Apolipoprotein B-100 (Apo-B100) is a major component of low density lipoprotein (LDL). Apo B-100 protein has 4,536 amino acid sequence and these amino acids are classified into peptide groups A to G with subsequent 20 amino acids (P1-P302). The peptide groups were act as immunoglobulin (Ig) antigens which oxidized via malondialdehyde (MDA). The mimetic peptide P1 (EEEMLENVSLVCPKDAT RFK) out of D-group peptides carrying the highest value of IgG antigens were selected for structural studies that may provide antigen specificity. Circular Dichroism (CD) spectra were measured for peptide secondary structure in the range of 190-250 nm. Experimental results show that P1 exhibit partial of ${\beta}-sheet$ and random coil structure. Homonuclear (COSY, TOCSY, NOESY) 2D-NMR experiments were carried out for NMR signal assignments and structure determination for P1. On the basis of these completely assigned NMR spectra and distance data, distance geometry (DG) and Molecular dynamics (MD) were carried out to determine the structures of P1. The proposed structure was selected by comparisons between experimental NOE spectra and back calculated 2D NOE results from determined structure showing acceptable agreement. The total Root-Mean-Square-Deviation (RMSD) value of P1 obtained upon superposition of all atoms was in the range $0.33{\AA}$. The solution state P1 has mixed structure of ${\beta}-sheet$ (Glu[1] to Cys[12]) and random coil (Pro[13] to Lys[20]). These NMR results are well consistent with secondary structure from experimental results of circular dichroism. Structural studies based on NMR may contribute to the studies of atherosclerosis and observed conformational characteristics of apo B-100 in LDL using monoclonal antibodies.
The prokaryotic molecular chaperone Hsp33 achieves its holdase activity upon response to oxidative stress particularly at elevated temperature. Despite many structural studies of Hsp33, which were conducted mainly by X-ray crystallography, the actual structures of the Hsp33 in solution remains controversial. Thus, we have initiated NMR study of the reduced, inactive Hsp33 monomer and backbone NMR assignments were obtained in the present study. Based on a series of triple resonance spectra measured on a triply isotope-[$^2H/^{13}C/^{15}N$]-labeled protein, sequence-specific assignments of the backbone amide signals observed in the 2D-[$^1H/^{15}N$]TROSY spectrum could be completed up to more than 96%. However, even considering the small portion of non-assigned resonances due to the lack of sequential connectivity, we confirmed that the total number of observed signals was quite smaller than that expected from the number of amino acid residues in Hsp33. Thus, it is postulated that peculiar dynamic properties would be involved in the solution structure of the inactive Hsp33 monomer. We expect that the present assignment data would eventually provide the most fundamental and important data for the progressing studies on the 3-dimensional structure and molecular dynamics of Hsp33, which are critical for understanding its activation process.
Human transmembrane proteins (hTMPs) are closely related to transport, channel formation, signaling, cell to cell interaction, so they are the crucial target of modern medicinal drugs. In order to study the structure and function of these hTMPs, it is important to prepare reasonable amounts of proteins. However, their preparation is seriously difficult and time-consuming due to insufficient yields and low solubility of hTMPs. We tried to produce large amounts of Syndecan-4 transmembrane domain (Syd4-TM) that is related to the healing wounds and tumor for a long time. In this study, we performed the structure determination of Syd4-TM combining the Polarity Index at Slanted Angle (PISA) wheel pattern analysis based on $^{15}N-^1H$ 2D SAMPI-4 solid-state NMR of expressed Syd4-TM and Molecular Dynamics (MD) simulation using Discovery Studio 3.1.
$^1$H-detected $^{15}$N NMR was employed to investigated the effect of mutation (Y14F) on the dynamic properties of catalytic residues in ${\Delta}^5$-3- ketosteroid isomerase (KSI) from Conamonas testosteroni. In particular, the backbone dynamics of the catalytic residues have been studied in free enzyme and its complex with a steroid ligand, 19-nortestosterone hemisuccinate, by $^{15}$N relaxation measurements. The relaxation data were analyzed using the model-free formalism to extract the model-free parameters (S$^2$, ${\tau}_e$, and R$_{ex}$). The results show that the mutation causes a significant decrease in the order parameter (S$^2$) for the catalytic residues of free Y14F KSI, presumably due to breakdown of the hydrogen bond network by mutation. In addition, the order parameters of Phe-14 and Asp-99 increased slightly upon ligand binding, indicating a slight restriction of the high-frequency (pico- to nanosecond) internal motions of the residues in the complexed Y14F KSI, while the order parameter of Tyr-55 decreased significantly upon ligand binding.
