The 70 kDa heat-shock protein (Hsp70) involved in various cellular functions, such as protein folding, translocation and degradation, regulates apoptosis in cancer cells. Recently, it has been reported that the green tea flavonoid (−)-epigallocatechin 3-gallate (EGCG) induces apoptosis in numerous cancer cell lines and could inhibit the anti-apoptotic effect of human Hsp70 ATPase domain (hATPase). In the present study, docking model between EGCG and hATPase was determined using automated docking study. Epi-gallo moiety in EGCG participated in hydrogen bonds with side chain of K71 and T204, and has metal chelating interaction with hATPase. Hydroxyl group of catechin moiety also participated in metal chelating hydrogen bond. Gallate moiety had two hydrogen bondings with side chains of E268 and K271, and hydrophobic interaction with Y15. Based on this docking model, we determined two pharmacophore maps consisted of six or seven features, including three or four hydrogen bonding acceptors, two hydrogen bonding donors, and one lipophilic. We searched a flavonoid database including 23 naturally occurring flavonoids and 10 polyphenolic flavonoids with two maps, and myricetin and GC were hit by map I. Three hydroxyl groups of B-ring in myricetin and gallo moiety of GC formed important hydrogen bonds with hATPase. 7-OH of A-ring in myricetin and OH group of catechin moiety in GC are hydrogen bond donors similar to gallate moiety in EGCG. From these results, it can be proposed that myricetin and GC can be potent inhibitors of hATPase. This study will be helpful to understand the mechanism of inhibition of hATPase by EGCG and give insights to develop potent inhibitors of hATPase.
Vacuolar (H$^{+}$)-ATPase (V-ATPase) is an intracellular protein which consists of multiple subunits. It carries out acidification by pumping protons in the cell. This enzyme has also been found in the synaptic vesicles and may play an important role in the neurotransmission. We cloned cDNA fragments encoding the 16 kDa subunit of V-ATPase from the rat brain by RT-PCR and PCR using total RNA or recombinant phage DNA as templates. They contained the full coding sequences (468 bp) and one nucleotide at 3' region turned out to be different (A to C) when compared to the liver counterpart. However, this polymorphic difference did not cause any significant change in the primary structure of the protein because both GCA and GCC code for alanine. Our study would contribute to the understanding of the function of 16 M)a V-ATPase in the brain and of the mechanisms of neurotransmission.
Kim, Hae-Won;Cho, Yong-Sun;Lee, Yun-Song;Lee, Eun-Hee;Lee, Hee-Ran
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.3
no.2
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pp.175-182
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1999
In the present study, the underlying mechanisms for diabetic functional derangement and insulin effect on diabetic cardiomyopathy were investigated with respect to sarcoplasmic reticulum (SR) $Ca^{2+}-ATPase$ and phospholamban at the transcriptional and translational levels. The maximal $Ca^{2+}$ uptake and the affinity of $Ca^{2+}-ATPase$ for $Ca^{2+}$ were decreased in streptozotocin-induced diabetic rat cardiac SR, however, even minimal amount of insulin could reverse both parameters. Levels of both mRNA and protein of phospholamban were significantly increased in diabetic rat hearts, whereas the mRNA and protein levels of SR $Ca^{2+}-ATPase$ were significantly decreased. In case of phospholamban, insulin treatment reverses these parameters to normal levels. Minimal amount of insulin could reverse the protein levels; however, it could not reverse the mRNA level of SR $Ca^{2+}-ATPase$ at all. Thus, the decreased SR $Ca^{2+}$ uptake appear to be largely attributed to the decreased SR $Ca^{2+}-ATPase$ level, which is further impaired due to the inhibition by the increased level of phospholamban. These results indicate that insulin is involved in the control of intracellular $Ca^{2+}$ in the cardiomyocyte through multiple target proteins via multiple mechanisms for the decrease in the mRNA for both SR $Ca^{2+}-ATPase$ and phospholamban which are unknown and needs further study.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.14
no.1
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pp.77-81
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1985
It was investigated about extractability and biological property(ATPase activity) of actomyosin from skeletal muscle of chi(:ken differed feeding period. The extractabilities of actomyosin from pectoral muscle were increased from 184.5 to 1020.1 mg per 100g muscle as feeding period prolonged from 3 weeks to 8 weeks. In case of leg-muscles, extractability was revealed the similar tendency as pectoral muscles. EDTA ATPase activity of actomyosin in various chicken muscles for 3 weeks feeding was 0.6 Brmole Piimg Protein/min., 0.59 for 6 Iveeks feeding and 0.50 for 8 weeks. The Ma^{+2}$-ATPase of actomyosin in various chicken muscles was showed inverted relationship with ionic strength. EGTA ($125\;{\mu}mole$)inhibited Ma^{+2}$-ATPase activity to below $0.1\;{\mu}mole$ Pi/mg protein/min. regardless the feeding period.
