As a tumor suppressor homologue during mitosis, Chk2 is involved in replication checkpoints, DNA repair, and cell cycle arrest, although its functions during mouse oocyte meiosis and early embryo development remain uncertain. We investigated the functions of Chk2 during mouse oocyte maturation and early embryo development. Chk2 exhibited a dynamic localization pattern; Chk2 expression was restricted to germinal vesicles at the germinal vesicle (GV) stage, was associated with centromeres at pro-metaphase I (Pro-MI), and localized to spindle poles at metaphase I (MI). Disrupting Chk2 activity resulted in cell cycle progression defects. First, inhibitor-treated oocytes were arrested at the GV stage and failed to undergo germinal vesicle breakdown (GVBD); this could be rescued after Chk2 inhibition release. Second, Chk2 inhibition after oocyte GVBD caused MI arrest. Third, the first cleavage of early embryo development was disrupted by Chk2 inhibition. Additionally, in inhibitor-treated oocytes, checkpoint protein Bub3 expression was consistently localized at centromeres at the MI stage, which indicated that the spindle assembly checkpoint (SAC) was activated. Moreover, disrupting Chk2 activity in oocytes caused severe chromosome misalignments and spindle disruption. In inhibitor-treated oocytes, centrosome protein ${\gamma}$-tubulin and Polo-like kinase 1 (Plk1) were dissociated from spindle poles. These results indicated that Chk2 regulated cell cycle progression and spindle assembly during mouse oocyte maturation and early embryo development.
Kim, Kie-Suck;Min, Bu-Kie;Rhee, Hee-Sub;Hong, Kie-Youn;Lee, Sun-Young;Park, Heon-Jin;Kim, Heung-Gon
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.26
no.3
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pp.369-375
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1999
Objective: To evaluate the effect of serum obtained before and after treatment for endometriosis on in vitro fertilization and development of two cell mouse embryo. Design: Pretreatment and posttreatment comparoson of fertilization of mouse oocyte and embryo development in serum supplement from patients with endometriosis; result were compared using Stuent T-test analysis. Method: Infertility Clinic, Department of Obstetrics and Gynecology, Collage of Medicine, Won kwang university, Korea. Patients was chosed eleven consecutive women with endometriosis. Interventions was all patient underwent laparoscopic or conservative surgery. This was followed by a 6-month course of burserelin acetate $900{\mu}g/d$. Main outcome was measured total number of fertilization and embryo that was fertilization after 24 hours and reached blastocyst stage after 72 hours of incubation were compared before and after treatment. Result: Before treatment, 47% of the oocyte were fertilized and 31% of the embryo reached blastocyst stage. After treatment, Significantly more fertilized and Significantly more embryo developed to blastocyst on the stage I and II of endometriosis. Conclusion: The fertilization and embryo toxicity of serum samples from patients with endometriosis is lost after treatment.
Fertilization is a complex process comprised of numerous steps. During fertilization, two highly specialized and differentiated cells (sperm and egg) fuse and subsequently trigger the development of an embryo from a quiescent, arrested oocyte. Molecular interactions between the sperm and egg are necessary for regulating the developmental potential of an oocyte, and precise coordination and regulation of gene expression and protein function are critical for proper embryonic development. The nematode Caenorhabditis elegans has emerged as a valuable model system for identifying genes involved in fertilization and the oocyte-to-embryo transition as well as for understanding the molecular mechanisms that govern these processes. In this review, we will address current knowledge of the molecular underpinnings of gamete interactions during fertilization and the oocyte-to-embryo transition in C. elegans. We will also compare our knowledge of these processes in C. elegans to what is known about similar processes in mammalian, specifically mouse, model systems.
