High performance liquid chromatography (HPLC) and liquid chromatography mass spectrometry (LC/MS) have been widely used to quantify aflatoxins in food, but these methods are expensive, time-consuming, unsuitable for analysis of the routine screening of large sample numbers and require derivatization and high level techniques to perform. The objective of this study is to detect aflatoxins in a large number of foods by a high efficient analytical system of combined enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) for screening and LC/MS/MS for confirmation. The samples spiked individually with aflatoxin $B_1$ (0.5 and 1.0 ng/g) and total aflatoxins (10 ng/g) were analyzed by ELISA and LC/MS/ MS, and the recoveries for ELISA and LC/MS/MS were 71.8~119.2% and 70.8~135.3%, respectively. A total of 378 samples (grains, nuts, soybean and fermented soybean foods, pepper and fermented pepper foods) were purchased from the six major cities in Korea and analyzed by ELISA-LC/MS/MS system. Twenty two (5.8%; peanut: 11, pistachio: 2, walnut: 6, almond: 1, pepper powder: 1, pepper paste: 1) out of 378 samples were screened as aflatoxin B1 positive by ELISA, but, 4 (1.1%; peanut: 2, pistachio:1, pepper powder: 1) out of the 22 samples screened were confirmed as aflatoxins positive at levels of 1.02~52.79 ng/g by LC/MS/MS. ELISA-LC/MS/MS system provides a more rapid, accurate and cost-effective method for the detection of aflatoxins in large number of samples.
Total homocysteine is now considered a risk factor for cardiovascular diseases. I increased interest has led to a multitude of studies requiring the determination of total homocysteine in conjunction with other factor. There are various methods for measuring total homocysteine, including HPLC, FPIA, GC-MS and LC-MS/MS. The most recent method for measuring total homocysteine uses a deuterium-labelled internal standard and tandem mass spectrometry. This development requires no derivatization and therefore leads to an increase in sample throughput compared to other techniques. We have evaluated the method for homocysteine by the LC-MS/MS method, and the correlation between the FPIA method and the LC-MS/MS method. The standard curve (0, 5, 10, 20, 50, 100 uM) was linear over the range examined (up to 100 uM). The lower limit of quantification (CV < 10 %) was 0.5 uM/L and the lower limit of detection (S/N >3) was 0.1 uM/L. Intra-assay variation and inter-assay variation were both <6 %. The comparision study for homocysteine concentration showed good correlation (r=0.9684) between the FPIA method and LC-MS/MS methods. Our conclusion is that the method showed relatively good precision, and was rapid and accurate.
본 연구는 국내 생산 및 수입 양식 수산물에 대해 잔류할 수 있는 향정신성 의약품인 디아제팜 대한 안전관리강화기반을 위해 마련되었다. 중국인민공화국 국가 표준시험법(GB 29697-2013)을 기반으로 전처리 방법을 개선하여 GC-MS/MS 시험법을 확립하였으며, LC-MS/MS 방법과의 기기간 검증을 통해 확립된 시험법의 선택성, 정량한계 및 회수율에 대한 검증을 통해 디아제팜 시험법으로서의 유효성을 확인하였다. LC-MS/MS의 경우 아세토니트릴로 추출 후 PSA를 이용해 정제하였고, GC-MS/MS의 경우 아세토니트릴로 추출후 $C_{18}$카트리지를 이용해 정제하였다. 디아제팜은 표준용액을 정량한계를 포함한 농도에 따라 검량선을 작성한 결과 두 기기 모두 $r^2$> 0.99 이상의 직선성을 확인하였다. 본 실험에서의 검출한계와 정량한계는 LC-MS/MS 및 GC-MS/MS 모두 0.0004 mg/kg, 0.001 mg/kg 수준이었으며, 평균 회수율은 각각 99.8~106%, 109~124%이었다. 또한, 분석오차는 모두 15% 이하로 정확성 및 재현성이 우수하였으며, CODEX 가이드라인 규정에 만족하는 수준이었다. 따라서 개발된 시험법은 안전한 수산물의 국내 유통과 잔류실태조사를 위해 활용될 것으로 기대한다.
지표수 중에 과염소산이온을 LC-ESI-MS/MS을 사용하여 분석하였다. 시료는 단지 PTFE 필터를 사용하여 거른 후 LC-ESI-MS/MS 시스템에 직접 주입하여 분석하였다. 이 방법은 3% 이내의 정밀도를 보였고 정량한계는 0.17 ${\mu}g/L$이었다. 시료는 금강물 35 개 유역에서 2, 4, 6월에 각각 시료를 채취하였다. 그 결과 일반 하천수에서는 과염소산이온이 0.23-3.73 ${\mu}g/L$ (평균 0.20 ${\mu}g/L$) 농도범위로 15% 빈도로 검출되었고 공단 근처의 지표수에서는 0.36-25.10 ${\mu}g/L$ (평균 1.69 ${\mu}g/L$)로 36%의 빈도로 검출되었다.
