A novel Chryseobacterium sp. JK1 strain isolated from soil had been reported that this isolate produced large amount of extracellular protease at mesophilic temperature in previous study. The optimal temperature and pH of extracellular protease were $40^{\circ}C$ and 7.0, respectively, showing narrow range of optimal temperature and relatively broad activity from pH 6.0 to 9.0. In addition, the protease showed greatest activity against skim milk and lowest against bovine serum albumin (BSA). The protease strongly inhibited by ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), ethylene glycol tetraacetic acid (EGTA) or phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), and addition of cation $Ag^+$ or $Cu^{2+}$, and slightly inhibited by $Al^{3+}$. No significant inhibition was found with pepstatin, and addition of cation, $K^+$, $Ca^{2+}$, $Na^+$, $Fe^{2+}$ or $Mg^{2+}$. On the contrary, protease was enhanced by addition of divalent cation $Mn^{2+}$ (5 mM). Zymography analysis of concentrated culture supernatant revealed two major bands at 67 and 145 kDa. These results suggest that Chryseobacterium sp. JK1 strain produced extracellular neutral serine proteases which could apply in food industry.
Objective: This study was conducted to determine catalytic properties of wheat phytase with exopolyphosphatase activity toward medium-chain and long-chain inorganic polyphosphate (polyP) substrates for comparative purpose. Methods: Exopolyphosphatase assay of wheat phytase toward polyP75 (medium-chain polyP with average 75 phosphate residues) and polyP1150 (long-chain polyP with average 1150 phosphate residues) was performed at pH 5.2 and pH 7.5. Its activity toward these substrates was investigated in the presence of Mg2+, Ni2+, Co2+, Mn2+, or ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA). Michaelis constant (Km) and maximum reaction velocity (Vmax) were determined from Lineweaver-Burk plot with polyP75 or polyP1150. Monophosphate esterase activity toward p-nitrophenyl phosphate (pNPP) was assayed in the presence of polyP75 or polyP1150. Results: Wheat phytase dephosphorylated polyP75 and polyP1150 at pH 7.5 more effectively than that at pH 5.2. Its exopolyphosphatase activity toward polyP75 at pH 5.2 was 1.4-fold higher than that toward polyP1150 whereas its activity toward polyP75 at pH 7.5 was 1.4-fold lower than that toward polyP1150. Regarding enzyme kinetics, Km for polyP75 was 1.4-fold lower than that for polyP1150 while Vmax for polyP1150 was 2-fold higher than that for polyP75. The presence of Mg2+, Ni2+, Co2+, Mn2+, or EDTA (1 or 5 mM) exhibited no inhibitory effect on its activity toward polyP75. Its activity toward polyP1150 was inhibited by 1 mM of Ni2+ or Co2+ and 5 mM of Ni2+, Co2+, or Mg2+. Ni2+ inhibited its activity toward polyP1150 the most strongly among tested additives. Both polyP75 and polyP1150 inhibited the monophosphate esterase activity of wheat phytase toward pNPP in a dose-dependent manner. Conclusion: Wheat phytase with an unexpected exopolyphosphatase activity has potential as a therapeutic tool and a next-generational feed additive for controlling long-chain polyP-induced inappropriate inflammation from Campylobacter jejuni and Salmonella typhimurium infection in public health and animal husbandry.
Three hundreds thirty two bacterial colonies which were able to degrade crude oil were isolated from soil samples that were contaminated with oil in Daejeon area. Among them, one bacterial strain was selected for this study based on its higher oil degrading ability, and this selected bacterial strain was identified as Acinetobactor sp. B2 through physiological-biochemical tests and analysis of its 16S rRNA sequence. Acinetobactor sp. B2 was able to utilize various carbohydrates but did not utilize trehalose and mannitol as a sole carbon source. Acinetobactor sp. B2 showed a weak resistance to antibiotics such as kanamycin, streptomycin, tetracycline and spectinomycin, but showed a high resistance up to mg/ml unit to heavy metals such as Ba, Li, Mn, AI, Cr and Pb. The optimal growth temperature of Acinetobactor sp. B2 was $30^{\circ}C.$ The lipase produced by Acinetobactor sp. B2 was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Toyopearl 650M ion exchange chromatography and Sephadex gel filtration chromatography. Its molecular mass was about 60 kDa and condition for the optimal activity was observed at $40^{\circ}C$ and pH 10, respectively. The activation energy of lipase for the hydrolysis of pnitrophenyl palmitate was 2.7 kcal/mol in the temperature range of 4 to $37^{\circ}C,$ and the enzyme was unstable at the temperature higher than $60^{\circ}C.$ The Michaelis constant $(K_m)\;and\;V_{max}$ for p-nitrophenyl palmitate were 21.8 uM and $270.3\;{\mu}M\;min^{-1}mg^{-1},$ respectively. This enzyme was strongly inhibited by 10 mM $Cd^{2+},\;Co^{2+},\;Fe^{2+},\;Hg^{2+},$ EDTA and 2-Mercaptoethalol.
