Recent advances in cell biological and genetic researches have revealed that mitochondrial morphology is highly dynamic and regulated by multiple molecular factors including dynamin-related proteins (DRPs). Considering that the mitochondria play critical roles in the cellular metabolism via ATP synthesis, calcium homeostasis in cooperation with endoplasmic reticulum, and apoptosis, the failure of mitochondrial dynamics is infrequently related to the failure in the normal growth and cellular integrity. In this respect, alteration of mitochondrial dynamics may greatly affect the development of nervous system. In this short review, we discussed molecules involved in the control of mitochondrial dynamics, and provide some perspectives on their significance in the neuronal development.
Evidence shows that nerve injury triggers mitochondrial dysfunction during axonal degeneration. Mitochondria play a pivotal role in axonal regeneration. Therefore, normalizing mitochondrial energy metabolism may represent an elective therapeutic strategy contributing to nerve recovery after damage. Photobiomodulation (PBM) induces a photobiological effect by stimulating mitochondrial activity. An increasing body of evidence demonstrates that PBM improves ATP generation and modulates many of the secondary mediators [reactive oxygen species (ROS), nitric oxide (NO), cyclic adenosine monophosphate (cAMP), and calcium ions (Ca2+)], which in turn activate multiple pathways involved in axonal regeneration.
The mitochondrial genome encodes 13 proteins that are components of the oxidative phosphorylation system (OXPHOS), suggesting that precise regulation of these genes is crucial for maintaining OXPHOS functions, including ATP production, calcium buffering, cell signaling, ROS production, and apoptosis. Furthermore, heteroplasmy or mis-regulation of gene expression in mitochondria frequently is associated with human mitochondrial diseases. Thus, various approaches have been developed to investigate the roles of genes encoded by the mitochondrial genome. In this review, we will discuss a wide range of techniques available for investigating the mitochondrial genome, mitochondrial transcription, and mitochondrial translation, which provide a useful guide to understanding mitochondrial gene expression.
ATP is the energy source synthesized at the electron transferase that consist of complex I, II, III, IV and V in mitochondrial cristae. The complex V functions as ATPase which composed of sub-complex $F_0$ and $F_1$. Porin or VDAC (voltagedependent anion-selective channel), is a family of small pore-forming proteins of the mitochondrial outer membrane, and play important roles in the regulated flux of anion, proton and metabolites between the cytosolic and mitochondrial compartments. The channel allows the diffusion of negatively charged solutes such as succinate, malate, and ATP in the fully open state, but of positively charged ions in subconducting state. In this study, in order to investigate the relationship of the function and localization between porin and ATPase we observed the distribution of porin and ATPase in the mitochondria of the bovine heart. Monoclonal antibodies against porin and ATPase ${\beta}$-subunit were used to detect porin and ATPase using light microscope with immunohistochemistry and immunofluorescence, and using electron microscope with immunogold-labeling. ATPase were stained in longitudinal section region in cardiac muscle, porin were stained in longitudinal section region in cardiac muscle. We viewed more specific pattern of localization and distribution of these proteins using immunofluorescence method. There were some region which were labeled with porin or ATPase respectively, and others which were labeled both proteins in cardiac muscle. The electron microscope results showed that immunogold labeled porin were labeled locally at mitochondrial outer membrane and ATPase were labeled evenly at mitochondrial cristae. But ATPase was not labeled at mitochondria cristae. These results confirmed the subcellular localizations of porin and ATPase in mitochondrial outer membrane and cristae. Also, we assumed that ATP synthesis always does not activation in all mitochondria exist in the bovine cardiac muscle.