The effects of ginseng saponin on the activity, phosphorylation, [$^{3}$H] ouabain binding and light scattering (disruption) of purified $Na^{+}$ ,$K^{+}$ -ATPase isolated from the outer medulla of sheep kidney were compared to those of gypsophila saponin, sodium dodecylsulfate (SDS), and Triton X-100 on the same parameters. $Na^{+}$ , $K^{+}$ -ATPase activity, phosphorylation, and [$^{3}H$] ouabain binding were inhibited by ginseng saponin (triol>total>diol), SDS, or Triton X-100, but increased by gypsophila saponin. Low doses of ginseng saponin (3.mu.g saponin/.mu.g protein) decreased phosphorylation sites and ouabain binding site concentration (Bmax) without any change of turnover number and affinity for ouabain binding which were decreased by high dose of ginseng saponin (over 10.mu.g saponin/.mu.g protein), SDS or Triton X-100. On the other hand, gypsophila saponin increased the affinity without any change of Bmax for ouabain binding. Inhibition of $Na^{+}$ ,$K^{+}$ -ATPase activity by ginseng saponin and SDS or Triton X-100 appeared before and after decrease in light scattering, respectively. These data suggest that ginseng saponins (total, diol, triol saponin) inhibit $Na^{+}$ , $K^{+}$ -ATPase activity by specific direct and general detergent action at low and high concentrations, respectively, and this inhibitory action of ginseng sapornin to $Na^{+}$ , $K^{+}$ -ATPase is not general action of all saponins.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.14
no.1
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pp.82-87
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1985
Some biological activities showed as ATPase activity of myofibril, actomyosin and myosin extracted from chicken leg and pectoral skeletal muscle were investigated. The $Mg^{+2}$-ATPase activity at 0.05 M KCl were 0.82, 0.38 and 0.11 ${\mu}mole$ Pi/mg protein/min. in actomyosin, myofibril and myosin from pectoral muscle while 0.71, 0.32 and 0.08 ${\mu}mole$ Pi/mg protein/min. in actomyosin, myofibril and myosin from leg muscle. EDTA-ATPase activity at 0.6M KCl were 0.80, 0.42 and 0.40 ${\mu}mole$ Pi/mg protein/min. in actomyosin, myofibril and myosin from pectoral muscle. In case of leg muscle, that activity was noted as 0.69, 0.33 and 0.28 ${\mu}mole$e Pi/mg protein/min in proteins. ATPase activity of myosin from leg and pectoral muscle were inhibited in 10% at a higher concentration of $Mg^{+2}$ than molar concentration of EDTA, and the ATPase activity was increased to 400% compared with control at $10^{-3}M$ of $Ca^{+2}$. Actomyosin from pectoral muscle was solubilized at 0.1 M KCl above and that from leg muscle was solubilized at 0.15 M KCl above. In case of myosin, pectoral muscle was solubilized at 0.25M KCI above and leg muscle was solubilized at 0.30M KCl above.
