Lee, Ji-Eun;Cho, Kyu Eun;Lee, Kyung Eun;Kim, Jaesang;Bae, Yun Soo
Molecules and Cells
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v.37
no.12
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pp.907-911
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2014
The function of reactive oxygen species (ROS) as second messengers in cell differentiation has been demonstrated only for a limited number of cell types. Here, we used a well-established protocol for BMP2-induced neuronal differentiation of neural crest stem cells (NCSCs) to examine the function of BMP2-induced ROS during the process. We first show that BMP2 indeed induces ROS generation in NCSCs and that blocking ROS generation by pretreatment of cells with diphenyleneiodonium (DPI) as NADPH oxidase (Nox) inhibitor inhibits neuronal differentiation. Among the ROS-generating Nox isozymes, only Nox4 was expressed at a detectable level in NCSCs. Nox4 appears to be critical for survival of NCSCs at least in vitro as down-regulation by RNA interference led to apoptotic response from NCSCs. Interestingly, development of neural crest-derived peripheral neural structures in Nox4-/- mouse appears to be grossly normal, although Nox4-/- embryos were born at a sub-Mendelian ratio and showed delayed over-all development. Specifically, cranial and dorsal root ganglia, derived from NCSCs, were clearly present in Nox4-/- embryo at embryonic days (E) 9.5 and 10.5. These results suggest that Nox4-mediated ROS generation likely plays important role in fate determination and differentiation of NCSCs, but other Nox isozymes play redundant function during embryogenesis.
By nuclear transplantation technology twenty eight mice have been produced after transfer of heterozygous biparental eggs. Also heterozygous gynogenetic eggs with two female pronuclei and heterozygous androgenetic eggs with two male pronuclei have been obtained by injecting a male or female pronucleus with Sendai virus into the perivitelline space of enucleated haploid zygotes at pronuclear stage. The success rate of enucleation, karyoplast injection and fusion of both the pronuclei was 80.3, 83.4 and 81.8%, respectively. The overall pronuclei fusion rates by this technique were 56, 50 and 56% in biparental, gynogenetic and androgenetic eggs, respectively. The evidence was ascertained that the gynogenetic and androgenetic eggs were also able to develop in vitro up to blastocyst stage, even though their developmental potential was greatly diminished beyond 2-cell stage. The gynogenetic eggs were able to develop in vivo up to day 10 of pregnancy, while the androgenetic eggs failed to develop in vivo during the same period.
The establishment of porcine embryonic stem cells (ESCs) from porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) blastocysts is influenced by in vitro culture day of porcine reconstructed embryo and feeder cell type. Therefore, the objective of the present study was to determine the optimal in vitro culture period for reconstructed porcine SCNT embryos and mouse embryonic fibroblast (MEF) feeder cell type for enhancing colony formation efficiency from the inner cell mass (ICM) of porcine SCNT blastocysts and their outgrowth. As the results, porcine SCNT blastocysts produced through in vitro culture of the reconstructed embryos for 8 days showed significantly increased efficiency in the formation of colonies, compared to those for 7 days. Moreover, MEF feeder cells derived from outbred ICR mice showed numerically the highest efficiency of colony formation in blastocysts produced through in vitro culture of porcine SCNT embryos for 8 days and porcine ESCs with typical ESC morphology were maintained more successfully over Passage 2 on outbred ICR mice-derived MEF feeder cells than on MEF feeder cells derived from inbred C57BL/6 and hybrid B6CBAF1 mice. Overall, the harmonization of porcine SCNT blastocysts produced through in vitro culture of the reconstructed embryos for 8 days and MEF feeder cells derived from outbred ICR mice will greatly contribute to the successful establishment of ESCs derived from porcine SCNT blastocysts.
Two-pore domain $K^+(K_{2P})$ channels contribute to setting the resting membrane potential in excitable and nonexcitable cells. However, the cellular or tissue distribution and function of $K_{2P}$ channels expressed in mammalian germ cells and reproductive organs have not yet been reviewed by researchers. In this review, we focus on expression, localization and expected properties of $K_{2P}$ channels in germ cells and reproductive organs. The $K_{2P}$ channels are expressed in human cytotrophoblast cells, myometrium, placental vascular system, uterine smooth muscle, and pregnant term tissue, suggesting that $K_{2P}$ channels might be involved in the processes of pregnance. The $K_{2P}$ channels are also expressed in mouse zygotes, monkey sperm, ovary, testis, germ cells, and embryos of Korean cattle. Interestingly, $K_{2P}$ channels are modulated by changes in temperature and oxygen concentration which play an important role in embryonic development. Also, $K_{2P}$ channels are responsible for $K^+$ efflux during apoptotic volume decreases in mouse zygotes. These expression patterns and properties of the $K_{2P}$ channels in reproductive organs and germ cells are likely to help the understanding of ion channel-related function in reproductive physiology.
