Reactive oxygen species (ROS) are toxic agents that may be involved in various neurodegenerative diseases. Recent studies indicate that ROS can act as modulators of neuronal activity, and are critically involved in persistent pain primarily through spinal mechanisms. In the present study, whole cell patch clamp recordings were carried out to investigate the effects of tert-buthyl hydroperoxide (t-BuOOH), an ROS, on neuronal excitability and the mechanisms underlying changes of membrane excitability. In current clamp condition, application of t-BuOOH caused a reversible membrane depolarization and firing activity in substantia gelatinosa (SG) neurons. When slices were pretreated with phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN) and ascorbate, ROS scavengers, t-BuOOH failed to induce membrane depolarization. However, isoascorbate did not prevent t-BuOOH-induced depolarization, suggesting that the site of ROS action is intracellular. The t-BuOOH-induced depolarization was not blocked by pretreatment with dithiothreitol (DTT), a sulfhydryl-reducing agent. The membrane-impermeant thiol oxidant 5,5-dithiobis 2-nitrobenzoic acid (DTNB) failed to induce membrane depolarization, suggesting that the changes of neuronal excitability by t-BuOOH are not caused by the modification of extrathiol group. The t-BuOOH-induced depolarization was suppressed by the phospholipase C (PLC) blocker U-73122 and inositol triphosphate ($IP_3$) receptor antagonist 2-aminoethoxydiphenylbolate (APB), and after depletion of intracellular $Ca^{2+}$ pool by thapsigargin. These data suggest that ROS generated by peripheral nerve injury can induce central sensitization in spinal cord, and t-BuOOH-induced depolarization may be regulated by intracellular $Ca^{2+}$ store mainly via $PLC-IP_3$ pathway.
Park, Jung-Gyu;Jo, Young-Ah;Kim, Yun-Taik;Yoo, Young-Sook
BMB Reports
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v.31
no.5
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pp.468-474
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1998
Membrane depolarization in PC12 cells induces calcium influx via an L-type voltage-sensitive calcium channel (L-VSCC) and increases intracellular free calcium, which leads to tyrosine phosphorylation of epidermal growth factor (EGF) receptor and the associated adaptor protein, She. This activated EGF receptor complex then can activate mitogen-activated protein (MAP) kinase, as in nerve growth factor (NGF) receptor activation. In the present study, we investigated the role of EGF receptor in the signaling pathway initiated by membrane depolarization of PC12 cells. Prolonged membrane depolarization induced phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) within 1 min in undifferentiated PC12 cells. Pretreatment of PC12 cells with the calcium chelator EGTA abolished depolarization-stimulated ERK phosphorylation, but NGF-induced phosphorylation of ERK was not affected. The chronic treatment of phorbol ester, which down-regulated the activity of protein kinase C (PKC), did not affect the phosphorylation of ERK upon depolarization. In the presence of an inhibitor of EGF receptor, neither depolarization nor calcium ionophore increased the level of ERK phosphorylation. These data imply that the EGF receptor is functionally necessary to activate ERK and neurite outgrowth in response to the prolonged depolarization in PC12 cells, and also that PKC is apparently not involved in this signaling pathway.