Physical properties of PVB [Poly(vinyl butyral)] polymer are strongly correlated with water contents in the polymer. Thus dynamics of PVB containing 10~50(w/w) % of water were studied by $^{13}$ C CP/MAS/DD over the temperature range 293K -348K. From the Peak area, line width, chemical shift, and relaxation times ( $T_{1}$$T_{1p}$) measured at 9.4 T, it was deduced that water facilitates molecular dynamics of the PVB molecules overall including conformational exchange of the racemic and meso butyaldehyde rings in the PVB. However, the influence of water was not linear to the amount of water in the PVB samples. It is suggested that water up to 30 w/w % of the sample is closely bound to the PVB polymer and water relatively free from the PVB polymer starts to appear when water is added more than 30 w/w %.%.
We demonstrate here a dynamic structure of bacteriorhodopsin (bR) as revealed by $^{13}$ C NMR studies on [3_$^{13}$ C]_,[1-$^{13}$ C]Ala- and/or Val-labeled wild type and a variety of site-directed mutants at ambient temperature. For this purpose, well-resolved (up to twelve) I$^{13}$ C NMR peaks were assigned with reference to the displacement of peaks due to the conformation-dependent I$^{13}$ C chemical shifts and reduced peak-intensities due to site-directed mutations. Revealed bR structure was not rigid as anticipated from 2D crystals of hexagonal array but a dynamically heterogeneous, undergoing a variety of local fluctuations depending upon specific site with frequency range of 10$^2$ -10$^{8}$ Hz. In particular, dynamics- dependent suppression of peaks turned out to be very sensitive to the motion of 10$^{-4}$ s and 10$^{-5}$ s interfered with frequency of magic angle spinning and proton decoupling, respectively. It is also noteworthy that such dynamic feature is strongly dependent upon the manner of 2D crystalline packing: $^{13}$ C NMR peaks of monomeric bR yielded either highly broadened or completely suppressed signals, depending upon the type of $^{13}$ C-labeled amino-acid residues.
Iron-sulfur (Fe-S) clusters are one of the most ancient yet essential cofactors mediating various essential biological processes. In prokaryotes, Fe-S clusters are generated via several distinctive biogenesis mechanisms, among which the ISC (Iron-Sulfur Cluster) mechanism plays a house-keeping role to satisfy cellular needs for Fe-S clusters. The Escherichia coli ISC mechanism is maintained by several essential protein factors, whose structural characterization has been of great interest to reveal mechanistic details of the Fe-S cluster biogenesis mechanisms. In particular, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopic approaches have contributed much to elucidate dynamic features not only in the structural states of the protein components but also in the interaction between them. The present minireview discusses recent advances in elucidating structural features of IscU, the key player in the E. coli ISC mechanism. IscU accommodates exceptional structural flexibility for its versatile activities, for which NMR spectroscopy was particularly successful. We expect that understanding to the structural diversity of IscU provides critical insight to appreciate functional versatility of the Fe-S cluster biogenesis mechanism.
${\alpha}B$-crystallin (${\alpha}BC$) is a member of a small heat-shock protein (sHSP) superfamily and plays a predominant role in cellular protein homeostasis network by rescuing misfolded proteins from irreversible aggregation. ${\alpha}BC$ assembles into dynamic and polydisperse high molecular weight complexes containing 12 to 48 monomers; this variable stereochemistry of ${\alpha}BC$ has been linked to quaternary subunit exchange and its chaperone activity. The chaperone activity of ${\alpha}BC$ poses great potential as therapeutic agents for various neurodegenerative diseases. In this mini-review, we briefly outline the recent advancement in structural characterization of ${\alpha}BCs$ and its potential role to inhibit protein misfolding and aggregation in various human diseases. In particular, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy and its complimentary techniques have contributed much to elucidate highly-dynamic nature of ${\alpha}BCs$, among which notable advancements are discussed in detail. We highlight the importance of resolving the structural details of various ${\alpha}BC$ oligomers, their quaternary dynamics, and structural heterogeneity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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