Mitochondrial ATP-sensitive potassium $(mitoK_{ATP})$ channels play a role in early and late ischemic preconditioning. Nevertheless, the subunit composition of $mitoK_{ATP}$ channels remains unclear. In this study, we investigated the subunit composition of $mitoK_{ATP}$ channels in mitochondria isolated from rat cardiac myocytes. Mitochondria were visualized using the red fluorescence probe, Mitrotracker Red, while $mitoK_{ATP}$ channels were visualized using the green fluorescence probe, glibenclamide-BODIPY. The immunofluorescence confocal microscopy revealed the presence of Kir6.1, Kir6.2 and SUR2 present in the cardiac mitochondria. Western blot analysis was carried to further investigate the nature of $mitoK_{ATP}$ channels. For SUR proteins, a 140-kDa immunoreactive band that corresponded to SUR2, but no SUR1 was detected. For Kir6.2, three bands $({\sim}44,\;{\sim}46,\;and\;{\sim}30\;kDa)$ were detected, and a specific ${\sim}46-kDa$ immunoreactive band corresponding to Kir6.1 was also observed. These observations suggest that the subunits of $mitoK_{ATP}$ channels in rat myocytes include Kir6.1, Kir6.2, and a SUR2-related sulfonylurea-binding protein.
In the present study, we examined the effect of mitochondrial K+ channel opener diazoxide on the mitochondria-dependent apoptotic signaling in endothelial cells exposed to high glucose (HG) media. Endothelial cells derived from human umbilical veins were exposed to HG media containing 30 mM glucose, and the degree of apoptotic cell death associated with activation of the mitochondria-dependent apoptotic signaling pathway was determined. Exposure to HG media was seen to enhance apoptotic cell death in a time-dependent manner. In these cells, activation of caspases 3, 8, and 9 was observed, and while caspase-3 and -9 inhibitors suppressed the HG-induced apoptotic cell death, a caspase-8 inhibitor did not. The HG-treated cells exhibited disruption of mitochondrial membrane potential, formation of permeability transition pores, and cytosolic release of cytochrome c. Subsequently, diazoxide was seen to attenuate the HG-induced apoptotic cell death; caspase-9 activation was suppressed but caspase 8 was not. Diazoxide also suppressed the depolarization of mitochondrial membrane potential, the formation of mitochondrial permeability transition pores, and the release of cytochrome c. These effects were significantly inhibited by 5-hydroxydecanoate, a selective blocker of ATP-sensitive K+ channels (KATP). The present results demonstrate that diazoxide exhibits a beneficial effect to ameliorate HG-induced endothelial cell apoptosis. Opening the KATP could help preserve the functional integrity of mitochondria and provide an underlying mechanism to suppress HG-triggered apoptotic signaling.
Malate dehydrogenase in the mosquito ovary after a blood meal, Aedes aegypti, was purified and characterized. MDH purification steps involved DEAE-Sepharose, S-Sepharose and Cibacron blue affinity chromatography. The purified MDH was 70,000 daltons in molecular weight and was a homodimer consisting of tow identical subunits. Optimal activity of purified MDH was obtained pH 9.0-9.2 in malate-oxaloacetate reaction and pH 9.8-10.2, in oxaloactate-malate reaction. With obtained pH 9.0-92 in malate-oxaloacetate reaction and pH 9.8-10.2, in oxaloactate-malate reaction. With malate as substrate, purified mitochondrial MDH (1.28$\times$${10}^{-4}$ M) had lower Km value than cytoplasmic MDH (8.92x${10}^{-3}$ M). MDH activity was inhibited by citrate, $\alpha$-ketoglutarate, and ATP. Inhibition of MDH activity by ATP and citrate was less in malate-oxaloacetate reaction and in oxaloacetate-malate reaction. MDH activity was completely inhibited by ATP in oxaloacetate-malate reaction and not inhibited by citrate in malate-oxaloacetate reaction. Temporal activity change of MDH is similar to that of isocitrate dehydrogenase in the ovary after blood feeding; their activities in the ovary began to rise at 18 hours after a blood meal, and reached at the maximal level at 48 hours.
