This research is the basic research to develop new anti-inflammatory medicine by feeding Scutellariae Radix extract to lipopolysaccharide(LPS) exposed rats, and analyzed it's effect on inflammatory response by LPS derivation. As a result, Plasma interleukin-$1\beta(IL-1\beta)$ and Plasma interleukin-6(IL-6) concentration showed the highest point at 5h after LPS injection, and in this time, the concentration of $IL-1\beta$ and IL-6 in the Scutellariae Radix extract groups at 200mg/kg and 300mg/kg showed lower values than that of control group. Plasma tumor necrosis $factor-\alpha(TNF-\alpha)$ concentration after LPS injection showed the highest point at 2h and showed similar level till at 5h. $TNF-\alpha$ concentration at 2h after LPS injection showed the low value only in the Scutellariae Radix extract 300mg/kg group compared to others, and in 5h, the all Scutellariae Radix extract groups showed lower value than that of the control group. Plasma interleukin-10(IL-10) concentration increased at 2h after LPS injection and reached the highest at 5h. After LPS injection the IL-10 concentration at 2h, the Scutellariae Radix extract injection group at 300mg/kg showed higher value than that of the others, and in 5h after LPS injection, Scutellariae Radix extract 200mg and 300mg groups showed higher value than the control group. Concluding from the above results, in inflammatory response by LPS derivation, the Scutellariae Radix gives positive effect.
Dapsone, an antibiotic, has been used to cure leprosy. It has been reported that dapsone has anti-inflammatory activity in hosts; however, the anti-inflammatory mechanism of dapsone has not been fully elucidated. The present study investigated the anti-inflammatory effects of dapsone on bone marrow cells (BMs), especially upon exposure to lipopolysaccharide (LPS). We treated BMs with LPS and dapsone, and the treated cells underwent cellular activity assay, flow cytometry analysis, cytokine production assessment, and reactive oxygen species assay. LPS distinctly activated BMs with several characteristics including high cellular activity, granulocyte changes, and tumor necrosis factor alpha ($TNF-{\alpha}$) production increases. Interestingly, dapsone modulated the inflammatory cells, including granulocytes in LPS-treated BMs, by inducing cell death. While the percentage of Gr-1 positive cells was 57% in control cells, LPS increased that to 75%, and LPS plus dapsone decreased it to 64%. Furthermore, dapsone decreased the mitochondrial membrane potential of LPS-treated BMs. At a low concentration ($25{\mu}g/mL$), dapsone significantly decreased the production of $TNF-{\alpha}$ in LPS-treated BMs by 54%. This study confirmed that dapsone has anti-inflammatory effects on LPS-mediated inflammation via modulation of the number and function of inflammatory cells, providing new and useful information for clinicians and researchers.
Objectives : The purpose of this study was to investigate the effects of Angelicae acutilobae Radix Water Extract (AA) on the production of cytokines in RAW 264.7 cell stimulated with lipopolysaccharide (LPS). Method : RAW 264.7 cells were cotreated with AA (50 and $100{\mu}g/mL$) and lipopolysaccharide (LPS; $1{\mu}g/mL$) for 24 hours. After 24 hours treatment, using bead-based multiplex cytokine assay, concentrations of various cytokines such as interleukin(IL)-6, tumor necrosis factor-alpha(TNF-${\alpha}$) granulocyte colony-stimulating factor(G-CSF), granulocyte macrophage colony-stimulating factor(GM-CSF), and macrophage inflammatory protein(MIP)-$1{\alpha}$ were measured. Result : AA significantly inhibited LPS-induced production of IL-6 and MIP-$1{\alpha}$ from LPS-stimulated RAW 264.7 cells at the concentration of $50{\mu}g/mL$. AA significantly inhibited LPS-induced production of TNF-${\alpha}$ from LPS-stimulated RAW 264.7 cells at the concentration of $100{\mu}g/mL$. AA significantly inhibited LPS-induced production of G-CSF and GM-CSF in RAW 264.7 cells at the concentrations of 50 and $100{\mu}g/mL$. Conclusion : These results suggest that AA has anti-inflammatory effect related with its inhibition of proinflammatory cytokines such as IL-6, TNF-${\alpha}$, G-CSF, GM-CSF, and MIP-$1{\alpha}$ in LPS-induced macrophages.