Park, Byoung-Duck;Jin, Ying-Hua;Yim, Hyung-Shin;Lee, Seung-Ki
Proceedings of the PSK Conference
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2003.10b
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pp.167.1-167.1
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2003
Here we show that panaxadiol, a ginseng saponin with a dammarane skeleton, induces acute apoptotic cell death in human hepatoma SK-HEP-1 cells as evidenced by analysis of DNA fragmentation, caspase activation, and changes in cell morphology. The kinetic study showed that panaxadiol-induced apoptosis is associated with depolarization of mitochondrial membrane potential and cytochrome c release. Sequential activations of caspases-depolarization of mitochondrial membrane potential and cytochrome c release. Sequential activations of caspases-9, and -3, or -7, but not of caspase 8 coincide well in a time dependent manner with mitochondrial membrane depolarization and cytochrome c release from mitochondria during apoptosis of SK-HEP-1 cells induced by treatment with panaxadiol. (omitted)
Bicuculline is one of the most commonly used $GABA_A$ receptor antagonists in electrophysiological research. Because of its poor water solubility, bicuculline quaternary ammonium salts such as bicuculline methiodide (BMI) and bicuculline methbromide are preferred. However, a number of studies have shown that BMI has non-$GABA_A$ receptor-mediated effects. The substantia gelatinosa (SG) of the trigeminal subnucleus caudalis (Vc) is implicated in the processing of nociceptive signaling. In this study, we investigated whether BMI has non-GABA receptor-mediated activity in Vc SG neurons using a whole cell patch clamp technique. SG neurons were depolarized by application of BMI ($20{\mu}M$) using a high $Cl^-$ pipette solution. GABA ($30-100{\mu}M$) also induced membrane depolarization of SG neuron. Although BMI is known to be a $GABA_A$ receptor antagonist, GABA-induced membrane depolarization was enhanced by co-application with BMI. However, free base bicuculline (fBIC) and picrotoxin (PTX), a $GABA_A$ and $GABA_C$ receptor antagonist, blocked the GABA-induced response. Furthermore, BMI-induced membrane depolarization persisted in the presence of PTX or an antagonist cocktail consisting of tetrodotoxin ($Na^+$ channel blocker), AP-5 (NMDA receptor antagonist), CNQX (non-NMDA receptor antagonist), and strychnine (glycine receptor antagonist). Thus BMI induces membrane depolarization by directly acting on postsynaptic Vc SG neurons in a manner which is independent of $GABA_A$ receptors. These results suggest that other unknown mechanisms may be involved in BMI-induced membrane depolarization.
Recent studies indicate that reactive oxygen species (ROS) are critically involved in persistent pain primarily through spinal mechanisms, and that mitochondria are the main source of ROS in the spinal dorsal horn. To investigate whether mitochondrial ROS can induce changes in membrane excitability on spinal substantia gelatonosa (SG) neurons, we examined the effects of mitochondrial electron transport complex (ETC) substrates and inhibitors on the membrane potential of SG neurons in spinal slices. Application of ETC inhibitors, rotenone or antimycin A, resulted in a slowly developing and slight membrane depolarization in SG neurons. Also, application of both malate, a complex I substrate, and succinate, a complex II substrate, caused reversible membrane depolarization and enhanced firing activity. Changes in membrane potential after malate exposure were more prominent than succinate exposure. When slices were pretreated with ROS scavengers such as phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN), catalase and 4- hydroxy-2,2,6,6-tetramethylpiperidine-1-oxyl (TEMPOL), malate-induced depolarization was significantly decreased. Intracellular calcium above $100{\mu}M$ increased malateinduced depolarization, witch was suppressed by cyclosporin A, a mitochondrial permeability transition (MPT) inhibitor. These results suggest that enhanced production of spinal mitochondrial ROS can induce nociception through central sensitization.
The conductance change evoked by step depolarization was studied in primarily cultured rat adrenal chromaffin cells using patch-clamp and capacitance measurement techniques. When we applied a depolarizing pulse to a chromaffin cell, the inward calcium current was followed by an outward current and depolarization-induced exocytosis was accompanied by an increase in conductance trace. The slow inward tail current which has the same time course as the conductance change was observed in current recording. The activation of slow tail current was calcium-dependent. Reversal potentials agreed with Nernst equation assuming relative permeability of $Cs^+\;to\;K^+$ is 0.095. The outward current and tail current were blocked by apamin (200 nM) and d-tubocurarine (2 mM). The conductance change was blocked by apamin and did not affect membrane capacitance recording. We confirmed that conductance change after depolarization comes from the activation of the SK channel and can be blocked by application of the SK channel blockers. Consequently, it is necessary to consider blocking of the SK channel during membrane capacitance recording.
For the observations of both the membrane properties and the excitability on the unfertilized eggs of female mice, changes of the membrane resistance and the membrane potential by hyerpolarizing current stimulation were recorded. As current-voltage relation was linear over the entire range (-180mV~+60mV), membrane resistance($R_m$) was calculated from the amplitude of electrotonic potential to a given stimulus current. Also the presence of anode-break excitation was confirmed. The results were as follows; 1. There was a linear relation between the membrane resistance and resting membrane potential, the expected input resistance was 61. 4M$\Omega$(resting membrane potential was $-18.9{\pm}8.7mV$, mean${\pm}$SD, n=30). 2. Transient depolarization with overshoot was generated just after hyperpolarizing current stimulus and showed the dependency of stimulus duration. 3. Transient depolarization lasted over 30ms, amplitude of these depolarization was increased by high $Ca^{{+}{+}}$(20mM) and inhibited by $Ca^{{+}{+}}$-antagonist, $Mn^{{+}{+}}$. 4. From the above results, it was suggested that the unfertilized mouse egg showed the characteristics of the excitable cell.
