In order to identify various Cryptosporidium species in environment, nested PCR-RFLP and DNA sequencing method were used. The sensitivity of nested PCR-RFLP based on 18s rRNA gene was shown to 1 oocyst. Therefore, we applied nested PCR-RFLP method to environmental samples. As a result, only 4 samples out of 8 samples confirmed as Cryptosporidium parvum by standard method of Cryptosporidium were identified as Cryptosporidium parvum by nested PCR-RFLP and DNA sequencing method. The rest of 4 samples among 8 samples were identified as Cryptosporidium muris, Cryptosporidium bailey. Therefore, in addition to standard method of Cryptosporidium, supplementary verification through nested PCR-RFLP and DNA sequencing should be needed to give more accurate information about risk of Cryptosporidium.
In this study, the feasibility of identification and genotypic differentiation of enteroviruses was investigated by using nested reverse transcription-polymerase chain reaction (nested RT-PCR), single-stranded conformation polymorphism (SSCP), and restriction fragment length polymorphism (RFLP) techniques. Two hundred seventy-four clinical samples were assayed by both nested RT-PCR and tube culture method using MRC-5 and MK cells; 58 (86.6%) out of 67 enterovirus culture-positive samples contained enteroviral RNA. In addition, 114 (55.1%) of 207 samples from patients with suspected enteroviral CNS disease with negative viral cultures were positive by the nested RT-PCR. The nested RT-PCR products were genotyped by the SSCP method and the results were compared with serotypes. We could differentiate 6 subtypes, 3 of which are similar to coxsackievirus B3, B5, echovirus 11, plus 3 other subtypes. RFLP cleaved with Sty I, Bgl I, and Xmn I yielded characteristic patterns for each laboratory strains. This study demonstrates the usefulness of the RT-PCR for the rapid diagnosis of enterovirus infection and the potentials of the SSCP method for differentiation of enterovirus strains.
Kim, Y.;Woo, S.C.;Song, G.C.;Park, H.Y.;Im, B.S.;Kim, G.W.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제15권9호
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pp.1237-1243
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2002
We have developed a reliable and noninvasive method for swine genotyping of single locus nuclear gene with aged single hair follicles delivered by general mail. The method is based on booster and nested PCR amplification with step-wise increase of primers and dNTPs concentrations followed by restriction endonuclease digestion. To establish this method, the ryanodine receptor (RYR 1) locus which is an economically important trait in swine industry was employed for genotyping experiment. The 3-step PCR amplication method is much less dependent on the quantity and quality of template DNA and produces enough amplification product for the detection on the ethidium bromide-stained gel such as RFLP analysis. A total of 120 pigs were subjected to the RYR 1 genotyping analysis using three-step PCR method which amplified enough quantity of PCR products from the aged single hair follicles for RFLP analysis and genotyping results were identical to the results of the corresponding ethanol-fixed skeletal muscle tissue. This approach will be a great help for porcine breeders and investigators in genotyping of swine. They can receive genotyping results later by simply plucking single hairs of their pigs at farm and sending them in general mail to the diagnostic laboratory which eliminates the inconveniences to collect ear tissue or blood cells from pigs, or the investigator's need for travel to farms in order to collect fresh hair samples.
결핵의 진단은 특징적 병리조직양상, 항산균 염색에 의한 균 증명과 M. tuberculosis균 배양으로 이루어지나 형태적으로는 결핵이 의심되더라도 항산균이 조직표본이나 도말에서 검출되지 않거나 M. tuberculosis가 배양되지 않아 정확한 원인적 진단이 불가능할 경우가 많다. 이에 저자들은 경부 결핵성 임파선염으로 적출되어 보내어진 경부 임파선 조직의 신선한 조직이나 통상적으로 처리되어 제작된 파라핀 블록을 이용하여 M. tuberculosis에 특수한 반복성 DNA sequence인 IS986를 표적으로 한 primers을 사용하여 nested PCR방법을 이용하여 예민도가 높은 M. tuberculosis 검출로 빠른 시간 내에 결핵을 진단하고자 본 연구를 실시하였다. 최근 유전자 기술의 진보로 M. tuberculosis의 여러 항원들의 유전자가 클론화되고 그 염기 배열이 밝혀졌으며 이에 저자들은 결핵의 확진을 위하여 파라핀 포매조직을 대상으로 nested PCR에 의한 188bp의 DNA를 증폭한후 증폭한 DNA분절의 염기 배열을 결정한 후 Bst UI와 Hha I 효소를 이용한 소화과정을 거친 후 restriction fragment length polymorphism(RFLP)을 은염색에 의해 그 패턴에 의해 M. tuberculosis를 확인하고 또한 다른 종의 Mycobacteria를 배제시킬 수 있었다. 본 방법은 1$\sim$2일에 끝나며, 방사선물질을 사용하지 않으면서도 감도 및 특이성이 우수하여 일반 병리실힘실에서도 M. tuberculosis를 포함한 각종 항산균의 신속한 검출법으로 손쉽게 사용할 수 있다고 생각되어 이에 보고하였다.