연구배경 : 급성폐손상에서 표면활성물질의 치료효과는 허탈된 폐포를 재환기시키는 작용 외에 표면활성물질이 지닌 항염증효과도 기여하는 것으로 알려져있다. 표면활성물질의 항염증효과의 기전에 호중구의 아포토시스를 촉진하는 작용이 관련되어 있을 가능성이 있다. 본 연구에서는 사람의 말초혈액 호중구와 LPS로 급성폐손상을 유발한 흰쥐의 폐포내 호중구의 아포토시스에 대하여 표면활성물질이 미치는 영향을 평가하고자 하였다. 방 법 : 생체외 실험에서는 자원자의 혈액에서 호중구를 분리하여 같은 수의 호중구 ($1{\times}10^6$)에 LPS(10, 100, 1000ng/ml), surfactant(10, 100, 1000${\mu}g$/ml), 그리고 LPS(1000ng/ml)와 표면활성물질(10, 100, 1000${\mu}g$/ml)을 혼합하여 투여하였다. 24 시간 배양한 후에 호중구의 아포토시스를 Annexin V 방법을 이용하여 분석하였다. 생체내 실험에서는 백서의 기관 내로 LPS(5mg/kg)를 투여하여 급성폐손상을 유발한 후에, 한 군은 표면활성물질(30mg/kg)을 다른 군은 생리식염수(5ml/kg)를 30 분 후에 기관 내로 투여하였다. LPS 투여 24 시간 후에 기관지폐포세척술을 시행하여 기관지폐포세척액을 얻었으며, 여기에서 호중구를 분리하여 Annexin V 방법으로 아포토시스를 측정하였다. 또한 LPS 투여 전과 23 시간 후에 one chamber body plethy smography를 이용하여 호흡역학(일호흡량, 호흡수, Penh)의 변화를 측정하였다. 결 과 : 생체외 실험에서 LPS 투여는 사람 말초혈액 호중구의 아포토시스를 억제하였다(대조군; $47.4{\pm}5.0%$, LPS 10ng/ml; $30{\pm}10.9%$, LPS 100ng/ml; $27.5{\pm}9.5%$, LPS 1000ng/ml; $24.4{\pm}7.7%$). 낮은 농도의 표면활성물질 투여는 LPS 투여에 의해 억제 되었던 호중구의 아포토시스를 촉진시켰다(LPS 1000ng/ml=Surf 10${\mu}g$/ml 1; $36.6{\pm}11.3%$, LPS 1000ng/ml+Surf 100${\mu}g$/ml 1; $41.3{\pm}11.2%$). 높은 농도의 표면활성물질($1,000{\mu}g/ml$) 투여는 그 자체도 호중구의 아포토시스를 억제할 뿐만 아니라($24.4{\pm}7.7%$) LPS의 항아포토시스 작용을 촉진하였다(LPS 1000ng/ml+Surf $1000{\mu}g/ml$; $19.8{\pm}5.4%$). 생체내 실혐에서 표면활성물질 투여는 생리식염수 투여에 비해서 급성폐손상을 받은 쥐에서 기관지 폐포세척액의 호중구의 아포토시스를 촉진하였다($6.03{\pm}3.36%$ vs $2.95{\pm}0.58%$). 표면활성물질을 투여한 백서는 생리식염수를 투여한 백서에 비해 LPS 자극 후 23 시간에 측정한 기도저항(Penh) 이 낮았다($2.64{\pm}0.69$ vs $4.51{\pm}2.24$, p<0.05). 결 론 : 이상의 결과로 표면활성은 사람의 말초혈액 호중구와 급성폐손상을 받은 백서의 기관지폐포세척액 내의 호중구의 아포토시스를 촉진하며, 이런 효과가 표면활성불질의 항염증효과의 기전 중 하나일 것으로 추측된다.