The tremendous changes of uterine endometrium are observed during early pregnancy and protease and their inhibitors are involved in regulation of cell proliferation and remodeling of the tissues through remodeling the extracellular matrix (ECM). Some of the proteases and protease inhibitors have been suspected to a factor in endometrial changes but many parts of their expression profiles and the physiological roles are not uncovered. To evaluate the functional roles of them, in this study the expression profiles of proteases and protease inhibitors were analyzed using real-time quantitative PCR analysis. Mmp9 (matrix metalloproteinase 9) mRNA levels peaked on day 4 at the time of implantation. On the other hand, Ela2 (neutrophil elastase, NE) mRNA levels were peaked on day 2 of pregnancy. Its expression were decreased until day 4 of pregnancy but increased rapidly until day 7 of pregnancy and decreased again. NE inhibitor Slpi (secretory leukocyte protease inhibitor, SLPI) mRNA levels were related with the implantation stage and with the levels of Ela2. At the time of implantation the expression levels of Slpi mRNA were about 5 times higher than the Ela2 mRNA in the uterus. In the implantation stage embryos, Mmp9 specific mRNA was only detected at the blastocyst. On the other hand, the expression level of SLPI was higher than that of the Ela2 mRNA at blastocyst and 4.5 day p.c. embryos. Based on these results it is suggested that MMP9, SLPI, and NE have important physiological role in embryo implantation both in uterus and embryos.
In mammalian development, the embryo which is in the process of compaction, involves a progressive flattening of blastomeres against each other with the consequence that the embryo assumes a spherical shape. This stage happens in the first differentiation. The present study was aimed to examine the involvement of other metal ions in compaction by treating with various divalent cations in the absence of $Ca^{++}$. When 8-cell embryos were cultured in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs, they developed to 16-cell stage but did not compaction, and degenerated after 48hrs of culture. Embryos were cultured in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs and then transferred to the control medium showed the normal compaction afterwards. When 8-cell embryos were cultured in the presence of $Ni^{++}$, known as a $Ca^{++}$ inhibitor, they cleaved to 16-cell stage but did not compact in the absence of $Ca^{++}$. On the other hand, embryos cultured in the media containing both $Ca^{++}$ and $Ni^{++}$ developed normally so that they underwent compaction during culture for 48hrs. However, they failed to hatch during further 24hrs in the same medium, indicationg that $Ni^{++}$ may exert some harmful effects. Embryos grow in the control medium that contained $Ca^{++}$ but not $Ni^{++}$, developed to the hatched blastocysts. The treatment with $Cd^{++}$$10^{-1}$,$10^{-2}{\mu}M$, $Mn^{++}$ or $Ba^{++}$ 10,100, $1000{\mu}M$ in $Ca^{++}$-free medium, respectively, inhibited compaction and embryonic degeneration began as in $Ca^{++}$-free medium. When 3, 5, 10mM of $Sr^{++}$, known as a substitute for $Ca^{++}$ in cell, was added to $Ca^{++}$-free medium, respectively, compaction was induced unlike the above metal ions. Embryos were cultured in $Sr^{++}$ developed to blastocysts, but failed to hatch after 72hrs and degenrated. On the other hand, when embryos were cultured in 3, 5, 10mM of $Sr^{++}$ but in $Ca^{++}$-free medium for 24hrs respectively and then transferred to the control, they showed the similiar development as that in the control.
The objective of this study was to investigate the in vitro / in vivo embryonic development after vitrification of mouse zygotes and the chrom osomal normality of delivered live young after embryo transfer. Mouse IVF zygotes were cryopreserved by vitrification using vitrification solution, EFS40 (40% ethylene glyc이, 30% Ficoll a and 0.3 M sucrose in phosphate buffer saline c containing 10% FBS ) . After mouse zygotes were exposed to EFS40 at 25"C for 30 sec., they were immediately plunged into LN$_2$. Vitrified thawed mouse zygotes were cultured upto bIastocysts in M16 for 4 days. The rates of in vitro development were 71.5% under this condition. Cultured blastocysts were transferred to recipients (3 day of pseudopregnant) on one or both uterus horns (6-8 embryos per a uterus horn). And all recipients were allowed to produce litters. The results obtained in these experiments were summarized as follows: The pregnancy rates and in vivo survival rates, live fetus rates, for vitrified zygotes (80.0, 39.6%) were not significantly difference in those of control zygotes (77.8%, 50.0%). Also, all of live-born young mice were chromosomally normal (n=40). This results suggested that proposed rapid vitrification procedures can be effectively use in 1-cell mouse zygotes cryopreservation.