The extracellular endoinulase from Streptomyces sp. 556 was purified and characterized, The culture broth was fractionated by ammonium sulfate saturation followed by DEAE-cellulose column chromatography and 5ephadex G-200 gel filtration, The ultimately purified fraction revealed a single band in 7.5% polyacrylamide gel electropherogram. The purified enzyme showed the maximal activity at pH 5.5-6.0 and $50^{\circ}C$, but lost 93% of inulase activity after 30 min incubation at $55^{\circ}C$ . The essen.tial amino acid residue for catalytic activity appeared to be tryptophan. This endo inulase was activated by $Mn^{2+}$, whereas inactivated by $Ag^{+}$, $Hg^{+}$, $Cu^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Fe^{3+}$ and $Mo^{6+}$ EDTA and 8-hydroxyquinoline inhibited the enzyme so that the enzyme was considered to be a metalloenzyme. The Km value for inulin was 0.287 mM, and no invertase or $\alpha$-glucosidase activity was found in the enzyme.
CHO Deuk Moon;PYEUN Jae Hyeung;BYUN Dae Seok;KIM Chang Yang
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.16
no.3
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pp.216-224
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1983
This work was undertaken to obtain some characteristics of proteolytic enzyme of marine gastropods such as sea hare, Aplysia kurodai, top shell, Turbo cornutus, and abalone, Haliotis discus hannai. An influence of pH, temperature and some chemicals on proteolytic activity of the crude enzyme extracted from digestive tract of the samples was taken into account and the stability of the enzyme during the storage at low temperature was also discussed. In comparison of the activities of the crude enzyme from the samples to the optimum conditions, it was characterized that abalone has twice or the more times higher activities than the other two species of the gastropoda in the acid and weak acid region, while, in the alkaline region, sea hare has six or the more times higher acitivities than the other two species. The proteolytic activity was facilitated by $Mn^{2+}$, some reducing agents, EDTA and DTT, and inhibited by $Hg^{2+}$ and SDS, but the other chemicals were not significantly affected to the activity. The low temperature storage of the enzymes of sea hare and top shell at $0^{\circ}C\;or\;-20^{\circ}C$ was not affected to the enzymic activity under the optimum pH condition except in the alkaline region. On the other hand, the low temperature storage was brought about no significant effect on the activity of the enzymes extracted from abalone under the optimum condition of the weak acid region, but apparently influenced to the activity under the optimum condition of the acid and alkaline region.
Among 27 Bacillus sp. isolated from Meju, a traditional Korean soybean fermented food, a strain MJ-226 was selected due to its strong fibrinolytic activity, and it was identified to be Bacillus subtilis MJ-226 according to morphological and biochemical characterization and sugar utilization. The fibrinolytic enzyme of B. subtilis MJ-226 was maximally produced by cultivating in the Tryptic Soy Broth (TSB) for 24~26 h at $37^{\circ}C$, and the enzymes activity was promoted with adding glucose, fructose, peptone or yeast extract to TSB. The fibrinolytic enzyme was stable at the range of pH from 6.0 to 8.0, and between 35 and $40^{\circ}C$. Also, when the crude enzyme was exposed to various metal ions and chemical inhibitors for 12 h, the enzyme stability was maintained by $MnSO_4$, $CaCl_2$, KCl, and NaCl. However, the stability was destroyed by treatment with $CuSO_4$, $MgSO_4$, $ZnSO_4$, $FeSO_4$, and $BaCl_2$, and the enzyme was unstable in the presence of chemical inhibitors such as iodoacetic acid, leupeptin, phenylmethanesulphonyl fluoride (PMSF), sodium dodecyl sulfate (SDS), thiourea, trans-1,2-diaminocyclohexane-N,N,N',N'-tetraacetic acid (CDTA) and ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA).