Hong, Ji Young;Shin, Mi Hwa;Chung, Kyung Soo;Kim, Eun Young;Jung, Ji Ye;Kang, Young Ae;Kim, Young Sam;Kim, Se Kyu;Chang, Joon;Park, Moo Suk
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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제78권3호
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pp.218-226
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2015
Background: Eph receptors and ephrin ligands have several functions including angiogenesis, cell migration, axon guidance, fluid homeostasis, oncogenesis, inflammation and injury repair. The EphA2 receptor potentially mediates the regulation of vascular permeability and inflammation in response to lung injury. Methods: Mice were divided into 3 experimental groups to study the role of EphA2 signaling in the lipopolysaccharide (LPS)-induced lung injury model i.e., IgG+phosphate-buffered saline (PBS) group (IgG instillation before PBS exposure), IgG+LPS group (IgG instillation before LPS exposure) and EphA2 monoclonal antibody (mAb)+LPS group (EphA2 mAb pretreatment before LPS exposure). Results: EphA2 and ephrinA1 were upregulated in LPS-induced lung injury. The lung injury score of the EphA2 mAb+LPS group was lower than that of the IgG+LPS group ($4.30{\pm}2.93$ vs. $11.45{\pm}1.20$, respectively; p=0.004). Cell counts (EphA2 mAb+LPS: $11.33{\times}10^4{\pm}8.84{\times}10^4$ vs. IgG+LPS: $208.0{\times}10^4{\pm}122.6{\times}10^4$; p=0.018) and total protein concentrations (EphA2 mAb+LPS: $0.52{\pm}0.41mg/mL$ vs. IgG+LPS: $1.38{\pm}1.08mg/mL$; p=0.192) were decreased in EphA2 mAb+LPS group, as compared to the IgG+LPS group. In addition, EphA2 antagonism reduced the expression of phospho-p85, phosphoinositide 3-kinase $110{\gamma}$, phospho-Akt, nuclear factor ${\kappa}B$, and proinflammatory cytokines. Conclusion: This results of the study indicated a role for EphA2-ephrinA1 signaling in the pathogenesis of LPS-induced lung injury. Furthermore, EphA2 antagonism inhibits the phosphoinositide 3-kinase-Akt pathway and attenuates inflammation.
Lee, Hwa-Sun;Na, Hee-Sam;Jeong, So-Yeon;Jeong, Sung-Hee;Park, Hae-Ryoun;Chung, Jin
International Journal of Oral Biology
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제36권3호
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pp.109-116
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2011
Periodontitis results from the activation of host immune and inflammatory defense responses to subgingival plaque bacteria, most of which are gram-negative rods with lipopoly-saccharides (LPSs) in their cell walls. LPSs have been known to induce proinflammatory responses and recently it was reported also that they induce the expression of microRNAs (miRNAs) in host cells. In our current study therefore, we aimed to examine and compare the miRNA expression patterns induced by the LPSs of major periodontopathogens in the human gingival epithelial cell line, Ca9-22. The cells were treated with 1 ${\mu}g$/ml of E. coli (Ec) LPS or 5 ${\mu}g$/ml of an LPS preparations from four periodontopathogens Porphyromonas gingivalis (Pg), Prevotella intermedia (Pi), Aggregatibacter actinomycetemcomitans (Aa), and Fusobacterium nucleatum (Fn) for 24 h. After small RNA extraction from the treated cells, miRNA microarray analysis was carried out and characteristic expression profiles were observed. Fn LPS most actively induced miRNAs related to inflammation, followed by Aa LPS, Pi LPS, and Ec LPS. In contrast, Pg LPS only weakly activated miRNAs related to inflammation. Among the miRNAs induced by each LPS, miR-875-3p, miR-449b, and miR-520d-3p were found to be commonly up-regulated by all five LPS preparations, although at different levels. When we further compared the miRNA expression patterns induced by each LPS, Ec LPS and Pi LPS were the most similar although Fn LPS and Aa LPS also induced a similar miRNA expression pattern. In contrast, the miRNA profile induced by Pg LPS was quite distinctive compared with the other bacteria. In conclusion, miR-875-3p, miR-449b, and miR-520d-3p miRNAs are potential targets for the diagnosis and treatment of periodontal inflammation induced by subgingival plaque biofilms. Furthermore, the observations in our current study provide new insights into the inflammatory miRNA response to periodontitis.
