The objective of this study is to investigate optimum condition for lignin peroxidase production by white rot fungi Phanerochaete chysosporium IFO 31249 immobilized in a rotating bioreactor. The maximum lignin peroxidase activity of batch culture in rotating bioreactor was 300 U/L. The optimum rotating speed and packing ratio of support for lignin peroxidase production in a rotating bioreactor were 1 rpm and 20%, respectively. The optimum concentration of $MnSO_4$$\cdot$$H_2O$ for manganese-dependent peroxidase production in a rotating bioreactor was 50 ppm. The sufficient supply of oxygen was the most important factor to achieve maximum lignin peroxidase production. It was possible to produce lignin peroxidase (LiP) and manganese-dependent peroxidase (MnP) for at least 3 times successive repeated-batch cultures, respectively.
Endocrine disrupting chemicals (EDCs) disturb animal hormonal system even at very low concentrations, and finally give harmful effects to human through the food web. A white rot fungus Phlebia tremellosa isolated in Korea, was reported to have good degrading activity against the endocrine disrupting phthalates. However, this fungus has very low manganese peroxidase (MnP) activity under various culture conditions while laccase and lignin peroxidase activities were high. We have isolated an MnP cDNA from Trametes versicolor which was involved in the degradation of EDCs, and constructed an MnP expression vector to use in the genetic transformation of P. tremellosa in order to get higher MnP producing strains. Many transformants had integrated expression vector in their chromosomal DNAs, and showed increased MnP activity. One of two transformants showed increased degradation of 4 EDCs (70${\sim}$88%) than the wild type (30${\sim}$45% degradation rates), and showed twice better removal of estrogenic activities generated by the EDCs than the wild type.
Effects of culture conditions and Mn(II) addition were investigated for production of extracellular manganese peroxidase by lignin-degrading fungus LSK-27, Nitrogen source was shown to more influence the production of extracellular manganese peroxidase by LSK-27 than carbon source. When peptone or yeast extract as nitrogen source was added, high MnP activity was obtained. Especially, nitrogen-sufficient culture condition was effective in MnP activity, showing significantly increase up to 1.0% peptone concentration, but carbon-sufficient was not. Mn(II) was shown to strongly induce the MnP production in culture fluids of LSK-27. Increase of MnP actiyity was obeserved up to addition of 100ppm Mn(II), and over this Mn(II) concentration appeared to be inhibitory. The highest level of MnP activity was attained when Mn(II) was added after 2 day incubation.
The ligninolytic basidiomycete, Pleurotus ostreatus K-2946, was produced a manganese peroxidase (MnP) activity when grown in liquid culture with glucose-yeast-peptone (G-Y-P) medium. However, lignin peroxidase (LiP) was not detected in this culture medium. The purification progress of MnP was purified that included chromatography on Sepharose CL-6B, Superdex 75 prep grade and Mono-Q. MnP purified by column chromatography, was 36400 dalton and a pI of 3.95. The optimal pH and temperature of the purified MnP activity were 5.0 and $55^{\circ}C$. The characteristics of MnP produced was quite similar to those of MnP 3 isoenzyme produced by other strains of P. ostreatus.
The lignocellulose that is a major component of spent coffee ground was degraded and saccharified. To implement the spent coffee, after several pre-treatments, inoculation of Phanerochaete chrysosporium and solid-state fermentation were conducted. The optimal temperature of the enzymes (lignin peroxidase, manganese peroxidase, xylanase, laccase, and cellulase) for degradation of lignocellulose by P. chrysosporium was found. We also measured the maximum activity of enzymes (lignin peroxidase 0.15 IU/mL, manganese peroxidase 0.90 IU/mL, laccase 0.11 IU/mL, cellulase 5.87 IU/mL, carboxymethyl cellulase 9.52 IU/mL, xylanase 1.16 IU/mL) used for the process. As a result, 4.73 mg/mL of reduced sugar was obtained and 61.02% of lignin was degraded by solid state fermentation of P. chrysosporium on spent coffee ground.