An exoinulase-producing bacterium was isolated from soil, and identified as Streptomyces sp. The maximum inulase production was achieved when inulin as carbon source and soybean meal as organic nitrogen source were included in the culture. The exoinulase was considered to be a constitutive enzyme produced not only by inulin but also by soluble starch or glucose. The purified enzyme on DEAE-cellulose and Sephadex G-200 column showed the maximal activity at $pH\;5.5{\sim}6.0$ and $50^{\circ}C$, but lost 65% inulase activity at $50^{\circ}C$ after 1 hour incubation. This exoinulase was activated by $Mn^{+2}$, wherease more that 80% inactivation was observed with $Ag^+$, $Hg^{+2}$ and $Fe^{+3}$. The enzyme was possibly a metalloenzyme in that EDTA and 8-hydroxyquinoline inhibited the enzyme. Km values for inulin (16.51 mM) and sucrose (14.62 mM) were in very close range suggesting mostly equal affinity toward the subatrates. However, the maximum velocity for inulin was 10 times greater than for sucrose.
The influence of urushiol, as an allergen on laccase property of Fomitella fraxinea was investigated. The enzyme production was reached to the highest level after 10 days, cultivation and the activity and mycelial biomass were increased by 2.5 and 1.5 folds, respectively, by adding urushiol in the culture medium. In liquid cultures using a Cu Mn-free medium, laccase lactivity was decreased by 3.8-9.2 folds, with similar dry cell weight. Two isoenzymes, were purified using anion exchange, hydrophobic interaction and size-exclusion chromatographies. Both isoenzymes are monomeric proteins, with $M_W$ around 67 kDa(Lac1) and 66 kDa(Lac2), and isoelectric points of 3.67 and 3.81. The optimal conditions for purified isoenzymes were found to be pH 4.5-5.0 and $30-35^{\circ}C$. Activity decreased by the addition of $Fe^{2+}$, $Mg^{2+}$, $Na^+$, and strongly inhibited by EDTA and sodium azide.
Kim, Hyun-Kyoung;Lee, Jae-Chang;Kang, Nam-Hyun;Kim, Song-Hee;Kim, Jong-Guk;Chung, Ki-Chul
Journal of Life Science
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v.17
no.5
s.85
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pp.625-633
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2007
We isolated a new extracellular alginate lyase-producing microorganism, which displayed alginate-depolymerizing activity in plate assays, from coastal soils in Wando, Jeollanam-do, Korea. This alginate-depolymerizing bacterium belonged to the genus Streptomyces and it was named Streptomyces sp. MET 0515. An extracellular alginate lyase(ALY1) secreted by Streptomyces sp. MET 0515, was purified to homogeneity by a combination of acetone precipitation, anion-exchange chromatography (Q-Sepharose and DEAE-Sepharose) and Sephacryl S-200 HR gel filtration chromatography. Its molecular mass was 26 kDa as determined by SDS-PACE analysis. The enzyme had an optimal temperature of $70^{\circ}C$ for its activity, and was most active at pH 7.5. The thermal and pH stability were $0-50^{\circ}C$, and pH 6.0-9.0, respectively. The enzyme activity was stimulated by 1mM $Mn^{2+}$, and inhibited by 1mM $Fe^{3+}$, 1mM EDTA and 1mM $Zn^{2+}$. Preliminary analysis of substrate specificity showed that this alginate lyase had activity on both poly-alpha 1,4-L-guluronate and poly-beta 1,4-D-mannuronate in the alginate molecule.
A strain of Streptomyces sp. which producing a metal containing proteolytic enzyme was isolated from soil and some properties of this enzyme were investigated. The following results were obtained. 1. Optimal pH and temperature of this enzyme were pH7.0 and 37$^{\circ}C$ 2. This enzyme was easily inactivated with heat treatment: for example, by the treatmentat 37$^{\circ}C$ for 100 minutes the activity of the enzyme was decreased to about 50 per cent of intial actively but this enzyme was stable at neutral pH. 3. The activity of this enzyme was not inhibited by $Mg^{++}$, $_Mn^{++}$, $Ca^{++}$, Pb$^{++}$, or $Ba^{++}$ ect. but strongly inhibited by Hg$^{++}$, Co$^{++}$, Ag$^{+}$, Cu$^{++}$, or Cd$^{++}$. 4. This enzyme was strongly inhibited by EDTA but was not inhibited by oxalic acid, citric acid, 2, 4-dinitrophenol, $\varepsilon$-aminocaproic acid, cysteine, or thiourea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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