A survey for total aflatoxins (aflatoxins $B_1$, $B_2$, $G_1$, and $G_2$) was conducted on 245 cereals and processed cereal products, and 148 nuts and processed nut products in Korea, for a total of 393 commercialized ed samples. The total aflatoxins were quantified by the immunoaffinity column clean-up method with high performance liquid chromatography (HPLC) - fluorescence detection (FLD), and were confirmed by liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Total aflatoxins(AFs) were detected in 37 samples (9.4% incidence), including 2 millet samples, 1 mixed cereal (sunsik), 1 powdered malt sample, 2 processed cereal products, 6 peanut samples, 22 peanut butter samples, and 1 sample each of almonds, adlay tea, and a processed nut product. The contamination levels were $0.04-2.65{\mu}g/kg$ for aflatoxin $B_1$, and $0.04-5.51{\mu}g/kg$ for total aflatoxins. Finally, LC-MS/MS analysis of the contaminated samples was conducted to confirm the detected aflatoxins, and all 37 samples showing aflatoxins by HPLC-FLD were confirmed by LC-MS/MS.
This study presents a method validation for extraction and quantitative analysis of trichothecene mycotoxins in nuts based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) approach for extraction and enhanced matrix removal (EMR)-lipid-disperive-SPE (d-SPE) cleanup method, with detection and quantification by high-performance liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) in positive- and negative-ion modes. Linearity, precision, and accuracy were validated for LC-MS/MS methods. Results obtained with LC-MS/MS were linear, with correlation coefficient ($R^2$) of 0.998. Limits of detection and quantification for mycotoxins were $0.41-3.57{\mu}g/kg$ and $1.23-10.82{\mu}g/kg$, respectively. Intra- and inter-day precisions (RSD, %) were 0.40-8.44% and 1.93-12.46%, respectively. Results indicated to be rapidly and accurately identifying trichothecene mycotoxins and may be used as a suitable safety management method for nuts and nuts related commodities.
Han, Song-Hee;Kim, Yunjeong;Jeon, Ji-Young;Hwang, Minho;Im, Yong-Jin;Lee, Sun Young;Chae, Soo-Wan;Kim, Min-Gul
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.41
no.12
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pp.1753-1757
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2012
A new liquid chromatographic tandem mass spectrometric (LC-MS/MS) assay for the quantification of ginsenoside Rb1 in human plasma was developed and validated. The separation was performed on a Agilent C18 column ($4.6mm{\times}150mm$, particle size 5 ${\mu}m$) with a gradient elution of 0.1% formic acid in water and 0.1% formic acid in methanol and a flow rate of 0.9 mL/min. The analyte was determined using electrospray positive ionization mass spectrometry in the multiple reaction monitoring (MRM) mode (m/z 1131.714${\rightarrow}$365.303). Human plasma samples were extracted with acetone : water (50:50) by the liquid-liquid extraction method. The method was linear over the dynamic range of 10~500 ng/mL with a correlation coefficient of r=0.9995. The intra-and inter-day precision over the concentration range of ginsenoside Rb1 was lower than 5.8% (correlation of variance, CV), and the accuracy was between 96.0~104.6%. This LC-MS/MS assay of ginsenoside Rb1 in human plasma is applicable for quantification in a pharmacokinetic study.
Pharmaceuticals and personal care products (PPCPs) are emerging contaminants in aquatic environmental samples. Therefore, it required rapidly and certainly analytical method for pharmaceuticals which are existed in environment. In this study, Liquid chromatography/tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) with electrospray ionization (ESI) was used to measure the concentrations of 7 pharmaceuticals (quinoxaline-2-carboxylic acid, acetylsalicylic acid, diclofenac-Na, naproxen, ibuprofen, mefenamic acid, talniflumate) from environmental water or aquatic samples simultaneously. Effective sample clean-up by solid-phase extraction (SPE) prior to LC-MS/MS analysis is necessary. For further purification, Mixed Cation eXchange (MCX) and Hydrophilic-Lipophilic Balance (HLB) solid-phase extraction (SPE) cartridges were used to eliminate the remaining interferences. LODs (Limits of Detection) and MDLs (Method Detection Limits) for the spiked sample in fresh water were in the range of 0.05~1.50 pg/mL and 0.17~4.90 pg/mL, respectively. The absolute recovery in the concentration of 1.0 ng/mL were between 81.9 and 116.3%. The acidic pharmaceuticals were detected in concentrations of 0.018~16.925 ng/mL in aquatic environmental samples.
Sohn, Ji Soo;Jung, Youngae;Han, Ji Soo;Hwang, Geum-Sook
Journal of the Korean Magnetic Resonance Society
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v.22
no.2
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pp.26-33
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2018
Xanthium sibiricum is used as a traditional folk medicine for the treatment of cancer, fever, headache, nasal sinusitis, and skin pruritus. This study aimed to identify components from Xanthium sibiricum extracts using an SPE-800MHz NMR-MS hyphenated system. The simultaneous acquisition of MS and NMR spectra from the same chromatographic peaks significantly increases the depth of information acquired for the compound and allows the elucidation of structures that would not be possible using MS or NMR data alone. LC -NMR analysis was conducted using a HPLC separation system coupled to 800 MHz spectrometer equipped with a cryoprobe, and a SPE unit was used to automatically trap chromatographic peaks using a HPLC pump. LC-MS analysis was conducted with a Q-TOF MS instrument using ESI ionization in the negative ion mode. Using the hyphenated analysis, several secondary metabolites were identified, such as 3',5'-O-dicaffeoylquinic acid, 1',5'-O-dicaffeoyl- quinic acid, and ethyl caffeate. These results demonstrate that the SPE-800MHz NMR-MS hyphenated system can be used to identify metabolites within natural products that have complex mixtures.