연구배경: 내독소로 유발된 급성폐손상의 발생기 전에 산화스트레스가 중요한 역할은 한다. 본 실험은 LPS로 유발한 급성폐손상 모델에서 항산화제인 ${\alpha}$-lipoic acid의 치료효과를 보고하였다. 방 법: Sprague-Dawley 쥐를 대상으로 LPS(E.coli, 3mg/Kg)를 기도내 주입 후 ${\alpha}$-lipoic acid를 복강 내 주입하였다. 2시간, 6시간 후에 폐포세척액에서 호중구수, CINC, 시토카인의 농도를 구하고 폐조직에서 MPO를 측정하였다. 결 과: ${\alpha}$-lipoic acid를 후처치한 군에서 LPS 단독군보다 2시간 뒤와 6시간 뒤에 총 세포수와 호중구의 수가 감소하였으나 단백질 농도는 차이가 없었다. 또한 염증성 인자인 TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6의 농도도 ${\alpha}$-lipoic acid 처치군에서 유의한 감소를 보이지 못하였다. 결 론: LPS 로 급성폐손상 유도 모델에서 ${\alpha}$-lipoic acid의 후처치는 폐장내로의 호중구의 침윤은 억제할 수 있지만 급성폐손상을 약화시키지는 못 하였다.
Objective: Gram-negative bacteria lipopolysaccharide (LPS) has been reported to be associated with uterine impairment, embryonic resorption, ovarian dysfunction, and follicle retardation. Here, we aimed to investigate the toxic effects of LPS on the maturation ability and parthenogenetic developmental competence of bovine oocytes. Methods: First, we developed an in vitro model to study the response of bovine cumulusoocyte complexes (COCs) to LPS stress. After incubating germinal vesicle COCs in $10{\mu}g/mL$ of LPS, we analyzed the following three aspects: the expression levels of the LPS receptor toll-like receptor 4 (TLR4) in COCs, activities of intracellular signaling protein p38 mitogen-activated protein kinase (p38 MAPK) and nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$); and the concentrations of interleukin (IL)-$1{\beta}$, tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$, and IL-6. Furthermore, we determined the effects of LPS on the maturation ability and parthenogenetic developmental competence of bovine oocytes. Results: The results revealed that LPS treatment significantly elevated TLR4 mRNA and protein expression levels in COCs. Exposure of COCs to LPS also resulted in a marked increase in activity of the intracellular signaling protein p-p38 MAPK and NF-${\kappa}B$. Furthermore, oocytes cultured in maturation medium containing LPS had significantly higher concentrations of the proinflammatory cytokines IL-$1{\beta}$, TNF-${\alpha}$, and IL-6. LPS exposure significantly decreased the first polar body extrusion rate. The cytoplasmic maturation, characterized by polar body extrusion and distribution of peripheral cortical granules, was significantly impaired in LPS-treated oocytes. Moreover, LPS exposure significantly increased intracellular reactive oxygen species levels and the relative mRNA abundance of the antioxidants thioredoxin (Trx), Trx2, and peroxiredoxin 1 in oocytes. Moreover, the early apoptotic rate and the release of cytochrome C were significantly increased in response to LPS. The cleavage, morula, and blastocyst formation rates were significantly lower in parthenogenetically activated oocytes exposed to LPS, while the incidence of apoptotic nuclei in blastocysts was significantly increased. Conclusion: Together, these results provide an underlying mechanism by which LPS impairs maturation potential in bovine oocytes.