국내산과 중국산 시판 홍삼 농축액의 원산지 판별을 위하여 LC-MS/MS의 data를 통계 처리해 보았다. 국내산 시판 홍삼 농축액과 중국산 시판 홍삼 농축액은 LC-MS/MS의 ginsenoside 함량 비교 결과 특정 ginsenoside에서 함량 차이를 크게 보여주었고, 이를 토대로 의심시료를 선정할 수 있었다. 또한, LC-MS/MS data를 정준 판별 분석과 주성분 분석을 통하여 원산지가 의심되는 시료를 검출할 수 있었고, 그 혼합 비율까지 추정할 수 있었다.
Biosimilars are important drugs in medicine and contain many glycosylated proteins. Thorough analysis of the glycosylated protein is a prerequisite for evaluation of biosimilar glycan drugs. A method to assess the diversity of N-glycosylation sites and N-glycans from biosimilar glycan drugs has been developed using two separate methods, LC-MS/MS and MALDI-TOF MS, respectively. Development of sensitive, accurate, and efficient methods for evaluation of glycoproteins is still needed. In this study, analysis of both N-glycosylation sites and N-glycans of glycoprotein was performed using the same LC-MS/MS with two different nano-LC columns, nano-C18 and nano-porous graphitized carbon (nano-PGC) columns. N-glycosylated proteins, including RNAse B (one N-glycosylation site), Fetuin (three sites), and ${\alpha}$-1 acid glycoprotein (four sites), were used, and small amounts of each protein were used for identification of N-glycosylation sites. In addition, high mannose N-glycans (one type of typical glycan structure), Mannose 5 and 9, eluted from RNAse B, were successfully identified using nano-PGC-LC MS/MS analysis, and the abundance of each glycan from the glycoprotein was calculated. This study demonstrated an accurate and efficient method for determination of N-glycosylation sites and N-glycans of glycoproteins based on high sensitive LC-MS/MS using two different nano-columns; this method could be applied for evaluation of the quality of various biosimilar drugs containing N-glycosylation groups.
액체크로마토그래피/질량분석법(LC/MS)을 이용하여 화장품에 들어있는 파라벤류등을 동시 분석하였다. 화장품 시료를 메탄올에 직접 용해시키고 $0.45\;{\mu}m$ 필터로 여과하여 메탄올/물을 이동상으로 하여 Extend $C_{18}$의 비극성 컬럼을 사용하여 기울기 용리 조건에서 12분 안에 분리하여 SIM(selected ion monitoring)방법으로 정량하였다. LC/MS 분석결과 검량선은 $0.05-10\;{\mu}g$/mL 농도범위에서 $r^2$=0.9993의 상관계수를 갖는 좋은 직선성을 나타내었으며, 검출한계는 $0.01\;{\mu}g$/mL 이었다.
열에 불안정하면서 -OH기를 함유하는 미지의 화합물은 LC/TSP/MS에서 [${MNH_4}^+$] 이온, [$MH^+$] 이온, 그리고 [$MH^+-OH$] 이온의 생성이 가능하며, 이들 이온의 m/z값의 차이가 17로서 같기 때문에 이들의 생성 정도에 따라 분자량 추정에 혼란이 일어날 수가 있었다. 따라서 다른 보완 가능한 실험결과가 요구되며 $CF_3COOD+NH_4OH$ 이온화 용액을 사용하여 그 유용성을 검토하였다. 또한 LC/TSP/MS에서 생성되는 토막이온들이 필라멘트의 전자살에 의해 생성되는 것인지 아니면 다른 어떤 생성기전이 존재하는지를 검토하였다.
Park, Sun-Young;Kim, Byung-Joo;So, Hun-Young;Kim, Yeong-Joon;Kim, Jeong-Kwon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제28권5호
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pp.737-744
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2007
An isotope dilution-liquid chromatography/tandem mass spectrometric method was developed as a candidate reference method for the accurate determination of acrylamide in potato chips, starch-rich foodstuff cooked at high temperature. Sample was spiked with 13C3-acrylamide and then extracted with water. The extract was further cleaned up with an Oasis HLB solid-phase extraction (SPE) cartridge and an Oasis mixed-phase cation exchange (MCX) SPE cartridge. The extract was analyzed by using LC/ESI/Tandem MS in positive ion mode. LC with a medium reversed-phase (C4) column was optimized to obtain adequate chromatographic retention and separation of acrylamide. MS was operated to selectively monitor [M+H]+ ions of the analyte and its isotope analogue at m/z 72 and m/z 75, respectively. Sample was also analyzed by the LC/MS with selectively monitoring the collisionally induced dissociation channels of m/z 72 → m/z 55 and m/z 75 → 58. Compared to the LC/MS chromatograms, the LC/MS/MS chromatograms showed substantially reduced background chemical noises coming from solvent clusters formed during ESI spray processes and interferences from sample matrix. Repeatability and reproducibility studies showed that the LC/MS/MS method is a reliable and reproducible method which can provide a typical method precision of 1.0% while the LC/MS results are influenced by chemical interferences.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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