Follicular fluid meiosis-activating sterol (FF-MAS) has been suggested as a positive factor which could improve the oocyte quality and subsequent embryo development after in vitro fertilization. However, FF-MAS is a highly lipophilic substance and is hard to detect in studying the relationship between MAS and quality of oocyte maturation. The present study focused on the expression of lanosterol 14${\alpha}$-demethylase (LDM), a key enzyme that converts lanosterol to FF-MAS, on mouse oocyte maturation and its potency on development. LDM expression was strong in gonadotropin-primed germinal vesicle stage oocytes, weak after germinal vesicle breakdown (GVBD), and then strong in MII stage oocytes. The LDM-specific inhibitor azalanstat significantly inhibited oocyte fertilization (from 79.4% to 68.3%, p<0.05). Also, azalanstat (5 to 50 ${\mu}M$) decreased the percentage of blastocyst development dosedependently (from 78.7% to 23.4%, p<0.05). The specific inhibition of sterol ${\Delta}14$-reductase and ${\Delta}7$-reductase by AY9944 accumulates FF-MAS and could increase blastocyst development rates. Additionally, in the AY9944 group, the rate of inner cell mass (ICM)/ total cells was similar to that of in vivo development, but the rate was significantly decreased in azalanstat treatment. In conclusion, LDM, the key enzyme of FF-MAS production, may play an important role in fertilization and early development of the mouse embryo, especially in vitro.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.115-115
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2002
To evaluate the correlations between the expression of cyclin B1 mRNA and protein after stimulation and oocyte activation and development of nuclear transferred mouse embryos, this study was performed. The oocyte activation was induced by 7% ethanol or 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ Ca-ionophore without (single) or with (combined) 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ cycloheximide (CH). Cyclin B1 mRNA and protein in mouse oocytes was evaluated by PCR and western blot. The activation and blastocyst development in both single (P<0.05) and combined (P<0.01) stimulation was higher than in non-activated group. The cyclin B1 mRNA and protein levels were significantly reduced in both single and combined stimulation groups (P<0.05), respectively. Cyclin B1 mRNA expression showed a negative correlation between activation and blastocyst development in both single and combined stimulation groups. And also the expression of cyclin B1 protein showed a negative correlation with between oocyte activation and blastocysts development in both single and combined stimulation groups. In conclusion, it may suggest that single and combined stimulation increases the oocyte activation and blastocyst development of nuclear transferred embryos, because it induces the degradation of cyclin B1 mRNA and protein after activation in enucleated mouse oocytes.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.116-116
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2002
Further development of reconstructed embryos may be dependent upon the synchronization of donor nucleus and recipient cytoplasm at cell fusion, To control the synchronization of donor and recipient cells, the enucleated MII arrested oocytes are artificially stimulated prior to embryo reconstruction. Destruction of cyclin B results in the exit of cells from M-phase of cell cycle. This study was designed to investigate the effects of single or combined stimulation affected cyclin B1 mRNA and protein levels in mouse oocytes. The oocyte activation was induced by 7% ethanol or 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ Ca-ionophore without (single) or with (combined) 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ cycloheximide. Competitive quantitative PCR for cyclin Bl mRNA and western blot analysis for cyclin B1 protein was preformed in mouse oocytes. Cyclin B1 mRNA level was significantly reduced in single (P<0.05) and combined (P<0.05) stimulation groups. However, this level did not change in non-activated group and increased in intact group. Cyclin B1 protein level was also significantly reduced in both single (P<0.05) and combined (P<0.05) stimulation groups. In conclusion, single and combined stimulation induces the degradation of cyclin B1 mRNA and protein after activation in enucleated mouse oocytes.
Stored maternal factors in oocytes regulate oocyte differentiation into embryos during early embryonic development. Before zygotic gene activation (ZGA), these early embryos are mainly dependent on maternal factors for survival, such as macromolecules and subcellular organelles in oocytes. The genes encoding these essential maternal products are referred to as maternal effect genes (MEGs). MEGs accumulate maternal factors during oogenesis and enable ZGA, progression of early embryo development, and the initial establishment of embryonic cell lineages. Disruption of MEGs results in defective embryogenesis. Despite their important functions, only a few mammalian MEGs have been identified. In this review we summarize the roles of known MEGs in mouse fertility, with a particular emphasis on oocytes and early embryonic development. An increased knowledge of the working mechanism of MEGs could ultimately provide a means to regulate oocyte maturation and subsequent early embryonic development.
It has been wel known that phospholipase C(PLC) plays an important role in the intracellular signaling in a variety of cell types. However, involvement of PLC in mouse oocyte maturation and preimplantation embryo development remains unknown. The present study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturatio and preimplantation embryo development study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturation and preimplantation embryo development by the competitive reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR method). PLC \gamma 1 mRNA (0.1 fg) was readily detected in germinal vesicle (GV)-stage oocyte and its level was reduced as meiotic resumption proceeded. PLC-\beta 1 mRNA (<0.1 fg) as detected at low level at GV-stage oocytes and scarcely detected at germinal vescle breakdown (GVBD)-stage oocytes. After fertilization, both PLC \beta 1 and \gamma 1 mRNA levels began to increase at morula-stage embryos (0.2 fg) and were more prominent in blastocyst-stage embryos(1 fg). to elucidate the possible involvement of PLC via protein kinase C(PKC) pathway during oocyte maturation and preimplantation embryo development , the effects of sphingosine (PKC inhibitor), sn-$diC_{8}$(PKC activator) anc U73122 (PLC ingibitor) were examined. Treatment of GV-stage oocytes with sphingosine (20 \mu M) facilitated the meiotic resuption by 10-20 over the control within 1 h as judged by GVBD, whereas U73122 failed to show any significant effect. U73122 (10 \mu M) effectively blocked the compaction of morula, while sn-$diC_{8}$(50 \mu M). In summary, the present study shows that the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 are expressed in a developmental stage-specific manner and PLC-PKC pathway may be involved in early preimplantation embryo development.
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