A mouse homozygous for the spontaneous mutation uncovered (Uncv) has a hairless phenotype. A 309-bp non-frameshift deletion mutation in the N-terminal cytoplasmic domain of iRhom2 was identified in Uncv mice ($iRhom2^{Uncv}$) using target region sequencing. The detailed molecular basis for how the iRhom2 mutation causes the hairless phenotype observed in the homozygous $iRhom2^{Uncv}$ mouse remains unknown. To identify differentially expressed proteins in the skin of wild-type and homozygous $iRhom2^{Uncv}$ littermates at postnatal day 5, proteomic approaches, including two-dimensional gel electrophoresis and mass spectrometry were used. Twelve proteins were differentially expressed in the skin in a comparison between wild-type and homozygous $iRhom2^{Uncv}$ mice. A selection of the proteomic results were tested and verified using qRT-PCR, western blot and immunohistochemistry. These data indicate that differentially expressed proteins, especially KRT73, MEMO1 and Coro-1, might participate in the mechanism by which iRhom2 regulates the development of murine skin.
Park, Jong-Hwa;Yoon, Hyung-Joo;Gui, Zhong Zheng;Jin, Byung-Rae;Sohn, Hung-Dae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.18
no.1
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pp.28-32
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2009
We describe here the cloning and characterization of a cDNA encoding the glutathione S-transferase (GST) from the bumblebee Bombus ignitus. The Delta-class B. ignitus GST (BiGSTD) gene spans 1668 bp and consists of four introns and five exons that encode 216 amino acid residues with a calculated molecular weight of approximately 24561 Da and a pI of 8.03. The N-terminal domain of BiGSTD has a conserved Ser residue, as well as conserved Lys, Pro, Glu, Ser and Tyr residues that are involved in the GSH-binding site of GST. The BiGSTD showed 60% protein sequence identity to the Bombyx mori GSTT1, 58% to Musca domestica GST, 57% to Drosophila melanogaster GST, and 55% to Anopheles gambiae GST1. BiGSTD was close to the insect-specific Delta class of GSTs in a phylogenetic tree. Northern blot analysis showed that BiGSTD is highly expressed in the fat body and midgut, and less so in the muscles of B. ignitus worker bees.
A complete cDNA, which encodes for a myostatin-like protein (Es-MSTN), was isolated from the Chinese mitten crab, Eriocheir sinensis. Es-MSTN was composed of 2,397 nucleotides and the open reading frame (ORF) specified a protein containing 468 amino acids. Es-MSTN exhibited 32% amino acid sequence identity and 52% similarity to human myostatin. Multiple sequence alignment analysis indicated that Es-MSTN possessed the conserved proteolytic cleavage site (RXXR) for maturation of the protein and nine cysteine residues for disulfide bridges. Besides the conserved structural features, Es-MSTN also exhibits its unique characters; a longer N-terminal domain which is involved in protein folding and latent form of myostatin and absence of the cleavage site for BMP-1/tolloid family of metalloproteinase to activate mature myostatin. Phylogenetic analysis suggests that Es-MSTN showed the closely related to both vertebrate myostatin and GDF11. Es-MSTN is expressed highly in the claw muscle, leg muscle, thoracic muscle and heart, and moderately in the hindgut suggesting that Es-MSTN may play important roles in the muscle tissues. As homolog of mammalian myostatin and GDF11, Es-MSTN may be involved in development of muscular tissue and further study will help to produce high-quality seafood.
PreS domain of Hepatitis B virus (HBV) surface antigen is a good candidate for an effective vaccine as it activates both B and T cells besides binding to hepatocytes. This report deals with overexpression and purification of adr subtype of surface antigen that is more prevalent in Pakistan. PreS region, comprising 119 aa preS1 region plus a 55 aa preS2 region plus 11 aa from the N-terminal S region, was inserted in pET21a+ vector, cloned in E. coli $DH5\alpha$ cells and expressed in E. coli BL21 codon+ cells. The conditions for over expression were optimized using different concentrations of IPTG (0.01-5 mM), and incubating the cells at different temperatures (23-$41^{\circ}C$) for different durations (0-6 h). The cells were grown under the given optimized conditions (0.5 mM IPTG concentration at $37^{\circ}C$ for 4 h), lysed by sonication and the protein was purified by ion exchange chromatography. On the average, 24.5 mg of recombinant protein was purified per liter of culture. The purified protein was later lyophilized and stored at $-80^{\circ}C$.
Dendrolimus punctatus tetravirus (DpTV) has been identified as a new member of the genus Omegatetravirus of the family Tetraviridae that may be related serologically to Nudaurelia capensis virus ($N{\omega}V$). To establish the function of DpTV RNA genome and to better understand the mechanism of viral replication, the putative RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) domain has been cloned and expressed in Escherichia coli. The recombinant protein was purified on a Ni-chelating HisTrap affinity column and demonstrated to initiate viral RNA synthesis in a primer-independent manner but not by terminal nucleotidyle transferase activity in the presence of $Mg^{2+}$ and RNA template. Mutation of the GDD to GAA interferes with the residues at the polymerase active site and metal ions, and thus renders the polymerase inactive.