The present investigation was undertaken in vivo to determine whether the functional alterations of hepatic mitochondria induced by ethanol might be prevented by taurine. We examined the effects of supplementation of taurine on hepatic mitochondrial oxidative phosphorylation in the chronic ethanol-administered rats. Isolated hepatic mitochondria from three groups of rats were functionally tested by an analysis of $\beta-hydroxbutyrate-supported$ respiration and the coupling of this process to ATP synthesis in the presence of ADP. The three groups were control group(CO), ethanol(60g/L) administered group (AL), and ethanol (60g/L) + taurine (5g/L) supplemented group (AT). Ethanol and/or taurine were given in drinking water for 10 weeks. The mitochondria from AL group had lower state 4 respiratory rate, respiratory control (RC) ratio and ADP : O(P/O) ratio than those from CO and AT group. It showed that the ethanol administered rats were less coupled and thus less efficient with respect to mitochondrial ATP synthesis than both control rats and ethanol + taurine supplemented rats. It suggests that taurine supplementation might improve the impaired oxidative phosphorylation efficiency in mitochondrial dysfunction that is recognized as a cause of liver diseases in chronic ethanol consumption.
Mitochondria, fundamental cellular organelles that govern energy metabolism, hold a pivotal role in cellular vitality. While consuming dioxygen to produce adenosine triphosphate (ATP), the electron transfer process within mitochondria can engender the formation of reactive oxygen species that exert dual roles in endothelial homeostatic signaling and oxidative stress. In the context of the intricate electron transfer process, several metal ions that include copper, iron, zinc, and manganese serve as crucial cofactors in mitochondrial metalloenzymes to mediate the synthesis of ATP and antioxidant defense. In this mini review, we provide a comprehensive understanding of the coordination chemistry of mitochondrial cuproenzymes. In detail, cytochrome c oxidase (CcO) reduces dioxygen to water coupled with proton pumping to generate an electrochemical gradient, while superoxide dismutase 1 (SOD1) functions in detoxifying superoxide into hydrogen peroxide. With an emphasis on the catalytic reactions of the copper metalloenzymes and insights into their ligand environment, we also outline the metalation process of these enzymes throughout the copper trafficking system. The impairment of copper homeostasis can trigger mitochondrial dysfunction, and potentially lead to the development of copper-related disorders. We describe the current knowledge regarding copper-mediated toxicity mechanisms, thereby shedding light on prospective therapeutic strategies for pathologies intertwined with copper dyshomeostasis.
The effects of antimycin A(AA), dodium azide ($NaN_3$) and 2,4-dinitrophenol (DNP), which inhibit mitochondrial ATP production, on cellular functions of cultured astrocytes were studied. High concentrations of AA $(50{\;}\mu\textrm{g}/ml),{\;}NaN_3$ (100mM) and DNP (20mM) significantly decreased 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide (MTT) reduction, which was known to be related to mitochondrial function and then cel viability. AA ($50{\;}\mu\textrm{g}/ml$) increased lactate dehydrogenase (LDH) release and decreased [$^3H$] glutamate uptake, suggesting severe damage of cellular function by the concentrations of the compounds. Meanwhile, low concentrations of AA $(\leq{;\}10{\;}\mu\textrm{g}/ml),{\;}NaN_3{;\}(\leq{\;}50mM)$ and DNP ($\leq{\;}5mM$) significantly increased MTT reduction, the effect of which was specific to astrocytes. AA (5 and $10{\;}\mu\textrm{g}/ml$) did not affect LDH release and [$^3H$] glutamate uptake, indicating that these compounds increased MTT reduction at the low concentrations without cellular membrane damage. However, the low concentrations of AA produced significant decrease of MTT reduction in a glucose-free medium. Low concentrations of AA (1 and $5{\;}\mu\textrm{g}/ml$) did not change ATP production of astrocytes in the medium containing 10 mM glucose, but completely inhibited in a glucose-free medium, suggesting marked increase of cytosolic ATP production by the blockade of mitochondrial ATP production with low concentrations of AA. These results suggest that astrocytes have ability to enhance neuronal function or survival under conditions of incomplete ischemia or early by enhancement of glycolysis, and that cellular reduction of MTT occurs not only mitochondrially but also extramitchondrially.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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