$ pg of recombinant HBV DNA which is equivalent to that determined by one round of PCR amplification and Southern blot hybridization analysis. When boiled HBV positive serum was serially diluted 10-fold, HBV DNA was successfully determined in $1{\mu}l-10^{-3}$ of serum. HBV DNA was detected by present method in 69 clinical samples including HBsAg positives and negatives by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). When serum samples were amplified by nested PCR using surface and core region primers, HBV DNAs were detected in 37 of 69 samples (53.6%) and 18 of 69 samples (26.1%), respectively. These results can inform the infectious state of HBsAg positive pateints. A simple and rapid nested PCR protocol by using boiled serum as DNA template has been described for the clinical utility to determine HBV DNA in human serum.
Lee, Si Won;Shin, Yong-Gil;Lee, Jin-Young;Kim, Young-Suk;Yang, Mi Hee;Choi, In-Cheol
Korean Journal of Agricultural Science
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v.42
no.2
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pp.99-103
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2015
Potato virus T (PVT) is a plant pathogen in the family Betaflexiviridae, group IV single-stranded positive sense RNA viruses. The major host of PVT is potato, and it has been reported in Ullucus tuberosus, Oxalis tuberosa and Tropaeolum tuberosum. This study aimed at developing reverse transcription (RT)-polymerase chain reaction (PCR) and nested PCR techniques for specific detection of PVT. Finally, Two RT-PCR primer sets were developed and verified. The RT-PCR products were amplified to 734 (PVT RT-PCR primer set 6) and 828 bp (PVT RT-PCR primer set 29) long to detect PVT. The nested PCR primer sets [PVT-N70/C20 ($734{\rightarrow}315bp$) and PVT-N75/C30 ($828{\rightarrow}529bp$)] were developed which are high sensitivity and verification for detection of PVT. Furthermore, a modified-positive control plasmid is use to verify contamination of laboratory in PVT detection. This study supported the diagnose PVT in potato or PVT related hosts.
For quarantine purpose, we developed the RT- and nested PCR module of Tomato black ring virus (TBRV), Arabis mosaic virus (ArMV), Cherry leafroll virus (CLRV) and Grapevine fanleaf virus (GFLV). The PCR modules, developed in this study make diagnosis more convenient and speedy because of same PCR condition. And also, the methods are more accurate because it can check whether the result is contamination or not using the mutation-positive control. We discard or return the 27 cases of Nepovirus infection seed by employing the module past 3 years. This study provides a rapid and useful method for detection of four quarantine plant viruses.
Lee, Hyoung-Song;Choi, Hye Won;Lim, Chun Kyu;Park, So Yeon;Kim, Jin Young;Koong, Mi Kyoung;Jun, Jin Hyun;Kang, Inn Soo
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.32
no.1
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pp.17-26
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2005
Objective: Preimplantation genetic diagnosis (PGD) is reserved for couples with a risk of transmitting a serious and incurable disease, and hence avoids the undesirable therapeutic abortion. In this study, we evaluated the efficacy of PGD for Duchenne muscular dystrophy (DMD) cases by the fluorescent PCR with polymorphic linked markers and the conventional duplex-nested PCR methods. Methods: Biopsy of one or two blastomeres was done from the embryos fertilized by ICSI on the third day after fertilization. We performed two cases of PGD-DMD by the duplex-nested PCR for the causative mutation loci and the SRY gene on Y chromosome. The triplex fluorescent PCR for the mutation loci, the SRY gene and the polymorphic microsatellite marker on X chromosome was applied for two cases of PGD-DMD. Results: By the duplex-nested PCR, successful diagnosis rate was 95.5% (21/22), but we could not discriminate the female embryos whether normal or carrier in this X-linked recessive disease. However, the triplex fluorescent PCR method showed 100% (27/27) of successful diagnosis rate, and all female embryos (n=17) were distinguished normal (n=10) from carrier (n=7) embryos. Unaffected and normal embryos were transferred into mother's uterus after diagnosis. A healthy normal male was achieved after PGD with the duplex-nested PCR method and a twin, a male and a female, were delivered with triplex fluorescent PCR method. The normality of dystrophin gene was confirmed by amniocentesis and postnatal genetic analysis in all offsprings. Conclusion: The fluorescent PCR with polymorphic marker might be useful in improving the specificity and reliability of PGD for single gene disorders.
돼지 생식기호흡기증후군(porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS) 바이러스가 웅돈에 감염되었을 경우에는 정충의 기형 등 정액의 질 저하와 더불어 정액에 바이러스가 함유되어 있어 종부시 모돈에 바이러스를 전파하는 것으로 알려져 있다. 감염된 웅돈의 정액으로 인공수정을 실시할 경우 농장의 모돈 전체에 순식간에 바이러스를 전파하여 막대한 피해를 유발할 가능성이 높다. 따라서 감염웅돈을 신속히 검색하여 격리함으로써 피해를 사전에 방지해야 하며, 이를 위해서 웅돈의 감염여부를 신속히 확진하는 진단법의 개발이 필요한 실정이다. PRRS의 진단을 위해서는 바이러스학적인 진단법으로는 바이러스 분리동정, 혈청학적인 방법으로 바이러스 분리동정이 필수적이나 검사시간이 많이 소요되고, 분리동정 자체가 까다로운 단점이 있다. 본 연구에서는 웅돈의 정액내에서 PRRSV 바이러스에 대한 유전자를 RT-PCR법으로 증폭하는 방법을 개발하였으며, 진단의 민감도를 높이기 위하여 Nested PCR법으로 재확인 할 경우, 바이러스의 역가가 $1TCID_{50}$만 함유되어 있어도 진단이 가능한 조건을 확립하였다. 이 방법을 이용할 경우 웅돈의 정액시료에 대한 PRRS 바이러스 감염여부를 신속, 정확하게 검색하여 감염웅돈을 통한 PRRS바이러스의 전파를 미리 차단할 수 있으므로 PRRS방제에 효과적으로 이용될 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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