Monoclonal antibody (mAb) Tg786 against Toxoplasma gondii has been found to detect a 42-kDa rhoptry protein (ROP6) which showed protease activity and host cell binding characteristics after secretion. Using the mAb, a colony containing a 3'-UTR was probed in a T. gondii cDNA expression library. A full length cDNA sequence of the rhoptry protein was completed after 5'-RACE, which consisted of 1,908 bp with a 1,443 bp ORF. The deduced amino acid sequence of ROP6 consisted of a polypeptide of 480 amino acids without significant homology to any other known proteins. This sequence contains an amino terminal stop transfer sequence downstream of a short neutral sequence, hydrophilic middle sequence, and hydrophobic carboxy terminus. It is suggested that the ROP6 is inserted into the rhoptry membrane with both N- and C-termini.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.35
no.2
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pp.109-115
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2000
FtsH is a membrane-bound, ATP-dependent metalloprotease that is involved in a variety of cellular functions including the regulation of responses to heat and stress shock. Previously, we had cloned and sequenced pneumococcal ftsH gene whose deduced amino acid sequence was very similar to those of several gram-positive bacteria and Escherichia coli, except for the N-terminal domain that was responsible for membrane anchoring. In order to better understand the role of Streptococcus pneumoniae FtsH, we expressed pneumococcal ftsH gene in Escherichia coli. When it was expressed from a strong promoter, $P_{tac}$, a considerable amount of the recombinant FtsH was produced, although the prolonged induction resulted in not only accumulation of breakdown products but also ceasing of the further growth of E. coli host. This indicated that the expression of the exogenous ftsH gene was tightly regulated since the excessive FtsH appeared detrimental to bacterial cells. In Western blotting, the pneumococcal FtsH protein, whether native or recombinant, was reactive to anti-E. coli FtsH serum. The observation that FtsH proteins were well conserved throughout the bacterial kingdom and its expression level was fine-tuned suggests an important role for this protein in the stress adaptation which may be related to infecting process by pneumococci.
NADH-quinone reductase was purified 22-fold from the cytosolic fraction of Streptomyces sp. Imsnu-1 to apparent hemogenity, with an overall yield of 9%, by the purification procedure consisting of ammonium, sulfate precipitation and DEAE Sephacryl S-200 and DEAE 5 PW chromatographies. Thes molecular mass of the enzyme determined by gel filtration chromatography was found to be 110 kDa. SDS-PAGE revealed that the enzyme consists of two sugunits with a molecular mass of 54 kDa. The enzyme contained 1 mol of FMN per subunit as a cofactor. The $A_{272}$ A$_{457}$ ratio was 6.14 and the molar extinction coefficients were calculated to be 20, 800 and 25, 400M$^{-1}$$cm^{-1}$ / AT 349 AND 457 nm, respectively. The N-terminal sequence of the enzyme contained the highly conserved fingerprint of ADP-binding domain. The enzyme used NADH as an electron donor and various quinones as electron acceptors. Cytochrome c was practically inactive. Air-stable flavin semiquinone was produced by the addition of NADH to the enzyme. Also, naphthosemiquinone was detected in the reaction mixture containing the enzyme.
Fate of the nascent thyrolglobulin (Tg) molecule is characterized by multimerization. To establish the formation of Tg multimers, the partially unfolded/reduced Tg or deoxycholate-treated/ reduced Tg was subjected to protein disulfide isomerase (PDI)-mediated multimerization. Oxidized glutathione/PDI-mediated formation of multimeric Tg forms, requiring at least an equivalent molar ratio of PDI/Tg monomer, decreased with increasing concentration of reduced glutathione (GSH), suggesting the oxidizing role of PDI. Additional support was obtained when PDI alone, at a PDI/Tg molar ratio of 0.3, expressed a rapid multimerization. Independently, the exposure of partially unfolded Tg to GSH resulted in Tg multimerization, enhanced by PDI, according to thiol-disulfide exchange. Though to a lower extent, a similar result was observed with the dimerization of deoxycholate-pretreated Tg monomer. Consequently, it is implied that intermolecular disulfide linkage may be facilitated at a limited region of unfolded Tg. In an attempt to examine the multimerization site, the cysteine residue-rich fragments of the Tg were subjected to GSH-induced multimerization; a 50 kDa fragment, containing three vicinal dithiols, was multimerized, while an N-terminal domain was not. Present results suggest that the oxidase as well as isomerase function of PDI may be involved in the multimerization of partially unfolded Tg or deoxycholate-treated Tg.
A gene related to high pristinamycin yield in Streptomyces pristinaespiralis was selected by amplified fragment length polymorphism (AFLP) and its functions were investigated by gene disruption. First, a 561 bp polymorphic sequence was acquired by AFLP from high-yield recombinants compared with the S. pristinaespiralis ancestor ATCC25486, indicating that this approach is an effective means of screening for valuable genes responsible for antibiotic yield. Then, a 2,127 bp open reading frame of a gene designated spy1 that overlaps with the above fragment was identified and its structure and biological functions were investigated. In silico analysis of spy1 encoding a deduced 708-amino-acid-long serine/threonine protein kinase showed that it only contains a catalytic domain in the N-terminal region, which is different from some known homologs. Gene inactivation of chromosomal spy1 indicated that it plays a pleiotropic regulatory function in pristinamycin production, with a positive correlation to pristinamycin I biosynthesis and a negative correlation to pristinamycin II biosynthesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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