Thrombin-induced platelet microbicidal proteins (tPMP) are antibacterial proteins released when platelets are stimulated by thrombin. It has been reported that tPMP has antibacterial activity against various bacterial species including causative agents of infective endocarditis. Most of the oral streptococci have resistance to the killing by tPMP and this fact may play an important role as a virulence factor in infective endocarditis. However, the susceptibility and resistance mechanism of oral streptococci for tPMP have not been revealed yet. In this study, the killing mechanism of tPMP for oral streptococci has been investigated. Streptococcus rattus BHT, a susceptible strain, and Streptococcus gordonii DL1, a resistant strain, have been used in this study. tPMP was isolated from platelet after stimulation with thrombin. Cell membrane depolarization was examined with 3,3'-dipropylthiodicarbocyanine iodide ($DiSC_3$), membrane potential-sensitive cyanine dye, by fluorescence spectrophotometry. The permeabilization of cell membrane by tPMP was investigated with propidium iodide (PI) by flow cytometry. tPMP susceptible S. rattus BHT showed the increase of the $DiSC_3$ fluorescence level meaning depolarization of cell membrane and increase of the uptake of PI which means permeabilization of cell membrane. However, tPMP resistant S. gordonii DLI did not show depolarization and permeabilization. These results indicate that the increasing depolarization and permeabilization of oral streptococcal cell membrane are associated with the bactericidal activity of tPMP.
Cordycepin exerts neuroprotective effects against excitotoxic neuronal death. However, its direct electrophysiological evidence in Alzheimer's disease (AD) remains unclear. This study aimed to explore the electrophysiological mechanisms underlying the protective effect of cordycepin against the excitotoxic neuronal insult in AD using whole-cell patch clamp techniques. ${\beta}$-Amyloid ($A{\beta}$) and ibotenic acid (IBO)-induced injury model in cultured hippocampal neurons was used for the purpose. The results revealed that cordycepin significantly delayed $A{\beta}$ + IBO-induced excessive neuronal membrane depolarization. It increased the onset time/latency, extended the duration, and reduced the slope in both slow and rapid depolarization. Additionally, cordycepin reversed the neuronal hyperactivity in $A{\beta}$ + IBO-induced evoked action potential (AP) firing, including increase in repetitive firing frequency, shortening of evoked AP latency, decrease in the amplitude of fast afterhyperpolarization, and increase in membrane depolarization. Further, the suppressive effect of cordycepin against $A{\beta}$ + IBO-induced excessive neuronal membrane depolarization and neuronal hyperactivity was blocked by DPCPX (8-cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine, an adenosine $A_1$ receptor-specific blocker). Collectively, these results revealed the suppressive effect of cordycepin against the $A{\beta}$ + IBO-induced excitotoxic neuronal insult by attenuating excessive neuronal activity and membrane depolarization, and the mechanism through the activation of $A_1R$ is strongly recommended, thus highlighting the therapeutic potential of cordycepin in AD.
Recent studies indicate that mitochondria are an important source of reactive oxygen species (ROS) in the spinal dorsal horn. In our previous study, application of malate, a mitochondrial electron transport complex I substrate, induced a membrane depolarization, which was inhibited by pretreatment with ROS scavengers. In the present study, we used patch clamp recording in the substantia geletinosa (SG) neurons of spinal slices, to investigate the cellular mechanism of mitochondrial ROS on neuronal excitability. DNQX (an AMPA receptor antagonist) and AP5 (an NMDA receptor antagonist) decreased the malate-induced depolarization. In an external calcium free solution and addition of tetrodotoxin (TTX) for blockade of synaptic transmission, the malate-induced depolarization remained unchanged. In the presence of DNQX, AP5 and AP3 (a group I metabotropic glutamate receptor (mGluR) antagonist), glutamate depolarized the membrane potential, which was suppressed by PBN. However, oligomycin (a mitochondrial ATP synthase inhibitor) or PPADS (a P2 receptor inhibitor) did not affect the substrates-induced depolarization. These results suggest that mitochondrial substrate-induced ROS in SG neuron directly acts on the postsynaptic neuron, therefore increasing the ion influx via glutamate receptors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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