In this study, the inactivation efficiency of Mycobacterium marinum was evaluated in buffered water (pH 7) using a low pressure ultraviolet (LP-UV) lamp, ultrasonic (US), and UV/US sequential processes. In the UV alone process, 3 log inactivation of the M. marinum was achieved with a UV dose of $120mJ/cm^2$. However, a tailing phase was later observed because M. marinum has a high tendency for cell aggregation. Even though the M. marinum was not inactivated in the US alone process, the hydrophobicity decreased and turbidity increased due to the crumbling of the cell aggregation. Among the candidate processes which were UV alone, US-UV sequential process and UV-US-UV sequential process, the US-UV sequential process showed the highest synergistic effects for M. marinum inactivation. Consequently, US is a very useful process as a UV irradiation pre-treatment to inactivate M. marinum in water.
Effect of iron on the extracellular proteolytic activity of live Uronema marium was determined by fluorescence polarization (FP) method. Supplementation of 0.5 and 5.0 μM iron significantly increased caseinolytic activity of live U. marinum. In contrast, supplementation of 50 μM iron showed no significant differences in FP values compared to the control. The present result suggests that iron in cultured water or skin tissue of olive flounder may influence on the penetration and establishment of U. marinum, correlating with modulation of extracellular protease activity of the ciliates.
Mycobacteria의 Crocin 첨가 결핵균 배지상의 보라색 색소형성과 광선조사, 호혐기상태, Crocin의 농도 및 배양시간과의 관계를 조사하고 비정형 Mycobactia의 색소형성 특성에 따른 군분류 동정에 대하여 기술하였다. 광색정군 M. kansasii는 양성으로 음성인 M. marinum과 감별이 되었으며, 색정군 M. scrofulaceum은 음성으로서 양성인 M. aquae와, 조기발육군 M. fortuitum은 3일 배양검사에서 양성으로 M. smegmatis로 부터 본류 동정이 각각 가능하였다.
We report the existence of new type of phosphatidylcholine-hydrolyzing phospholipase D (PLD), which has been characterized and partially purified in the scuticociliate, Uronema marinum. The enzyme from partial purification showed that it was existed in membrane fraction and was a neutral PLD, which catalyzed both transphosphatidylation and hydrolysis reaction. The activity of partially purified membrane-bound PLD was also found to be optimal at pH 7.0-7.5 for 2 hours at 37℃ and depended strictly on the presence of Ca2+ (2.5 mM) and Mg2+ (1.6 mM). Immunoblot analysis indicated that the enzyme was distinct from hPLD1 (human PLD1) and hPLD2 (human PLD2) because it was not recognized by a polyclonal antibody raised to the 12 terminal amino acid of these enzymes. We also found that the membrane-bound PLD is a PIP2-dependent PLD and that GTP-binding proteins are not implicated in the regulation of this enzyme: This enzyme activity is markedly stimulated by phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate (PIP2) but not by the small G-protein Arf and GTPrS. In addition, this enzyme was capable of hydrolyzing phosphatidylcholine (PC) but not phosphatidylethanolamine (PE), implying that PC was a preferred substrate.
In the present paper, the immunostimulatory effects of the extracellular products (ECP) from Mycobacterium spp. and various adjuvants on the non-specific immune responses of Nile tilapia, Oreochromis nilotica, were examined. Nile tilapia were immunized by injecting ECP of Mycobacterium spp. (strain TB40, TB267 or the type strain Mycobacterium marinum) into their swim bladders. A variety of adjuvants like as Freund s complete adjuvant (FCA), Freund's incomplete adjuvant (FIA) and Titremax were similarly injected into additional groups of tilapia. The number of nitroblue tetrazolium (NBT)-positive cells observed in the swim bladder of the immunized fish was signigicantly increased by the fourth day post-immunization. By day 8, the numbers of NBT-positive cells were fewer in fish immunized with ECP from mycobacteria strains TB40 or TB267 than those immunized with ECP from M. marinum or fish injected with FCA or FIA. The level of Iysozyme activity detected in the serum of fish 40 alter immunization with ECP from various Mycobacterium spp. was also significantly higher than that found in the serum of the control fish. Head kidney macrophages showed enhanced reduction of NBT when cultured in vitro with 1 $\mu$ g/ml of ECP. Concentrations greater than this (10 or 100 $\mu$g/ml) were found to suppress the reduction of NBT by the macrophages. ECP from Mycobacterium spp. and the various adjuvants used in the study all appear to be good activators of the non-specific immune responses of Nile tilapia.
The present study was set to develop comprehensive system for assessing the safety of drinking water using PCR-reverse blot hybridization assay (REBA). The REBA developed in this study can detect waterborne pathogens such as Shigella spp., Salmonella spp., Citrobacter spp., Enterobacter spp., Klebsiella spp., Yersinia spp., Mycobacterium spp., Listeria spp. at the genus level, and Escherichia coli, Citrobacter freundii, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolitica, Y. pseudotuberculosis, Mycobacterium avium complex, M. marinum, Enterococcus faecalis, and Staphylococcus aureus at the species level, and E. coli O157:H7 at the strain level.
Sorlozano, Antonio;Soria, Isabel;Roman, Juan;Huertas, Pilar;Soto, Maria Jose;Piedrola, Gonzalo;Gutierrez, Jose
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제19권10호
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pp.1259-1264
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2009
We assessed the capacity of two liquid-medium culture methods with automated incubation and reading systems (MB/BacT ALERT 3D System and BACTEC MGIT 960 System) and one solid-medium culture method ($L\ddot{o}wenstein$-Jensen) to detect mycobacteria in different types of clinical samples. Out of 1,770 cultured clinical samples (1,519 of respiratory origin and 251 of non respiratory origin), mycobacteria were isolated in 156 samples (135 M. tuberculosis complex, 8 M. chelonae, 6 M. kansasii, 4 M. fortuitum, 2 M. gordonae, and 1 M. marinum) by at least one of the methods used. The BACTEC MGIT 960 System proved to be the most sensitive method (86.5%), especially in the detection of M. tuberculosis complex (89.1%). However, $L\ddot{o}wenstein$-Jensen culture was the most sensitive (76.2%) to detect nontuberculous mycobacteria. The BACTEC MGIT 960 System showed the lowest mean detection time for mycobacterial growth (15.3 days), significantly shorter than the other two methods. Highest sensitivity (95.5%) and specificity (99.6%) values were obtained using the BACTEC MGIT 960 System with the $L\ddot{o}wenstein$-Jensen culture method, which was also the only combination capable of detecting 100% of the nontuberculous mycobacteria.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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