In this study, we describe our newly-developed sensitive two-stage PCR procedure for the detection of 13 common mycoplasmal contaminants (M. arthritidis, M. bovis, M. fermentans, M. genitalium, M. hominis, M. hyorhinis, M. neurolyticum, M. orale, M. pirum, M. pneumoniae, M. pulmonis, M. salivarium, U. urealyticum). For primary amplification, the DNA regions encompassing the 16S and 23S rRNA genes of 13 species were targeted using general mycoplasma primers. The primary PCR products were then subjected to secondary nested PCR, using two different primer pair sets, designed via the multiple alignment of nucleotide sequences obtained from the 13 mycoplasmal species. The nested PCR, which generated DNA fragments of 165-353 bp, was found to be able to detect 1-2 copies of the target DNA, and evidenced no cross-reactivity with the generated DNA of related microorganisms or of human cell lines, thereby confirming the sensitivity and specificity of the primers used. The identification of contaminated species was' achieved via the performance of restriction fragment length polymorphism (RFLP) coupled with Sau3AI digestion. The results obtained in this study furnish evidence suggesting that the employed assay system constitutes an effective tool for the disagnosis of mycoplasmal contamination in cell culture systems.
결핵(Mycobacterium tuberculosis, MTB) 감염은 아직까지 전 세계에서 높은 유병률과 사망의 주요 원인이 되고 있으며 비정형 결핵(nontuberculous mycobacteria, NTM)은 최근 후천성 면역결핍증(AIDS)이나, 종양, 이식 등으로 면역력이 저하된 환자들의 임상 검체에서 분리빈도가 증가함에 따라 분리 균주의 임상적 의의가 중요시 되고 있다. 이에 항산균 염색을 이용한 객담 도말검사는 결핵균과 비정형 결핵균을 구별할 수 없다는 제한점이 있고, 균 분리배양검사는 시간이 오래 걸린다는 단점이 있어, 본 연구에서는 이러한 제한점을 가진 기존의 검사법을 대신하여 분자생물학적 방법인 중합효소 연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)을 이용하여 균 분리배양 검사와 비교하여 보았다. Mycobacteria를 동정하는데 항산균 염색과 3% ogawa 배지를 이용하였고, 균 분리배양 후 M. tuberculosis를 확인하기 위해서 niacin test를 실시한 결과 집락의 DNA를 추출하여 PCR후 동정된 M. tuberculosis와 niacin 양성이 일치함을 확인할 수 있었다. 또, 이 실험에서 항산성균 염색이 2+ 이상인 객담검체와 집락검체 각각에서 DNA를 추출하여 결핵균을 동정하는 방법으로 M. tuberculosis complex에 특징적으로 존재하는 insertion sequence (IS) 6110의 특정부위인 547 bp와 285 bp 부분을 증폭한 two-tube nested polymerase chain reaction을 시행하였고, 비정형 결핵균 동정법으로는 mycobacteria에 공통적으로 존재하는 rpoB 유전자 중 일부인 360 bp 부분을 증폭한 후, 제한효소 Msp I을 첨가 PCR-restriction fragment length polymorphism (RFLP)을 시행하였으며, 결핵균과 비정형 결핵균 모두 동정율에 거의 차이가 없었다. 1+인 경우는 객담검체에서 PCR한 결과가 31.2%에서 집락검체의 PCR한 결과 93.7%까지 결핵균과 비정형결핵균의 동정율이 높아졌고, trace인 경우 객담검체에서 PCR 결과가 2%에서 집락검체에서 PCR한 결과가 97.9%까지 결핵균과 비정형 결핵균의 동정율을 높일 수 있었다. 이 실험에서 항산성균 염색 1+이하 일때 객담검체와 집락검체로 PCR을 실시하면 결핵균과 비정형 결핵균의 동정율에 차이가 있고, 배양만으로는 결핵균의 동정은 가능하지만 비정형 결핵균의 동정이 가능하지 않으므로 배양검사와 PCR 검사 모두를 병행하므로써 보다 신속하고 정확한 검사결과를 내는데 도움 될 것이다.
Aflatoxin B1 (AFB1) is produced by Aspergillus flavus growing in feedstuffs. Early detection of maize contamination by aflatoxigenic fungi is advantageous since aflatoxins exert adverse health effects. In this study, we report the development of an optimized conventional PCR for AFB1 detection and a rapid, sensitive and simple screening Real-time PCR (qPCR) with SYBR Green and two pairs of primers targeting the aflR genes which involved aflatoxin biosynthesis. AFB1 contaminated maize samples were divided into three groups by the toxin concentration. Genomic DNA was extracted from those samples. The target genes for A. flavus were tested by conventional PCR and the PCR products were analyzed by electrophoresis. A conventional PCR was carried out as nested PCR to verify the gene amplicon sizes. PCR-RFLP patterns, obtained with Hinc II and Pvu II enzyme analysis showed the differences to distinguish aflatoxin-producing fungi. However, they are not quantitative and need a separation of the products on gel and their visualization under UV light. On the other hand, qPCR facilitates the monitoring of the reaction as it progresses. It does not require post-PCR handling, which reduces the risk of cross-contamination and handling errors. It results in a much faster throughout. We found that the optimal primer annealing temperature was $65^{\circ}C$. The optimized template and primer concentration were $1.5{\mu}L\;(50ng/{\mu}L)$ and $3{\mu}L\;(10{\mu}M/{\mu}L)$ respectively. SYBR Green qPCR of four genes demonstrated amplification curves and melting peaks for tub1, afIM, afIR, and afID genes are at $88.0^{\circ}C$, $87.5^{\circ}C$, $83.5^{\circ}C$, and $89.5^{\circ}C$ respectively. Consequently, it was found that the four primers had elevated annealing temperatures, nevertheless it is desirable since it enhances the DNA binding specificity of the dye. New qPCR protocol could be employed for the determination of aflatoxin content in feedstuff samples.