Praveen, K.;Usha, K.Y.;Viswanath, Buddolla;Reddy, B. Rajasekhar
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.11
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pp.1540-1548
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2012
Manganese peroxidase (MnP) was isolated from the culture filtrate of the wood log mushroom Stereum ostrea (S. ostrea), grown on Koroljova medium, and then purified by ammonium sulfate [70% (w/v)] fractionation, DEAE-cellulose anion exchange chromatography, and Sephadex G-100 column chromatography, with an attainment of 88.6-fold purification and the recovery of 22.8% of initial activity. According to SDS-PAGE the molecular mass of the MnP was 40 kDa. The optimal pH and temperature were found to be 4.5 and $35^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable even after exposure to a pH range of 4.5 to 6.0, and at temperatures of up to $35^{\circ}C$ at a pH of 4.5 for 1h. The $K_m$ and $V_{max}$ values for the substrate phenol red were found to be $8{\mu}m$ and 111.14 U/mg of protein, respectively. The MnP also oxidized other substrates such as guaiacol, DMP, and veratryl alcohol. Sodium azide, EDTA, SDS, $Cu^{2+}$, and $Fe^{2+}$, at 1-5 mM, strongly inhibited enzyme activity, whereas $Ca^{2+}$ and $Zn^{2+}$ increased enzyme activity. The participation of the purified enzyme in the decolorization of dyes suggests that S. ostrea manganese peroxidase could be effectively employed in textile industries.
The production of manganese peroxidase (MnP) by Irpex lacteus, purified to electrophoretic homogeneity by acetone precipitation, HiPrep Q and HiPrep Sephacryl S-200 chromatography, was shown to correlate with the decolorization of textile industry wastewater. The MnP was purified 11.0-fold, with an overall yield of $24.3\%$. The molecular mass of the native enzyme, as determined by gel filtration chromatography, was about 53 kDa. The enzyme was shown to have a molecular mass of 53.2 and 38.3 kDa on SDS-PAGE and MALDI-TOF mass spectrometry, respectively, and an isoelectric point of about 3.7. The enzyme was optimally active at pH 6.0 and between 30 and $40^{\circ}C$. The enzyme efficiently catalyzed the decolorization of various artificial dyes and oxidized Mn (II) to Mn (III) in the presence of $H_2O_2$. The absorption spectrum of the enzyme exhibited maxima at 407, 500, and 640 nm. The amino acid sequence of the three tryptic peptides was analyzed by ESI Q- TOF MS/MS spectrometry, and showed low similarity to those of the extracellular peroxidases of other white-rot basidiomycetes.
Trametes versicolor has a lignin degrading enzyme system, which is also involved in the degradation of diverse recalcitrant compounds. Manganese-dependent peroxidase (MnP) is one of the lignin degrading enzymes in T. versicolor. In this study, a cDNA clone of a putative MnP-coding gene was cloned and transferred into an expression vector (pBARGPE1) carrying a phosphinothricin resistance gene (bar) as a selectable marker to yield the expression vector, pBARTvMnP2. Transformants were generated through genetic transformation using pBARTvMnP2. The genomic integration of the MnP clone was confirmed by PCR with bar-specific primers. One transformant showed higher enzyme activity than the recipient strain did, and was genetically stable even after 10 consecutive transfers on non-selective medium.
The mutational spectra in the manganese (II) peroxidase gene (mnp) of the Pleurotus ostreatus mutants induced by gamma radiation (Co$\^$60/) give evidence to prove the effect of gamma radiation on the gene. mnp of each mutant was cloned, sequenced and analyzed. Among the 1941 base pairs of the sequenced region of the mnP genes of 4 mutants (PO-5,-6,-15 and -16), nine mutational hotspots on which the same base was mutated simultaneously were found, additionally 6 mutations were also found at different positions in the mnp gene. These mutation-spectra were predominantly A:T\longrightarrowG:C transitions (50.1%). By the analysis of putative amino acid sequences, PO-5 and PO-16 mutants have 3 and 1 mutated residues, respectively. Since the mutational spectra reported herein are specific to the mnp gene, we propose that the mutational hotspots for the gamma radiation could be in the gene(5) within cells.
Phlebia sp. MG-60 is the salt-tolerant, white-rot fungus which was isolated from a mangrove forest. This fungus expresses three kinds of manganese peroxidase (MGMnP) isozymes, MGMnP1, MGMnP2 and MGMnP3 in low nitrogen medium (LNM) or LNM containing NaCl. To date, there have been no reports on the biochemical salt-tolerance of these MnP isozymes due to the difficulty of purification. In present study, we established forced expression transformants of these three types of MnP isozymes. In addition, the fact that this fungus hardly produces native MnP in a high-nitrogen medium (HNM) was used to perform isozyme-selective expression and simple purification in HNM. The resulting MGMnPs showed high tolerance for NaCl compared with the MnP of Phanerochaete chrysosporium. It was worth noting that high concentration of NaCl (over 200 mM to 1200 mM) can enhance the activity of MGMnP1. Additionally, MGMnP1 showed relatively high thermo tolerance compared with other isozymes. MGMnPs may have evolved to adapt to chloride-rich environments, mangrove forest.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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