Membrane vesicles were prepared by differential centrifugation from epithelial cells of porcine trachea. Total activity of microsomal ATPases was measured spectrophotometrically by a coupled enzyme assay. The steady-state activity of the enzyme was $329{\pm}10$ nmol/min mg protein. Thapsigargin, a specific antagonist of intracellular $Ca^{2+}-ATPase$, inhibited about 50% of the activity, leaving $178{\pm}18\;nmol/min .mg$ protein (n=6), indicating that the $Ca^{2+}-ATPase$ is one of the major microsomal ATPases. The microsomes used in this study appeared to be tight-sealed vesicles since they showed saturation in $^{45}Ca^{2+}$ uptake experiments. Inositol 1,4,5-trisphosphate $InsP_{3}, 4\;{\mu}M$, an agonist of $InsP_{3}$-sensitive $Ca^{2+}$ release channel ($InsP_{3}$, receptor), and Ca-ionophore A23187 $(10\;{\mu}M)$ induced $^{45}Ca^{2+}$ releases of 20% and 50% of stored $^{45}Ca^{2+}$, respectively. The addition of $(10\;{\mu}M\;InsP_{3}$ also increased the microsomal ATPase activity from $282{\pm}8$ nmol/min mg protein to $334{\pm}21$ nmol/min . mg protein in the intact vesicles. Similar increase in the activity was observed by making microsomes leaky (uncoupling) using the Ca-ionophore A23187. ;$InsP_{3}-induced$ effects were blocked by either thapsigargin or heparin suggesting that: 1) the $InsP_{3}-induced$ increase in ATPase activity is mediated by microsomal $Ca^{2+}-ATPase$, and 2) dissipation of $Ca^{2+}$ gradient across the microsomal membrane is responsible for the $InsP_{3}-induced$ effect. In order to test the dependence of the $Ca^{2+}-ATPase$ activity on the activity of $InsP_{3}-induced$ the activity of ATPases was monitored in various concentrations of free $Ca^{2+}$ using $EGTA-Ca^{2+}$ buffers. The $Ca^{2+}$-dependent biphasic change is the well-known character of $InsP_{3} receptor but not of microsomal $Ca^{2+}-ATPase$ in non-excitable cells; however, the activity of microsomal ATPase appeared biphasic and a maxim진 activity of $397{\pm}36nmol/min\;.mg$ protein was obtained in the solution containing 100 nM free $Ca^{2+}$. Below or above this concentration, the activity of ATPases was lower. These results strongly support a positive correlation of microsomal $Ca^{2+}-ATPase$ to the $InsP_{3}$ receptors in epithelial microsomes.
Ku, Yang-Gyu;Park, Won;Lee, Eul-Tai;Kim, Cheol-Woo;Oh, Jeong-Min;Jang, Young-Seok;Kim, Yong-Kwon;Ahn, Sung-Ju
Journal of Bio-Environment Control
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v.18
no.2
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pp.160-165
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2009
This study was undertaken the effect of high temperature and high humidity on protein expression and especially plasma membrane (PM) $H^{+}ATPase$ of umbel with flowers of early cultivar 'Shinsunhwang' and intermediate cultivar 'Maebsihwang' of onion (Allium cepa L.). There were no visible any difference on the protein pattern from before flowering stage to full flowering stage of two onion cultivars, however, seed set stages were revealed induced/deduced protein patterns. At day 18, protein expression pattern of the high temperature and high humidity treatments of two cultivars was significantly reduced compared to controls. Furthermore, various protein expression of the high temperature treatment was more reduced compared to high humidity treatment. PM $H^{+}ATPase$ expression of the control plants of two onion cultivars was clearly shown, but was not detectable under high temperature treatment of the two onion cultivars using western blot analysis. PM $H^{+}ATPase$ expression of the high humidity treatment was faintly detected intermediate cultivar 'Maebsihwang', not early cultivar 'Shinsunhwang'. These results indicate that protein expression pattern and PM $H^{+}ATPase$ under high temperature treatment was considered to be more damaged compared to high humidity.
The analysis of biochemical changes in tobacco plant as increase of NaCl concentraion was conducted. Total protein content and soluble protein content were decreased as NaCl concentration was increased, in that steady decreased until 120mM NaCl and largely decreased at 150mM NaCl. The expression of 74Kd subunit was increased until 60mM NaCl. However, the amount of 74Kd protein was decreased from 90mM NaCl. There was no difference for expression of other protein subunits. Chlorophyll a content was significantly decrease as NaCl concentration was increased, but chlorophyll b content was not much decreased. The slow increase up to 120mM NaCl and large increase at 150mM NaCl for ATPase and peroxidase activities indicated that 120mM NaCl could be a limiting concentration for salt injury.
Blue light activates proton pump, and creates electrical gradient across the plasma membrane and drives $K^{+}$ uptake in stomatal guard cells. In this presentation, we provide evidence for regulatory mechanisms of the pump and the identification of blue light receptor. The pump is shown to be the plasma membrane H$^{+}$- ATPase and is activated through phosphorylation of the C-terminus. Phosphorylation occurred and 14-3-3 protein bound to the phosphorylation site. The binding of 14-3-3 protein was required for the H$^{+}$-ATPase activation. We also found that phot1 phot2 double mutant does not respond to blue light but other mutants respond to blue light by stomatal opening. However, all these mutants are capable of stomatal opening in the presence of fusicoccin, an activator of the H$^{+}$-ATPase. These results suggest that both photl and phot2 act as blue light receptors in guard cells.d cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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