Amadori compounds(1-deoxy-1-amino-2-ketoses) are important precursors of color, flavor and aroma produced in foods. Amadori compounds occur naturally in tobacco. The contribution of amadori compounds to smoke quality has been (of) interest because of their roles of the Maillard reaction in the leaf chemistry. The amounts of these compound in tobacco are affected by the processes of aging, drying and storage conditions. In this study, eight compounds were chemically synthesized because amadori compounds (have not been sold commercially these days.) were not available for obtaining commercially. The aim of this study was to develop the analytical method of amadori compounds in tobacco leaf by the liquid chromatography mass spectrometry using triple quadrupole analyzer(LC-MS/MS). This method was simple, rapid, selective and sensitive, and eight amadori compounds were simultaneously and quantitatively analyzed within 20 minutes. This method showed excellent accuracy and precision. Recovery rates of amadori compounds ranged from 86% to 102%, with relative standard deviation(RSD) ranged from 2.6% to 5.9%. This method was applied to analysis of amadori compounds contents of tobacco leaves in different varieties. Furthermore, it was expected that the method could be extended to the analysis of other amadori compounds.
A reverse-phase high performance liquid chromatography method with electrospray ionization and detection by mass spectrometry is described for the simultaneous determination of doxifluridine and its active metabolite 5-flu-orouracil (5-FU) in monkey serum. The method has greater sensitivity and simpler process than previous published methods with good accuracy and precision. A proper liquid/liquid extraction was used to extract simultaneously doxifluridine and 5-FU which has considerable difference in the polarity. Extracts were analyzed using LC/MS/MS providing a short analysis time within 5 min. The lower limit of quantification was validated at 10.0 ng/ml of serum for both doxifluridine and 5-FU. Accuracy and precision of quality control (QC) samples for both analytes met FDA Guidance criteria of ±15% for average QC accuracy with coefficients of variation less than 15%. The method will be applicable for preclinical studies and bioequivalence studies.
Kang, Bitna;Yoon, Jeong A;Song, Im-Sook;Han, Young Taek;Choi, Min-Koo
Mass Spectrometry Letters
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v.10
no.3
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pp.88-92
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2019
A sensitive analytical method of rhodanthpyrone A in rat plasma was developed using a liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Rhodanthpyrone A and rhodanthpyrone B (internal standard) in rat plasma were extracted by a liquid-liquid extraction method with ethyl acetate. This extraction method gave results in high and reproducible extraction recovery in the range of 73.75-79.90% with no interfering peaks around the peak elution time of rhodanthpyrone A and B. The standard calibration curves for rhodanthpyrone A ranged from 0.5 to 2000 ng/mL were linear with $r^2$ > 0.994 and the inter- and intra-day accuracy and precision and the stability were within acceptance criteria. Using this validated analytical method, pharmacokinetics of rhodanthpyrone A following intravenous and oral administration of rhodanthpyrone A at doses of 2 mg/kg and 30 mg/kg, respectively, were investigated. Rhodanthpyrone A in rat plasma showed multi-exponential elimination pattern with high clearance and volume of distribution values. The absolute oral bioavailability of this compound was calculated as 3.7%. Collectively, the newly developed sensitive LC-MS/MS analytical method of rhodanthpyrone A could be successfully applied to investigate the pharmacokinetic properties of this compound and would be useful for the further studies on the efficacy, toxicity, and biopharmaceutics of rhodanthpyrone A.
This study aims to validate a fast method of simultaneous analysis of 365 LCamenable and 142 GC-amenable pesticides in hen eggs by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS), respectively, operating in multiple reaction monitoring (MRM) acquisition modes. The sample preparation was based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) extraction. Key method performance parameters investigated were specificity, linearity, limit of quantification (LOQ), accuracy, precision and measurement uncertainty. The method was validated at two spiking levels (10 and 50 ㎍/kg), and good recoveries (70%-120%) and relative standard deviations (RSDs) (≤20) were achieved for 92.9% of LC-amenable and 86.6% of GC-amenable pesticide residues. The LOQs were ≤10 ㎍/kg for 94.2% of LC-amenable and 92.3% of GC-amenable pesticides. The validated method was further applied to 100 egg samples from caged hens, and none of the pesticides was quantified.
Jeon, So Yeon;Kim, San;Park, Jin-Hyang;Song, Im-Sook;Han, Young Taek;Choi, Min-Koo
Analytical Science and Technology
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v.35
no.2
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pp.60-68
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2022
In this study, we developed and validated a sensitive analytical method to quantify baphicacanthin A in mouse plasma using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). The standard calibration curves for baphicacanthin A ranged from 0.5 to 200 ng/mL and were linear, with an r2 of 0.985. The inter- and intra-day accuracy and precision and the stability fell within the acceptance criteria. Besides, we investigated the pharmacokinetics of baphicacanthin A following its intravenous (5 mg/kg) and oral administration (30 mg/kg). Intravenously injected baphicacanthin A showed biphasic elimination kinetics with high clearance and volume of distribution values. Furthermore, baphicacanthin A showed a rapid absorption but low aqueous solubility (182.51±0.20 mg/mL), resulting in low plasma concentrations and low oral bioavailability (2.49 %). Thus, we successfully documented the pharmacokinetic properties of baphicacanthin A using this newly developed sensitive LC-MS/MS quantification method, which could be used in future lead optimization and biopharmaceutic studies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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