There are replete numbers of reports which have apparently shown that established patterns of methylation are critical for normal mammalian development. Here, we report expression of the DNA methyltransferases (Dnmts) family during mouse early development. Transcription of Dnmt1o occurs in one-cell and morula stage embryos, whereas Dnmtls transcripts were detectable in all cells and tissues examined during the study. Dnmt3a1 transcript was detected in all cells and Dnmt3a2 transcript was particularly detected in the oocyte and 1-cell stages. Low level Dnmt3b1 transcripts were expressed ubiquitously in oocyte, 1-cell, and preimplantation embryos except $2{\sim}4cell$ stages. Dnmt3b3 transcripts were only detected in E7.5 embryo and ovary. Furthermore, Dnmt31 transcripts were detectable in all cells and tissues examined. Unlike Dnmtl, both Dnmt3a and Dnmt3b proteins existed in the nucleus of preimplantation embryos till the morula stage. These Results suggest that differences Dnmts expression level exist and genomic DNA methylation patterns may be determined partly through differential expression of Dnmts during early development.
Mammalian ovary consists of various growing stages of follicles. Ovarian follicular growth and differentiation, however, can be distinguished into recruitment, growth, selectiona nd ovulation. while only minute of the selected follicles ovulate their oocytes, all the rest follicles disappear by atresia. this atresia is an important event of which physiological mechanism must be resolved. The present study was carried out to investigate the effects of various doses of pregnant mare's serum gonadotropin (PMSG) on the oocyte quality, ovulation rate, and the early embryonic development in immature mice. Immature mice were administrated with 5, 20, or 40 IU PMSG. At every 12 hour up to 72 hour after treatment, body and ovary weights were measured. Oocytes were flushed from the oviducts under the dissecting microscope and observed under the inverted microscope. Late 2-cell embryos were collected from the mice which were superovulated by the same dosage of PMSG followed by 5 IU hCG 47 hours after PMSG-treatment. The percentage of abnormal oocytes was higher in 20 or 40 IU PMSG-treated animals than 5 IU PMSG-treated ones. Ovulation occured at 12 hours afger PMSG injection in all experimental groups. The percentage of retrieved abnormal oocytes increased in the 20 or 40 IU PMSG-treated goups but not in 5 IU PMSG-treated group. There was no significant difference in the mating rate among the groups [52.6% (10/19), 66.7% (10/15), 44.0% (11/25) : 5, 20, 40 IU group respectively] ; however, ther was a significant (p<0.01) increase of embryo retrieval rates in 5 and 20 IU-treated groups compared with that in 40 IU-treated group [89.2% (239-268), 85.5% (224/262), 40.0% (18/45)]. There was significant (p<0.01) increase of embryo development rates in 5 IU-treated group compared with that in 20 and 40 IU-treated group [231/239(96.7), 179/224(79.9), 77.8(14/18)]. In conclusion, higher doses of PMSG injection increased the occurrence of abnormal oocytes ovulation in immature mice. The most of oocytes collected from 5 or 20 IU-PMSG-treated group has fertilizabioity. But in mice injected iwth higher doses of PMSG, their oocytes exhibit less fertilizability and, even fertilized, all oocytes are not fully capable of development.
In this study, the production of transgenic embryo was attempted by microinjection or round spermatid cultured with foreign DNA. At first, the expression of haploid spermatids specific gene, mTP1 in mouse and hPrm2 in hamster spermatids were investigated by RT-PCR method in testes of young mice and hamster testis. The specific gene expression first appeared at 18 days post partum (dpp) in mice spermatid and 20 dpp in hamster spermatid. Therefore, the round spermatids isolated from 17 dpp mice and 19 dpp hamster were used for the introduction of foreign EGFP gene into haploid round spermatids. For the introduction of EGFP gene haploid round spermatids suspended in medium including EGFP gene were treated with a different electric field strength at 0.11, 0.18 and 0.44 ㎸/cm. After electrical stimulation, viability of testicular sperm cells and 67.6%, 66.4% and 49.9%, in mice and 62.6%, 57.9% and 27% in hamster, respectively. These values were significantly lower than those of non-treated control groups 80.5% in mouse and 69.1% in hamster After 72 hrs culture, the highest expression rate of EGFP gene, 28.5% in mice and 32.1% in hamster were obtained from tile spermatogenic cells electroporated by the field strength or 0.18 ㎸/cm. Then, the ability of fertilization and embryonic development of haploid spermatids transfected with foreign EGFP gene were estimated by the microinjection of spermatids into hamster oocytes. The Irate pronuclear formation rate (77.5%) was lower than non-treated control (80%), and the cleavage rate of the treated group (58.8%) was lower than control (65%). To prove the foreign EGFP integration in hamster embryos, 2-cell stage hamster embryos were subjected to the observation under the fluorescence microscope, and the PCR analysis. As a result, about 44% of 2-cell embryos were showed the integration of EFGP gene into their genome. Therefore, These results suggest the possibility to produce transgenic hamsters by microinjection of haploid spermatid transfected with foreign DNA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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