Background: Secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) protects tissues from proteases and promotes cell proliferation and healing. SLPI also reduces periodontal inflammation and alveolar bone resorption by inhibiting proinflammatory cytokine expression in rat periodontal tissues and osteoblasts. However, little is known of the role of SLPI in the expression of osteoclast regulatory factors from osteoblasts, which are crucial for the interaction between osteoblasts and osteoclasts. Therefore, we aimed to determine the effects of SLPI on the regulation of osteoclasts and osteoblasts in LPS-treated alveolar bone and osteoblasts. Methods: Periodontitis was induced in rats using LPS. After each LPS injection, SLPI was injected into the same area. Immunohistochemical analysis was performed with antibodies against SLPI, RANKL, OPG, and Runx2 in the periodontal tissue. RT-PCR and western blotting were performed to determine the expression levels of SLPI, RANKL, OPG, and Runx2 in LPS- and SLPI/LPS-treated MC3T3-E1 cells. SLPI/LPS-treated MC3T3-E1 cells were also stained with Alizarin Red S. Results: Immunohistochemical analysis showed that the expression levels of SLPI, OPG, and Runx2 were higher while that of RANKL was lower in the LPS/SLPI group relative to those in the LPS group. The mRNA and protein expression of SLPI, OPG, and Runx2 was higher in SLPI/LPS/MC3T3-E1 cells than in LPS/MC3T3-E1 cells, and RANKL expression was lower. During differentiation, OPG and Runx2 protein levels were higher whereas RANKL levels were lower in SLPI/LPS/MC3T3-E1 than in LPS/MC3T3-E1 cells on days 0, 4, 7, and 10. In addition, mineralization and matrix deposition were higher in SLPI/LPS/MC3T3-E1 than in LPS/MC3T3-E1 on days 7 and 10. SLPI decreased RANKL expression in LPS-treated alveolar bone and osteoblasts but increased the expression of OPG and Runx2. Conclusion: SLPI can be considered as a regulatory molecule that indirectly regulates osteoclast activation via osteoblasts and promotes osteoblast differentiation.
Jin, Ho-Kyeong;Lee, Young-Hwa;Jeong, So-Yeon;Na, Hee-Sam;Park, Hae-Ryoun;Chung, Jin
International Journal of Oral Biology
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제35권3호
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pp.113-119
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2010
Porphyromonas (P.) gingivalis lipopolysaccharide (Pg LPS) is the major pathogenic component of periodontal disease. In this study, we have attempted to determine the expression profiles of the signal transduction pathway genes induced by Pg LPS in comparison with Escherichia (E.) coli LPS (Ec LPS). DC2.4 cells were treated for two hours with $1\;{\mu}g/ml$ of Pg LPS or $0.5\;{\mu}g/ml$ of Ec LPS. The total RNA from these cells was then isolated and reverse-transcribed. Gene expression profiles were then analyzed with a signal transduction pathway finder GEArray Q series kit and significant changes in expression were confirmed by real-time PCR. The microarray results indicated that several genes, including Tnfrsf10b, Vcam1, Scyb9, Trim25, Klk6, and Stra6 were upregulated in the DC2.4 cells in response to Pg LPS treatment, but were downregulated or unaffected by Ec LPS. Realtime PCR revealed that the expression of Trim25, Scyb9 and Tnfrsf10b was increased over the untreated control. Notably, Trim25 and Tnfrsf10b were more strongly induced by Pg LPS than by Ec LPS. These results provide greater insight into the signal transduction pathways that are altered by P. gingivalis LPS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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