Phytoplasmas were discovered in diseased Elaeocarpus sylvestris trees growing on Jeju Island that showed symptoms of yellowing and darkening in the leaves. Leaf samples from 14 symptomatic plants in Jeju-si and Seogwipo-si were collected and phytoplasma 16S rRNA was successfully amplified by nested polymerase chain reaction using universal primers. The sequence analysis detected two phytoplasmas, which showed 99.5% identity to 'Candidatus Phytoplasma asteris' and 'Ca. P. malaysianum' affiliated to 16SrI and 16SrXXXII groups, respectively. Through polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (RFLP) analyses using the AfaI (RsaI) restriction enzyme, the presence of two phytoplasmas strains as well as cases of mixed infection of these strains was detected. In a virtual RFLP analysis with 17 restriction enzymes, the 16S rRNA sequence of the 'Ca. P. asteris' strain was found to match the pattern of the 16SrI-B subgroup. In addition, the phytoplasmas in the mixed-infection cases could be distinguished using specific primer sets. In conclusion, this study confirmed mixed infection of two phytoplasmas in one E. sylvestris plant, and also the presence of two phytoplasmas (of the 16SrI and 16SrXXXII groups) in Jeju Island (Republic of Korea).
연구목적: 단일 유전자 이상에 대한 착상전 유전진단을 성공적으로 시행하기 위해서는 효과적이고 신뢰도가 높은 PCR 방법의 확립이 중요하다. 본 연구에서는 alkaline lysis와 duplex nested PCR 방법을 단일 림프구와 할구의 유전자 분석에 적용하여 그 효용성을 확인하고자 하였다. 재료 및 방법: 단일 유전자의 이상이 확인된 Duchenne muscular dystrophy (DMD), ornithine transcarbamylase (OTC) 결핍증과 epidermolysis bullosa (EB) 가계의 대상자들에서 채취한 단일 림프구와 공여 받은 배아의 할구를 이용하여 각각 PCR, restriction fragment length polymorphism (RFLP)와 direct DNA sequencing 분석을 시행하였다. 이러한 분석에서 유전자 증폭률 (amplification rate)과 두개의 allele 중에서 하나의 allele이 증폭되지 않는 allele drop-out (ADO) 빈도에 대해 살펴보았다. 결 과: 단일 림프구와 할구를 이용한 PCR 방법의 유전자 증폭률은 DMD에서 91.1%와 81.8%, OTC 결핍증에서 96.0%와 78.1%, EB에서 91.3%와 90.0%를 각각 나타냈으며, ADO 빈도는 OTC 결핍증에서 13.3%, EB에서 16.8%로 관찰되었다. 결 론: 본 연구에서 적용한 alkaline lysis와 duplex nested PCR 방법은 단일 유전자에 대한 착상전 유전진단에 성공적으로 적용할 수 있는 방법으로 생각되며, ADO 빈도를 최소화할 수 있는 효율적인 방법의 개발에 대한 지속적인 연구가 필요하다.
Cryptosporidium is an important pathogen causing gastrointestinal disease in snakes and is distributed worldwide. The main objectives of this study were to detect and identify Cryptosporidium species in captive snakes from exotic pet shops and snake farms in Thailand. In total, 165 fecal samples were examined from 8 snake species, boa constrictor (Boa constrictor constrictor), corn snake (Elaphe guttata), ball python (Python regius), milk snake (Lampropeltis triangulum), king snake (Lampropeltis getula), rock python (Python sebae), rainbow boa (Epicrates cenchria), and carpet python (Morelia spilota). Cryptosporidium oocysts were examined using the dimethyl sulfoxide (DMSO)-modified acid-fast staining and a molecular method based on nested-PCR, PCR-RFLP analysis, and sequencing amplification of the SSU rRNA gene. DMSO-modified acid-fast staining revealed the presence of Cryptosporidium oocysts in 12 out of 165 (7.3%) samples, whereas PCR produced positive results in 40 (24.2%) samples. Molecular characterization indicated the presence of Cryptosporidium parvum (mouse genotype) as the most common species in 24 samples (60%) from 5 species of snake followed by Cryptosporidium serpentis in 9 samples (22.5%) from 2 species of snake and Cryptosporidium muris in 3 samples (7.5%) from P. regius.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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